Kim, Sang-Hyun;Lee, Heui-Sam;Kim, Jin-Won;Lee, Young-Sin;Kim, Iksoo
International Journal of Industrial Entomology and Biomaterials
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v.4
no.1
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pp.31-36
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2002
Peptidohlycan recognition protein (PGRP) is one of the pattern recognition proteins in innate immunity of insect. We isolated differentially expressed two cDNAa, BTL-LPI and BTL-LP2, in the fat body of Bombyx mori larvae injected with bacteria by subtractive hybridization method. These two clones showed amino acid sequence divergence of 30.4%. In the comparison with other insect PGRP genes, BTL-LP2 showed 48.8% and 45.2% of sequence homology to the known PGRP genes of Bombyx mori and Tricoplusia ni, respectively, and BTL-LP2 was 31.8% and 30.9% , respectively. Phylogenetic analysis showed relatively close relationship of the BTL-LP2 to the known insect PGRP, unlike BTL-LPI, which was equidistant both to insect and mammals, suggesting a divergent relationships of the two newly cloned B. mori PGRP genes. Northern blot analyses confirmed an induction of the expression of BTL-LP2 by the bacterial infection in the Int body of B. mori, suggesting the involvement of the gene in the insect immunity.
Kim, Iksoo;Lee, Young-Shin;Lee, Kwang-Sik;Cha, So-Young;Kang, Pil-Don;Sohn, Bong-Hee;Lee, In-Hee;Jin, Byung-Rae;Hwang, Jae-Sam
International Journal of Industrial Entomology and Biomaterials
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v.8
no.1
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pp.95-99
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2004
Synthetic oligodeoxynucleotides (ODNs) containing unmethylated CpG dinucleotides in particular base contexts are known to induce immunity in vertebrate cells. In insect, however, it was recent to find out that ODNs induces insect immunity as other immune inducer such as lipopolysaccharide. However, the finding was solely based on one lepidopteran insect, Bombyx mori, and the expression of insect immunity was neither dependent on numbers of CpG repeats nor methylation of CpG repeats within ODNs. Instead, foreignness of DNA has been suggested to be a key factor governing induction of antibacterial peptide. In this study, we expanded our previous understanding to the potentiality of ODNs as an immune inducer for antifungal peptide in Galleria mellonella and B. mori. To do this, a defensin-type antifungal peptide gene, reported from G. mellonella was cloned and partially sequenced from G. mellonella and B. mori successfully and utilized as a probe in the Northern blot analysis. We found out that ODNs also work as an immune inducer for antifungal peptide in the fat body and midgut of G. mellonella and B. mori larvae. Also, induction pattern of antifungal peptide was irrelevant to the numbers of CpG repeats within ODNs as previously reported on the induction pattern of antibacterial peptides.
Like vertebrates, insects synthesize various eicosanoids after the committed catalytic step of phospholipase A2 (PLA2). However, the subsequent biosynthetic steps exhibit some deviation from those of vertebrates. Due to little composition of arachidonic acid in insect phospholipids, PLA2 releases linoleic acid, which is another polyunsaturated fatty acid and relatively rich in insect phospholipids, to synthesize arachidonic acid via chain extension and desaturation. Resulting arachidonic acid is then oxygenated into a prostaglandin (PG), PGH2, by a specific peroxidase called peroxynectin, but not by cyclooxygenase. PGH2 is then isomerized to various PGs such as PGA2, PGD2, PGE2, PGI2, and a thromboxane (TXB2). All four epoxyeicosatrienoic acids such as 5,6-EET, 8,9-EET, 11,12-EET, and 14,15-EET are also synthesized from arachidonic acid by oxygenation of vertebrate types of monooxygenases. However, the other type of eicosanoids called leukotrienes are found in insect tissues but their synthetic pathway is unclear. Eicosanoids mediate various insect physiological processes such as metabolism, excretion, immunity, and reproduction. Thus, identification of novel compounds interrupting eicosanoid biosynthesis would be a novel approach to develop insecticides. This review focuses on PGs and their immune mediation.
Phenoloxidase (PO) is an oxidizing enzyme and plays crucial roles in insect immunity and cuticle sclerotization. High oxidizing activity of chlorine dioxide gives effective control activities against microbes and insect pests. These allowed us to assess any inhibitory activity of chlorine dioxide against PO with respect to insect immunity. PO activities of the Indeanmeal moth, Plodia interpunctella, was detected in both hemocytes and plasma. Upon bacterial challenge, PO activity was significantly increased especially in plasma. However, the immune challenge coupled with chlorine dioxide treatment did not enhance PO activity. When different chlorine dioxide concentrations were incubated with activated PO by immune challenge, they did not inhibit the activated PO. These results indicate that chlorine dioxide suppresses PO activity by inhibiting PO activation.
Lee, Joon Ha;Kim, In-Woo;Kim, Mi-Ae;Yun, Eun Young;Hwang, Jae Sam
Journal of Life Science
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v.26
no.6
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pp.737-748
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2016
By this time, insect antimicrobial peptides (AMPs) have been characterized more than 150 peptides since purification of cecropin in the hemolymph of pupae from Hyalophora cecropia in 1980. Therefore, it is considered that insects are good sources of AMP selection. Insect AMPs are small (low molecular weight) and cationic, and amphipathic with variable length, sequence, and structure. They perform a pivotal role on humoral immunity in the insect innate immune system against invading pathogens such as bacteria, fungi, parasites, and viruses. Most of the insect AMPs are induced rapidly in the fat bodies and other specific tissues of insects after septic injury or immune challenge. Then the AMPs subsequently released into the hemolymph to act against microorganisms. These peptides have a broad antimicrobial spectrum against various microbes including anticancer activities. Insect AMPs could be divided into four families based on their structures and sequences. That is the α-helical peptides, cysteine-rich peptides, proline-rich peptides, and glycine-rich peptides/proteins. For instance, cecropins, insect defensins, proline-rich peptides, and attacins are common insect AMPs, but gloverins and moricins have been identified only in lepidopteran species. This review focuses on AMPs from insects and discusses current knowledge and recent progress with potential applications of insect AMPs.
Shin, Jiwon;Kim, Bo-Ra;Guevarra, Robin B.;Lee, Jun Hyung;Lee, Sun Hee;Kim, Young Hwa;Wattanaphansak, Suphot;Kang, Bit Na;Kim, Hyeun Bum
Korean Journal of Agricultural Science
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v.45
no.4
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pp.655-663
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2018
The insect gut microbiome is known to have important roles in host growth, development, digestion, and resistance against pathogens. In addition, the genetic diversity of the insect gut microbiota has recently been recognized as potential genetic resources for industrial bioprocessing. However, there is limited information regarding the insect gut microbiota to better help us understand their potential benefits for enhanced pig production. With the development of next-generation sequencing methods, whole genome sequence analysis has become possible beyond traditional culture-independent methods. This improvement makes it possible to identify and characterize bacteria that are not cultured and located in various environments including the gastrointestinal tract. Insect intestinal microorganisms are known to have an important role in host growth, digestion, and immunity. These gut microbiota have recently been recognized as potential genetic resources for livestock farming which is using the functions of living organisms to integrate them into animal science. The purpose of this literature review is to emphasize the necessity of research on insect gut microbiota and their applicability to pig production or bioindustry. In conclusion, bacterial metabolism of feed in the gut is often significant for the nutrition intake of animals, and the insect gut microbiome has potential to be used as feed additives for enhanced pig performance. The exploration of the structure and function of the insect gut microbiota needs further investigation for their potential use in the swine industry particularly for the improvement of growth performance and overall health status of pigs.
Kim, Chan-Hee;Park, Ji-Won;Ha, Nam-Chul;Kang, Hee-Jung;Lee, Bok-Luel
BMB Reports
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v.41
no.2
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pp.93-101
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2008
The major cell wall components of bacteria are lipopolysaccharide, peptidoglycan, and teichoic acid. These molecules are known to trigger strong innate immune responses in the host. The molecular mechanisms by which the host recognizes the peptidoglycan of Gram-positive bacteria and amplifies this peptidoglycan recognition signals to mount an immune response remain largely unclear. Recent, elegant genetic and biochemical studies are revealing details of the molecular recognition mechanism and the signalling pathways triggered by bacterial peptidoglycan. Here we review recent progress in elucidating the molecular details of peptidoglycan recognition and its signalling pathways in insects. We also attempt to evaluate the importance of this issue for understanding innate immunity.
International Journal of Industrial Entomology and Biomaterials
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v.21
no.1
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pp.127-132
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2010
We have characterized full-length cDNA encoding Gall-6-tox protein, which was cloned from the fat body of the immunized Galleria mellonella larvae. The cloned cDNA of Gall-6-tox consists of 1301 nucleotides and contained an open reading frame of 891 nucleotides corresponding to a protein of 296 residues that includes a putative 16-residue signal sequence and a 280-residue mature peptide with a calculated mass of 30,707.73 Da. The deduced mature peptide contains conserved tandem repeats of six cysteine-stabilized alpha beta ($Cs{\alpha}{\beta}$) motifs, which was detected in scorpion toxins and insect defensins. In the sequence homology search, mature Gall-6-tox showed 34% and 28% amino acid sequence homology with Bomb-6-tox from Bombyx mori and Spod-11-tox from Spodoptera frugiperda, respectively. Gall-6-tox orthologs were only found in Lepidopteran species, indicating that this new immune-related gene family is specific to this insect order. RT-PCR analysis revealed that Gall-6-tox was expressed primarily in the larval fat bodies, hemocytes, and midgut against invading bacteria into hemocoel. Moreover, the expression time course of Gall-6-tox was examined up to 24 h in the fat bodies and midgut after injection of E. coli. Altogether, these results suggest that Gall-6-tox is derived from defensins and Gall-6-tox may play a critical role in Lepidoptera immune system.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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