CTLA-4Ig is regarded as an inhibitory agent of the T cell proliferation via blocking the costimulatory signal which is essential for full T cell activation. To improve applicability, we developed the CTLA-4Ig-CTKC in which the c-terminal lysine had been replaced by cysteine through single amino acid change. The single amino acid mutation of c-terminus of CTLA-4Ig was performed by PCR and was checked by in vitro transcription and translation. DNA construct of mutant form was transfected to Chinese hamster ovary (CHO) cells by electroporation. The purified proteins were confirmed by Western blot and B7-1 binding assay for their binding ability. The suppressive capacity of CTLA-4Ig-CTKC was evaluated by the mixed lymphocyte reaction (MLR) and in the allogeneic pancreatic islet transplantation model. CTLA-4Ig-CTKC maintained binding ability to B7-1 molecule and effectively inhibits T cell proliferation in MLR. In the murine allogeneic pancreatic islet transplantation, short-term treatment of CTLA-4Ig-CTKC prolonged the graft survival over 100 days. CTLA-4Ig-CTKC effectively inhibits immune response both in MLR and in allogeneic islet transplantation model, indicating that single amino acid mutation does not affect the inhibitory function of CTLA-4Ig. CTLA-4Ig-CTKC can be used in vehicle-mediated drug delivery system such as liposome conjugation.
RNAs are versatile molecules that are primarily involved in gene regulation and can thus be widely used to advance the fields of therapeutics and diagnostics. In particular, circular RNAs which are highly stable, have emerged as strong candidates for use on next-generation therapeutic platforms. Endogenous circular RNAs control gene regulatory networks by interacting with other biomolecules or through translation into polypeptides. Circular RNAs exhibit cell-type specific expression patterns, which can be altered in tissues and body fluids depending on pathophysiological conditions. Circular RNAs that are aberrantly expressed in diseases can function as biomarkers or therapeutic targets. Moreover, exogenous circular RNAs synthesized in vitro can be introduced into cells as therapeutic molecules to modulate gene expression networks in vivo. Depending on the purpose, synthetic circular RNA sequences can either be identical to endogenous circular RNA sequences or artificially designed. In this review, we introduce the life cycle and known functions of intracellular circular RNAs. The current stage of endogenous circular RNAs as biomarkers and therapeutic targets is also described. Finally, approaches and considerations that are important for applying the available knowledge on endogenous circular RNAs to design exogenous circular RNAs for therapeutic purposes are presented.
The relationship between plasmid (~9.5 kb) and pediocin PA-1 in P. acidilactici K10 was confirmed by plasmid curing. The pediocin operon of P. acidilactici K10 was amplified by PCR (polymerase chain reaction), and the nucleotide sequence was analyzed. The sequence of the pediocin operon of P. acidilactici K10 was similar to those of P. acidilactici strains producing pediocin PA-1/ AcH. For the expression of pediocin PA-1 in E. coli, a pQEPED (pQE-30 Xa::mature pedA) was constructed. His-tagged recombinant pediocin PA-1 (-6.5 kDa) was translated by cell-free in vitro transcription and translation using pQEPED as a DNA template. Theresult of slot blotting assay showed that transcription of recombinant pedA in E. coli M15 was induced by the addition of isopropyl-$\beta$-D-thiogalactopyranoside (IPTG) at the final concentration of 1 mM. Although the recombinant pediocin PA-1 inhibited the growth of E. coli, it was expressed in the host strain and purified by nickel-nitrilotriacetic acid (Ni-NTA) metal-affinity chromatography under denaturing condition. This is the first report for the production and one-step purification of biologically active recombinant pediocin PA-1 in E. coli.
Epitope tagging is the process of fusing a set of amino acid residues that are recognized as an antigenic determinant to a protein of interest. Tagging a protein with an epitope facilitates various immunochemical analyses of the tagged protein with a specific monoclonal antibody. The monoclonal antibody H8 has subtype specificity for an epitope derived from the preS2 region of hepatitis B virus surface antigen. Previous studies on serial deletions of the preS2 region indicated that the preS2 epitope was located in amino acid residues 130~142. To test whether the amino acid sequence in this interval is sufficient to confer on proteins the antigenicity recognizable by the antibody H8, the set of amino acid residues in the interval was tagged to the amino terminal of ${\beta}$-galactosidase and to the carboxyl terminal of the truncated $p56^{lck}$ fragment. The tagged ${\beta}$-galactosidase, expressed in Escherichia coli, maintained the enzymatic activity and was immunoprecipitated efficiently with H8. The tagged $p56^{lck}$ fragment, synthesized in an in vitro translation system, was also immunoprecipitated specifically with H8. These results demonstrate that the amino acid sequence of the preS2 region can be used efficiently for the epitope tagging approach.
Extensive research of the Potato virus X(PVX) has been performed in in vitro transcription system using the bacteriophage T7 promoter. We constructed an efficient T-DNA based binary vector, pSNU1, and modified vectors carrying PVX replicons. The suitability of the construct to transiently express PVX RNA using Agrobacterium tumefaciens was tested by analysis of infectivity in plants. The expressed PVX RNA was infectous and systemically spread in three plant species including Nicotiana benthamiana, N. tabacum cv. Xanthi-nc, and Capsicum annuum cv. Chilsungcho. The PVX full length construct, pSPVXp31, was caused severe mosaic symptoms on N. benthamiana, severe necrotic lesions on C. annuum while milder symptoms and delayed mosaic symptoms were appeared on the systemic leaves on N. tabaccum. RT-PCR analysis confirmed the presence of PVX RNAs on both inoculated and systemic leaves in all three plant species tested. Our results indicated that PVX replicons were efficiently expressed PVX RNA in at least three tested species. Further investigation win be needed to elucidate the mechanism of PVX replication, translation, movement and assembly/disassembly processes.
Brain cytoplasmic 200 RNA (BC200 RNA) is a neuron-specific non-coding RNA, implicated in the inhibition of local synaptodendritic protein synthesis, and is highly expressed in some cancer cells. Although BC200 RNA has been shown to inhibit translation in vitro, the cellular location of this inhibition is unknown. In this study, we used a BC200 RNA-recognizing antibody to identify the cellular locations of BC200 RNA in HeLa cervical carcinoma cells. We observed punctate signals in both the cytoplasm and nucleus, and further discovered that BC200 RNA co-localized with the p-body decapping enzyme, DCP1A, and the heterogeneous nuclear ribonucleoprotein E2 (hnRNP E2). The latter is a known BC200 RNA-binding partner protein and a constituent of p-bodies. This suggests that BC200 RNA is localized to p-bodies via hnRNP E2.
The cytoplasmic FMR1-interacting protein family (CYFIP1 and CYFIP2) are evolutionarily conserved proteins originally identified as binding partners of the fragile X mental retardation protein (FMRP), a messenger RNA (mRNA)-binding protein whose loss causes the fragile X syndrome. Moreover, CYFIP is a key component of the heteropentameric WAVE regulatory complex (WRC), a critical regulator of neuronal actin dynamics. Therefore, CYFIP may play key roles in regulating both mRNA translation and actin polymerization, which are critically involved in proper neuronal development and function. Nevertheless, compared to CYFIP1, neuronal function and dysfunction of CYFIP2 remain largely unknown, possibly due to the relatively less well established association between CYFIP2 and brain disorders. Despite high amino acid sequence homology between CYFIP1 and CYFIP2, several in vitro and animal model studies have suggested that CYFIP2 has some unique neuronal functions distinct from those of CYFIP1. Furthermore, recent whole-exome sequencing studies identified de novo hot spot variants of CYFIP2 in patients with early infantile epileptic encephalopathy (EIEE), clearly implicating CYFIP2 dysfunction in neurological disorders. In this review, we highlight these recent investigations into the neuronal function and dysfunction of CYFIP2, and also discuss several key questions remaining about this intriguing neuronal protein.
Kim, Jeong-Hoon;Choi, Jin Sun;Kim, Sunhong;Kim, Kidae;Myung, Pyung Keun;Park, Sung Goo;Seo, Yeon-Soo;Park, Byoung Chul
BMB Reports
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v.48
no.1
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pp.25-29
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2015
Ubiquitination is a post translational modification which mostly links with proteasome dependent protein degradation. This process has been known to play pivotal roles in the number of biological events including apoptosis, cell signaling, transcription and translation. Although the process of ubiquitination has been studied extensively, the mechanism of polyubiquitination by multi protein E3 ubiquitin ligase, SCF complex remains elusive. In the present study, we identified UbcH5a as a novel stimulating factor for poly-ubiquitination catalyzed by $SCF^{hFBH1}$ using biochemical fractionations and MALDI-TOF. Moreover, we showed that recombinant UbcH5a and Cdc34 synergistically stimulate $SCF^{hFBH1}$ catalyzed polyubiquitination in vitro. These data may provide an important cue to understand the mechanism how the SCF complex efficiently polyubiquitinates target substrates.
An antiviral protein (CAP30) with ribosome-inactivating activity was purified from the leaves of Chenopodium album L. through ammonium sulfate precipitation and column chromatography using S-Sepharose, Blue-Sepharose, FPLC Suprose12 HR, and FPLC Mono-S. The molecular wight of CAP30 was estimated to be 30kD. CAP30 was thermostable, maintaing its activity even after incubation at $70^{\circ}C$ for 30 min, and was stable in the pH range of 6 to 9. In a cell-free in vitro translation system using rabbit reticulocyte lysate, protein synthesis was inhibited by the addition of CAP30 with an $IC_{50}$ of 2.26pM. The comparison of N-terminal amino acid sequences of this protein with known ribosome-inactivating proteins (RIPs) revealed that it had some sequence homology with PAP-S and PAP-R from pokeweed (Phytolacca americana)and dodecandrin from P. dodecandra, but had no sequence homology with RIPs from other plants belonging to different orders. The mosaic symptoms on tobacco leaves caused by cucumber mosaic virus infection was completely inhibited by 100 ng/ml of the pure CAP30 protein.
Prospect Hill Virus (PHV) is the well known serotype of hantavirus, a newly established genus in family Bunyaviridae. Extensive studies have upheld the original view of PHV genetics with three genes such as nucleocapsid (N) protein, envelope proteins (G1, G2) and RNA dependent RNA polymerase. In this study, we report the existence of additional gene that is encoded in an overlapping reading frame of the N protein gene within S genome segment of PHV. This gene is expected to encode a nonstructural small (NSs) protein and it seems to be only found in PHV infected cell. The presence and synthesis of NSs protein could be demonstrated in the cell infected with PHV using anti-peptide sera specific to the predicted amino acid sequence deduced from the second open reading frame. Ribosomal synthesis of this protein appears to occur at AUG codon at the 83rd base of S genome segment, downstream of N protein initiation codon. This protein is small in size (10.4 KDa) and highly basic in nature. The expression strategy of NSs protein appears that a signal mRNA is used to translate both N and NSs protein in PHV infected cell. 10 KDa protein in virus infected cell lysates can bind to mimic dsRNA. This fact strongly suggests that NSs protein may be involved in virus replication on late phase of viral life cycle.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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