A modified Tris-buffered medium (mTBM) has been widely used as an insemination medium for porcine in vitro fertilization (IVF). We examined whether mTBM could be used for bovine IVF. Bovine cumulus-oocyte complexes (COCs) were cultured in a serum-free medium containing 30 ng/ml EGF for 22 h. After culture, COCs were inseminated with spermatozoa for 12 h in mTBM containing 5 mM caffeine and 10 g/ml heparin. The penetration of oocytes increased significantly (p<0.05) as the sperm concentration increased from 0.1 (30%) to 1-10 $(87-100%){\times}10^6$ cells/ml. This was significantly different from values obtained at 1 (87%) and 10 $(100%){\times}10^6$ cells/ml. However, when COCs were inseminated with spermatozoa from different bulls, the proportions (62-100%) of oocytes penetrated varied according to the bull. The proportion (18%) of oocytes penetrated was significantly (p<0.05) lower in a fertilization medium without caffeine and heparin but increased with the addition of caffeine and/or heparin to the medium, and the proportion (93-96%) of oocytes penetrated increased significantly (p<0.05) when the medium was supplemented with heparin and caffeine. In this medium, sperm penetration was first observed at 3 h after insemination. Irrespective of the presence of glucose in the fertilization medium, the proportion (93-97%) of oocytes penetrated and the proportion (83-84%) of embryos at the ${\geq}2$-cell stage cultured in a chemically defined medium were not significantly different. However, the proportion of embryos developing to the blastocyst stage was significantly (p<0.05) higher in the presence (11%) of glucose in the fertilization medium than in its absence (2%). In conclusion, the present study demonstrated that bovine oocytes penetrated in vitro in mTBM can develop to the blastocyst stage and mTBM may be used for the in vitro production of bovine embryos.
Rahman, Mohammad Moshiur;Rahman, Md. Masudur;Juyena, Nasrin Sultana;Bhuiyan, Mohammad Musharraf Uddin
한국동물생명공학회지
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제35권2호
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pp.142-148
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2020
The research work was undertaken to determine an effective fertilization medium, sperm separation method and sperm capacitating agent for optimum in vitro fertilization (IVF) rates of indigenous zebu cow oocytes. In experiment 1, tissue culture medium (TCM 199), Tyrode's albumin lactate pyruvate (TALP) and Brackett and Oliphant (BO) medium were used as basic medium for IVF of oocytes of indigenous zebu cows. In experiment 2, three sperm separation methods namely centrifugation, swim up and percoll gradient methods were used for separation of motile and viable spermatozoa for IVF. In experiment 3, for capacitation of spermatozoa, IVF medium supplemented with the heparin, mixture of penicillamine, hypotaurine and epinephrine (PHE) or the combination of heparin with PHE were used for fertilization. In vitro culture (IVC) of presumptive zygotes was done in modified synthetic oviduct fluid (mSOF) medium using standard procedure 24 h after sperm-oocytes co-culture. The cleavage rate was determined to evaluate the efficacy of fertilization medium, sperm separation method and sperm capacitating agent 24 h after IVC. The cleavage rate was higher in oocytes fertilized in TALP (63.3%) than in TCM 199 (47.5%) (p < 0.05). The cleavage rate was higher in oocytes fertilized by spermatozoa separated by percoll gradient method (62.3%) than by centrifugation (51.6%) (p < 0.05). The cleavage rate of oocytes was higher when insemination was done with spermatozoa capacitated in TALP supplemented with heparin and PHE (61.3%) compared to control (40.9%) (p < 0.05). In conclusions, TALP based medium and percoll gradient sperm separation followed by capacitation with combination of heparin and PHE are suitable for IVF of indigenous zebu cow oocytes in Bangladesh.
The effect of antisperm antibodies (ASA) on the human in vitro fertilization (lVF) process was evaluated by analyzing the IVF data between October and December 1988 at Seoul National University Hospital prospectively. The immunobead test (IBT) was used to identify Ig G, Ig A, and Ig M in the serum, semen, and follicular fluid from 93 couples undergoing in vitro fertilization-embryo transfer (lVF-ET ) . The fertilization rate in couples with ASA to sperm head of at least one isotype in female serum (n= 10) was significantly less than that in couples without ASA to sperm head (n=83; 28.5% versus 45.3% , p=0.028). The presence of ASA to sperm head in follicular fluid (n=8) also reduced fertilization rate from 45.3% to 24.4% (p=O.0l3). However, ASA binding to sperm head in male serum and semen did not predict fertilization. Similarly, ASA binding to sperm tail and tail-tip did not reduced the oocyte fertilization rate significantly in any of the fluids tested. The zygote cleavage rate was not reduced in the presence of ASA. These results suggest that the presence of ASA to sperm head in female serum and follicular fluid is associated with reduced fertilization in IVF-ET. Another observation is that the oocyte that do fertilize in the presence of antisperm antibodies can subsequently proceed with normal cleavage. The results of this investigation therefore suggest that the IBT is a useful test forscreening of women participat.ing IVF-ET program.
The techniques of IVM, IVF and IVC of canine oocytes may provide useful information for gamete salvage programs and the conservation of endangered canidae. This investigation has been made to determine the efficiency of in vitro maturation (IVM) as a basic experiment to study the development of canine oocytes after in vitro fertilization (IVF). The rate of oocytes developing to the Mil stage was higher in the hormone treated group (10 IU/ml hCG+eCG, 14.7%, p<0.05) than in the control group (0 IU/ml hCG+eCG, 10.0%). The monospermy and pronuclear rates of canine oocytes were investigated after caffeine treatment on IVF. Canine oocytes were fertilized in the Fert-TALP medium supplemented with 0, 10, 20 or 30 mM caffeine (Fert I, Fert II, Fert III or Fert IV, respectively). The highest pronuclear formation rate was obtained in the Fert I for 24 h IVF (6.7%, 6/89). Therefore, it is believed that unlike in other mammals, caffeine in canine IVF does not increase the efficiency of fertilization rate, and is not an important factor.
Cytokines are protein mediators that possess the ability to assist cell-to-cell communication in immune system-related activities. In general, pathogen endotoxins activate the release of inflammatory mediators, and with time, there is an increase in the cytokine levels in the body. Interleukin (IL)-6 mediates the acute-phase inflammatory response, and elevated IL-6 levels have been reported in peritoneal fluids of women with pelvic inflammation and endometriosis, thereby associating it with oocyte quality and infertility. To overcome subfertility or infertility in humans and animals, the present study was done to examine the effect of recombinant IL-6 on porcine oocytes matured in vitro and subsequently to determine the fertilization rate and embryo development. Porcine oocytes were incubated with varying concentrations of IL-6 (0 - 2 ㎍·mL-1) for 44 h followed by in vitro fertilization and culturing of the oocytes. The oocytes or embryos were fixed with 3.7% paraformaldehyde (PFA) and stained with fluorescence dyes, and the meiotic spindle, chromosome organization, fertilization status and embryo development were subsequently assessed under a fluorescence microscope. We observed induction of an abnormal meiotic spindle alignment in the oocytes incubated with IL-6 compared to the control oocytes incubated without IL-6. Moreover, significantly decreased fertilization rates and embryo development were observed for oocytes incubated with IL-6 (p < 0.05). Thus, an increased IL-6 level during oocyte maturation could be associated with fertilization failure due to an aberrant chromosomal alignment and a disruption of the cortical granules. Taken together, our results indicate that successful assisted reproduction can be achieved by controlling the levels of inflammatory cytokines.
This study was carried out to investigate the effects of liquid boar sperm stored at 4$^{\circ}C$ on sperm motility, normal acrosome, and in-vitro fertilization and culture of pig oocytes matured in-vitro. The sperm-rich fraction (30~60 ml) of ejaculate was collected into an insulated vacuum bottle. Semen was slowly cooled to room temperature (20~23$^{\circ}C$) by 2 h after collection. Semen was transferred into 15 ml tubes, centrifuged at room temperature for 10 min at 800$\times$g, and the supernatant solution was poured off. The concentrated sperm was resuspended with 5 ml of lactose, egg yolk and N-acetyl-D-glucosamine (LEN) diluent to provide 1.0$\times$10$^{9}$ sperm/ml at room temperature. The resuspended semen was cooled in a refrigerator to 4$^{\circ}C$ and preserved for 5 days to examine sperm motility and normal acrosome. The medium used for oocyte maturation was modified tissue culture medium (TCM) 199. After about 22 h of culture, oocytes were cultured without cysteamine and hormones for 22 h at 38.5$^{\circ}C$, 5% $CO_2$ in air. Oocytes were inseminated with liquid boar sperm stored at 4$^{\circ}C$ for 2 days after collection. Oocytes were coincubated for 6 h in 500 ${mu}ell$ mTBM fertilization media with 0.2, 1, 5 and 10$\times$10$^{6}$ /ml sperm concentration, respectively. At 6 h after IVF, oocytes were transferred into 500 ${mu}ell$ Hepes-buffered NCSU-23 culture medium for further culture of 6, 48 and 144 h. There were significant differences in sperm motility and normal acrosome among preservation days and incubation times, respectively. The rates of sperm penetration and polyspermy were higher in 5 and 10$\times$10$^{6}$ sperm/ml than in 0.2 and 1$\times$10$^{6}$ sperm/ml. Male pronuclear formation was lower in 0.2$\times$10$^{6}$ sperm/ml than in 1, 5 and 10$\times$10$^{6}$ sperm/ml. Mean numbers of sperm in penetrated oocyte were highest in 10$\times$10$^{6}$ sperm/ml compared with other sperm concentrations. The rate of blastocysts from the cleaved oocytes (2~4 cell stage) was highest in 1$\times$10$^{6}$ sperm/ml compared with other sperm concentrations. In conclusion, we found out that liquid boar sperm stored at 4$^{\circ}C$ could be used for in-vitro fertilization of pig oocytes matured in-vitro. Also, we recommend 1$\times$10$^{6}$ ml sperm concentration for in-vitro fertilization of pig oocytes.
We compared fertilizing potential measurements by the zona-free hamster egg penetration assay with the in vitro fertilization and embryo transfer program was evaevulated for their ability to fertilize zona free hamster egg. Spermatozoa from 12 presumeably fertile donors and from the male partners of 56 infertile couples were evaluated for their ability to fertilizing potentials. Penertration rates of fertile donors were $36.2{\pm}27.7%$ ; Fertilization rates of infertile couples between with normal semen parameters and with abnormal semen parameters were $28.7{\pm}19.1$, $5.7{\pm}8.9%$, respectively. Sperm motility of couples with penetration rates between on 15-30% and on 30> were $54.1{\pm}4.6$, $55.5{\pm}8.3%$ respectively. Hamster penetration rates of couples participating in an in vitro fertilization and embryo transfer program was $38.9{\pm}29.9%$. But in one case, a positive fertility assessment was obtained in the absence of fertilization of the wife's eggs attributable to egg immaturity. This method may have potential value as a diagnostic tool in evaluation human sperm fertilization capacity which avoids the ethical and logistical problems associated with fertilizing of human eggs in vitro.
체외에서 포유동물의 난자와 정자의 배양에 관한 연구는 난자의 성숙과정과 수정현상에 대한 많은 새로운 정보를 제공하였다. 동시에 체외수정의 연구로부터 얻은 결과는 또다른 의문을 제기하였다. 특히 동결융해정액을 이용한 돼지체외수정의 경우 낮은 정자의 침입율과 전핵형성율 및 높은 다정자침입(polyspermy)율은 아직도 해결해야할 문제점으로 남아있다. 돼지난자의 성숙에 관한 연구의 성과는 수정후 낮은 전핵형성율을 개선시켰으나 타동물종에 비하면 아직도 매우 낮게 나타나고 있다. 한편 동결정액의 처리를 위하여 caffeine이나 Ca2+와 같은 물질을 수정용 배지내에 첨가하는 등 수정능력획득의 유기를 위하여 여러 가지 방법이 연구되고 있지만 정자의 침입율은 아직도 낮고, polyspermy의 발생율은 높게 나타내고 있다. 따라서 정자의 침입율을 향상시키고 polyspermy를 억제하기 위하여 난관세포와의 공동배양, 난포액을 첨가한 배양액 내에서 정자의 전배양 및 정자농도의 조절은 매우 효과적인 방법으로 이용되어왔다. 그러나 수정란의 체외생산성 향상과 이와 관련된 연구를 보다 효과적으로 수행하기 위해서는 위에서 지적한 문제에 영향을 미치는 요인에 대한 보다 근본적인 이해가 요구된다.
Objective : This study was designed to investigate the interrelationship and clinical usefulness of sperm morphology by strict criteria (SM), acrosome reaction following ionophore challenge test (ARIC) and sperm penetration assay (SPA) using zona-free hamster ova as prognostic factors in in vitro fertilization. Materials and Methods: Semen samples were provided by 83 patients undergoing IVF. We first evaluated the differences between normal fertilization group and poor fertilization group on three andrologic tests. Secondly, we analyzed the relationship between the three andrologic tests and in vitro fertilization on IVF settings. Finally, we evaluated the effectiveness of the three andrologic tests as the prognostic indicators for fertilizing ability. Results: The fertilization rate of all men in the poor fertilization group was less than 30%; but there was no evidence that this poor fertilization was due to oocyte defects. The results of three andrologic tests were significatly higher in normal fertilization group. Fertilization rate (%) in vitro was highly correlated (p<0.001) with % normal sperm by SM, ARIC value (%), and SPA result. By using Receiver-Operator-Characteristic curve (ROC), we evaluated the effectiveness of these three tests. The sensitivity and specificity of SM, ARIC test and SPA in predicting fertilization potential in IVF setting were 76% and 75%, 84% and 90%, and 76% and 95%, respectively. Conclusion: Our data suggest that the three andrologic tests can be reliable tools as prognostic factors of sperm fertilizing ability. Among these test, ARIC test and SPA gave more accurate information on fertilizing capacity. ARIC test was shown to have a predictive value for fertilizing ability comparable to that of SPA that appears to be a simple and cost-effective addition to current andrology laboratory. Combined application of these three tests may give more information on predicting sperm fertilizing capacity.
본 연구는 소형견의 불임 해결을 위해 미숙난자를 보존 후 이용할 수 있는지의 여부를 판명하기 위하여 미성숙 난포란을 시간별로 배양한 뒤 vitrification 동결 융해후 체외수정율과 생존율을 조사하였다. 1 미숙난포란을 회수 후 1, 6, 12, 24시간 성숙 배양 후vitrification동결 융해 후 체외수정 시켰을때 수정율은 각각 31.4%. 22.5%, 11.9% 및 5.3%로서 대조군의 수정율 60.0%에 비해 낮은 성적이었고, 회수 후 시간이 경과되지 않은 난포란이 높은 체외수정율을 나타냈다. 2. 미숙난포란을 회수 후 1, 6, 12 및 24시간 배양시킨 난포란을 vitrification 동결 융해 후 체외 수정시킨 배의 생존율은 각각 55.0%, 40.0%, 28.6% 및 17.1%로써 대조군의 76.7%에 비해 낮은 생존율을 나타냈다.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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