In order to characterize ion channels present in tomato roots, microsomes were incorporated into an artificial lipid bilayer arranged for electrophysiological analysis. Of the five different ion channels that could be found, a channel of 450 pS conductance was found most frequently. This channel displayed subconductance states of 450, 257 and 105 pS. All subconductance states showed linear current-voltage relationships. At positive holding potentials, high frequency of transient channel openings was observed; however, at negative potentials, the open times were long and open probability high. Po was 0.83 at -40 mV. When an additional 50 mM $K^+\;or\;Na^+$ was added to the cis side of bilayer, the reversal potentials shifted in the negative direction to near -10 mV. Thus, the 450 pS cation channel selects poorly between $K^+\;and\;Na^+$. In the presence of $100\;{\mu}M$ metal ions, the channel activity was severely inhibited by $La^{3+},\;Ba^{2+},\;and\;Zn^{2+}$, and Po was decreased to 0.2 or even less. However, $Al^{3+}\;and\;Cd^{2+}$ decreased the activity by only 20%. Interestingly, each metal ion showed different kinetics of channel inhibition. While $500\;{\mu}M\;La^{3+}$ inhibited the activities of all subconductance state, 1 mM $Zn^{2+}$ inhibited all except the 105 pS state. $Cd^{2+}$ changed the gating of the channel from a long-opening state to brief transient openings even at negative holding potentials. These data represent that the metal ions may have different binding sites on the channel protein and could be useful modulators and probes to investigate structural characteristics as well as the functional roles of the 450 pS channel on the root physiology.
[$K^+$]-selective ion channels were studied in excised inside-out membrane patches from human osteoblast-like cells (G292). Three classes of $K^+$channels were present and could be distinguished on the basis of conductance. Conductances were $270\pm27\;pS,\;113\pm12\;pS,\;48\pm8\;pS$ according to their approximate conductances in symmetrical 140 mM KCl saline at holding potential of -80 mV It was found that the small conductance (48 pS) $K^+$channel activation was dependent on membrane voltage. In current-voltage relationship, small conductance $K^+$channel showed outward rectification, and it was activated by the positive potential inside the membrane. In recordings, single channel currents were activayed by a negative pressure outside the membrane. The membrane pressure increased $P_{open}$ of the $K^+$ channel in a pressure-dependent manner. In the excised-patch clamp recordings, G292 osteoblast-like cells have been shown to contain three types of $K^+$ channels. Only the small conductance (48 pS) $K^+$channel is sensitive to the membrane stretch. These findings suggest that a hyperpolarizing current, mediated in part by this channel, may be associated with early events during the mechanical loading of the osteoblast. In G292 osteoblast-like cells, $K^+$channel is sensitive to membrane tension, and may represent a unique adaptation of the bone cell membrane to mechanical stress.
Acid-sensing ion channels (ASICs) are proton-gated cation channels widely expressed in the nervous system. Proton sensing by ASICs has been known to mediate pain, mechanosensation, taste transduction, learning and memory, and fear. In this study, we investigated the differential subcellular localization of ASIC2a and ASIC3 in heterologous expression systems. While ASIC2a targeted the cell surface itself, ASIC3 was mostly accumulated in the ER with partial expression in the plasma membrane. However, when ASIC3 was co-expressed with ASIC2a, its surface expression was markedly increased. By using bimolecular fluorescence complementation (BiFC) assay, we confirmed the heteromeric association between ASIC2a and ASIC3 subunits. In addition, we observed that the ASIC2a-dependent surface trafficking of ASIC3 remarkably enhanced the sustained component of the currents. Our study demonstrates that ASIC2a can increase the membrane conductance sensitivity to protons by facilitating the surface expression of ASIC3 through herteromeric assembly.
Kang, Shin Jung;Cho, Sang-hee;Park, Kyungjoon;Yi, Jihyun;Yoo, Soon Ji;Shin, Ki Soon
Molecules and Cells
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v.25
no.1
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pp.124-130
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2008
Astrocyte ion channels participate in ionic homeostasis in the brain. Inward rectifying potassium channels (Kir channels) in astrocytes have been particularly implicated in $K^+$ homeostasis because of their high open probability at resting potential and their increased conductance at high concentrations of extracellular $K^+$. We examined the expression of the Kir2.1 subunit, one of the Kir channel subunits, in the mouse brain by immunohistochemistry. Kir2.1 channels were widely distributed throughout the brain, with high expression in the olfactory bulb and the cerebellum. Interestingly, they were abundantly expressed in astrocytes of the olfactory bulb, while astrocytes in other brain regions including the hippocampus did not show any detectable expression. However, Kir2.1 channel-expressing cells were dramatically increased in the hippocampus by kainic acid-induced seizure and the cells were glial fibrillary acidic protein (GFAP)-positive, which confirms that astrocytes in the hippocampus express Kir2.1 channels under pathological conditions. Our results imply that Kir2.1 channels in astrocyte may be involved in buffering $K^+$ against accumulated extracellular $K^+$ caused by neuronal hyperexcitability under phathophysiological conditions.
Potassium channels, the largest group of pore proteins, selectively regulate the flow of potassium ($K^+$) ions across cell membranes. The activity and expression of $K^+$ channels are critical for the maintenance of normal functions in vessels and neurons, and for the regulation of cell differentiation and maturation. However, their role and expression in stem cells have been poorly understood. In this study, we isolated perivascular stem cells (PVCs) from human umbilical cords and investigated the expression patterns of big-conductance $Ca^{2+}$-activated $K^+$ ($BK_{Ca}$) and voltage-dependent $K^+$ ($K_v$) channels using the reverse transcription polymerase chain reaction. We also examined the effect of high glucose (HG, 25 mM) on expression levels of $BK_{Ca}$ and $K_v$ channels in PVCs. $K_{Ca}1.1$, $K_{Ca}{\beta}_3$, $K_v1.3$, $K_v3.2$, and $K_v6.1$ were detected in undifferentiated PVCs. In addition, HG treatment increased the amounts of $BK_{Ca}{\beta}_{3a}$, $BK_{Ca}{\beta}_4$, $K_v1.3$, $K_v1.6$, and $K_v6.1$ transcripts. These results suggested that ion channels may have important functions in the growth and differentiation of PVCs, which could be influenced by HG exposure.
Ca2+ signaling of endothelial cells plays a critical role in controlling blood flow and pressure in small arteries and arterioles. As the impairment of endothelial function is closely associated with cardiovascular diseases (e.g., atherosclerosis, stroke, and hypertension), endothelial Ca2+ signaling mechanisms have received substantial attention. Increases in endothelial intracellular Ca2+ concentrations promote the synthesis and release of endothelial-derived hyperpolarizing factors (EDHFs, e.g., nitric oxide, prostacyclin, or K+ efflux) or directly result in endothelial-dependent hyperpolarization (EDH). These physiological alterations modulate vascular contractility and cause marked vasodilation in resistance arteries. Transient receptor potential (TRP) channels are nonselective cation channels that are present in the endothelium, vascular smooth muscle cells, or perivascular/sensory nerves. TRP channels are activated by diverse stimuli and are considered key biological apparatuses for the Ca2+ influx-dependent regulation of vasomotor reactivity in resistance arteries. Ca2+-permeable TRP channels, which are primarily found at spatially restricted microdomains in endothelial cells (e.g., myoendothelial projections), have a large unitary or binary conductance and contribute to EDHFs or EDH-induced vasodilation in concert with the activation of intermediate/small conductance Ca2+-sensitive K+ channels. It is likely that endothelial TRP channel dysfunction is related to the dysregulation of endothelial Ca2+ signaling and in turn gives rise to vascular-related diseases such as hypertension. Thus, investigations on the role of Ca2+ dynamics via TRP channels in endothelial cells are required to further comprehend how vascular tone or perfusion pressure are regulated in normal and pathophysiological conditions.
Proceedings of the Korean Biophysical Society Conference
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2003.06a
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pp.38-38
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2003
The electrical properties of neurons are produced by the coordinated activity of ion channels (Hille, 1992). $K^{+}$ channels play a key role in shaping action potentials and in determining neural firing patterns. Small conductance $Ca^{2+}$-activated $K^{+}$ (S $K_{Ca}$ ) channels are involved in modulating the slow component of afterhyperpolarization (AHP) (Kohler et al., 1996). Here we examine whether rat type 2 S $K_{Ca}$ (rSK2) channels can affect the shape of the action potential and the neural firing pattern, by overexpressing rat SK2 channels in Aplysia neuron R15. Our results show that rSK2 overexpression decreased the intraburst frequency and changed the regular bursting activity of neurons to an irregular bursting or beating pattern in R15, Furthermore, the overexpression of rSK2 channels increased AHP and reduced the duration of the action potential. Thus, our results suggest that ectopic S $K_{Ca}$ channels play an important role in regulating the filing pattern and the shape of the action potential.ntial.
Cells can resist and even recover from stress induced by acute hypoxia, whereas chronic hypoxia often leads to irreversible damage and eventually death. Although little is known about the response(s) to acute hypoxia in neuronal cells, alterations in ion channel activity could be preferential. This study aimed to elucidate which channel type is involved in the response to acute hypoxia in rat pheochromocytomal (PC12) cells as a neuronal cell model. Using perfusing solution saturated with 95% $N_2$ and 5% $CO_2$, induction of cell hypoxia was confirmed based on increased intracellular $Ca^{2+}$ with diminished oxygen content in the perfusate. During acute hypoxia, one channel type with a conductance of about 30 pS (2.5 pA at -80 mV) was activated within the first 2~3 min following onset of hypoxia and was long-lived for more than 300 ms with high open probability ($P_o$, up to 0.8). This channel was permeable to $Na^+$ ions, but not to $K^+$, $Ca^+$, and $Cl^-$ ions, and was sensitively blocked by amiloride (200 nM). These characteristics and behaviors were quite similar to those of epithelial sodium channel (ENaC). RT-PCR and Western blot analyses confirmed that ENaC channel was endogenously expressed in PC12 cells. Taken together, a 30-pS ENaC-like channel was activated in response to acute hypoxia in PC12 cells. This is the first evidence of an acute hypoxia-activated $Na^+$ channel that can contribute to depolarization of the cell.
The calcium-activated $K^+$ ($BK_{Ca}$) channel is one of the potassium-selective ion channels that are present in the nervous and vascular systems. $Ca^{2+}$ is the main regulator of $BK_{Ca}$ channel activation. The $BK_{Ca}$ channel contains two high affinity $Ca^{2+}$ binding sites, namely, regulators of $K^+$ conductance, RCK1 and the $Ca^{2+}$ bowl. Lysophosphatidic acid (LPA, 1-radyl-2-hydroxy-sn-glycero-3-phosphate) is one of the neurolipids. LPA affects diverse cellular functions on many cell types through G protein-coupled LPA receptor subtypes. The activation of LPA receptors induces transient elevation of intracellular $Ca^{2+}$ levels through diverse G proteins such as $G{\alpha}_{q/11}$, $G{\alpha}_i$, $G{\alpha}_{12/13}$, and $G{\alpha}s$ and the related signal transduction pathway. In the present study, we examined LPA effects on $BK_{Ca}$ channel activity expressed in Xenopus oocytes, which are known to endogenously express the LPA receptor. Treatment with LPA induced a large outward current in a reversible and concentration-dependent manner. However, repeated treatment with LPA induced a rapid desensitization, and the LPA receptor antagonist Ki16425 blocked LPA action. LPA-mediated $BK_{Ca}$ channel activation was also attenuated by the PLC inhibitor U-73122, $IP_3$ inhibitor 2-APB, $Ca^{2+}$ chelator BAPTA, or PKC inhibitor calphostin. In addition, mutations in RCK1 and RCK2 also attenuated LPA-mediated $BK_{Ca}$ channel activation. The present study indicates that LPA-mediated activation of the $BK_{Ca}$ channel is achieved through the PLC, $IP_3$, $Ca^{2+}$, and PKC pathway and that LPA-mediated activation of the $BK_{Ca}$ channel could be one of the biological effects of LPA in the nervous and vascular systems.
Journal of the Institute of Electronics Engineers of Korea SD
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v.41
no.3
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pp.1-8
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2004
The anomalous behavior of the 1/f noise of halo or pocket ion implanted MOSFETs is investigated. The model for the anomalous 1/f noise behaviors of MOSFETs, which consist of inhomogeneous conductance along the channel is improved within a regional approximation as previous works and presented in a fen directly applicable to halo MOSFETs. The presented model reduces to the previous results, discussed in the linear region operation, for small drain bias. Comparisons with experimental results show that the 1/f model based on the regional approach can be applicable for limited ranges, especially for sufficiently large gate bias voltages.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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