This study was carried out to develop an immunoassay for the diagnosis of the pregnancy and ovarian function of domestic animals. Using 2E92C10 monoclonal antibody(McAb) generated against estrone-3-glucuronide(E1-3-G) and appeared a high cross-reactivity with estrone-3-sulfate(E1-3-S), chemiluminesence immunoassay (CIA) to detect E1-3-S was developed. 2E92C10 McAb cross-reacted with E1-3-S (30%) was purified from ascites fluid using protein G sepharose gel column. The purity of purified antibody fraction was monitored by SDS-PAGE and was better compared to that of crude ascite fluid. The soild and liquid phase CIA for E1-3-S were established utilizing 2E92C10 antibody and E1-3-G-ABEI conjugate used as a tracer. As the results, the titer of 2E92C10 antibody was 5g/ml in soild phase and 1:2000 in liquid phase. The sensitivity on soild and solid phase CIA were about 200 pg/ml. These results indicate that CIA for measurement of E1-3-S was successfully developed by using ant-E1-3-G McAb cross-reacted with E1-3-S and could be usefully used to research this area.
Cancer serum biomarkers have advanced our ability to more accurately predict tumor classification, prognostic/metastatic potential, and response potential to novel chemotherapies. Serum amyloid A (SAA) and Vascular endothelial growth factor (VEGF) have potential utility as a serum biomarker for lung cancer. Quantum dots, nanometer-sized crystals, have a high quantum yield, sensitivity, and pronounced photostability. The properties of quantum dots can be efficiently applied to the detection of serum biomarkers in immunoassays as fluorescent probe. We used quantum dots as fluorescent probes in immunoassays and attempted to detect serum amyloid A and vascular endothelial growth factor as serum biomarkers of lung cancer. This fluorescence immunoassay based on the properties of quantum dots is applicable to the detection of serum biomarkers for lung cancer. The fluorescence immunoassay with quantum dots should allow the efficient and specific detection of serum amyloid A (SAA) for the possible diagnosis of lung cancer.
The development and performance of a competitive indirect immunoassay for the quantitative measurement of polychlorinated biphenyl compounds in insulating oils is presented. Reagent preparation and the assay characterisation, optimisation and validation steps are described. The dynamic range of the assay for Aroclors 1254 and 1260 in methanol was $50-800 {\mu}g\;ml^{-1}$ with $50\%$ signal inhibition values of 217 and $ 212 {\mu}g\;ml^{-1}$ respectively. Impending legislation in the UK is likely to decree that oils containing $ >50 {\mu}g\;ml^{-1}$ PCB be considered contaminated. Assay sensitivity increased with the degree of PCB chlorination. The assay of structurally related compounds of environmental concern yielded cross-reactivity values of under $0.6\%$. The immunoassay proved reliable for the analysis of transformer oils containing $>70{\mu}g\;ml^{-1}$ PCB, but over-estimated PCB levels in oils containing $<20{\mu}g\;ml^{-1}$ of the analyte with the oils requiring pre-treatment using either solid-phase extraction techniques or washing with KOH-ethanol/sulphuric acid to remove matrix interferents. The analytical performance of the assay was compared against a commercially available semi-quantitative immunoassay kit for PCBs in soil and water.
A sensitive and rapid enzyme immunoassay(EIA) to detect Escherichia coli O157 in ground beef was developed by using a sandwich type assay with polyclonal antibodies to E coli O157. E coli O157 in ground beef could be detected within 15hr, including incubation for 12hr in enrichment broth and 3hr in immunoassay. The EIA could detect $1.3{\times}10^5$ cells of E coli O157/g of ground beef without enrichment. The lowest limit of detection was 0.23 E coli O157 per g of meat after enrichment. Confirmation was required in the positive specimens in the EIA by culture method even though the negative specimens were not. These results suggested that the immunoassay could be a very efficient method for the screening E coli O157 in meat.
The pesticide is raising public interest in the world, because it causes damage to an environmental pollution and the human health remaining agricultural products and an ecosystem, in spite of the advantages. Particularly, each country restricts the residual pesticide and induces observance about the safety and usage standard so that they can control the amount of pesticide used and defend the safety of agricultural products. The habitual practice for the analysis of the residual pesticide depends on GC (gas chromatography), HPLC (high performance liquid chromatography) and GC/MS (gas chromatography/mass spectroscopy), which triturate the fixed quantity of samples, abstract and purify as a suitable organic solvent. These methods have the highly efficient in aspects of sensitivity and accuracy. On the other hand, they need the high cost, time consuming, much effort, expensive equipment and the skillful management. Carbofuran is highly toxic by inhalation and ingestion and moderately toxic by dermal absorption. As with other carbamate compounds, it is metabolized in the liver and eventually excreted in the urine. The half-life of carbofuran on crops is about 4 days when applied to roots, and longer than 4 days if applied to the leaves. This research was conducted to develop immunoassay for detecting carbofuran residue quickly on the basis of surface plasmon resonance and to evaluate the measurement sensitivity. Gold chip used was CM5 spreaded dextran on the surface. An applied antibody to Immunoassay was GST (glutathione-s-transferase). The association and the dissociation time were 176 second and 215 second between GST and carbofuran. The total analysis time using surface plasmon resonance was 13 minutes including regeneration time, on the other hand HPLC and GC/MS was 2 hours usually. The minimum detection limit of a permissible amount for carbofuran in the country is 0.1 ppm. The immunoassay method using surface plasmon resonance was 0.002 ppm.
Amygdalin is a cyanogenic glycoside compound which is commonly found in the pits of many fruits and raw nuts. Although amygdalin itself is not toxic, it can release cyanide (CN) after hydrolysis when the pits and nuts are crushed, moistened and incubated, possibly within the gastrointestinal tract. CN reversibly inhibits cellular oxidizing enzymes and cyanide poisoning generates a range of clinical symptoms. As some pits and nuts may contain unusually high levels of amygdalin such that there is a sufficient amount to induce critical CN poisoning in humans, the detection of abnormal content of amygdalin in those pits and nuts can be a life-saving measure. Although there are various methods to detect amygdalin in food extracts, an enzyme immunoassay has not been developed for this purpose. In this study we immunized New Zealand White rabbits with an amygdalin-KLH (keyhole limpet hemocyanin) conjugate and succeeded in raising anti-sera reactive to amygdalin, proving that amygdalin can behave as a hapten in rabbits. Using this polyclonal antibody, we developed a competition enzyme immunoassay for determination of amygdalin concentration in aqueous solutions. This technique was able to effectively detect abnormally high amygdalin content in various seeds and nuts. In conclusion, we proved that enzyme immunoassay can be used to determine the amount of amygdalin in food extracts, which will allow automated analysis with high throughput.
Recently, the importance of on-site detection of pathogens has drawn attention in the field of molecular diagnostics. Unlike in a laboratory environment, on-site detection of pathogens is performed under limited resources. In this study, we tried to optimize the experimental conditions for on-site detection of pathogens using a combination of ultra-fast convection polymerase chain reaction (cPCR), which does not require regular electricity, and nucleic acid lateral flow (NALF) immunoassay. Salmonella species was used as the model pathogen. DNA was amplified within 21 minutes (equivalent to 30 cycles of polymerase chain reaction) using ultra-fast cPCR, and the amplified DNA was detected within approximately 5 minutes using NALF immunoassay with nucleic acid detection (NAD) cassettes. In order to avoid false-positive results with NAD cassettes, we reduced the primer concentration or ultra-fast cPCR run time. For singleplex ultra-fast cPCR, the primer concentration needed to be lowered to $3{\mu}M$ or the run time needed to be reduced to 14 minutes. For duplex ultra-fast cPCR, $2{\mu}M$ of each primer set needed to be used or the run time needed to be reduced to 14 minutes. Under the conditions optimized in this study, the combination of ultra-fast cPCR and NALF immunoassay can be applied to on-site detection of pathogens. The combination can be easily applied to the detection of oral pathogens.
Lee Woo-Chang;Lim Sang-Soo;Choi Bum-Kyoo;Choi Jeong-Woo
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제16권8호
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pp.1216-1221
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2006
A protein array was fabricated for a miniaturized immunoassay using microcontact printing ($\mu$CP). A polydimethylsiloxane (PDMS) stamp with a 5 $\mu$m$\times$5 /$\mu$m dimension was molded from a silicon master developed by photolithography. Under optimal fabrication conditions, including the baking, incubation, and exposure time, a silicon master was successfully fabricated with a definite aspect ratio. An antibody fragment was utilized as the ink for the $\mu$CP, and transferred to an Au substrate because of the Au-thiol (-SH) interaction. The immobilization and antibody-antigen interaction were investigated with fluorescence microscopy. When human serum albumin (HSA) was applied to the protein array fabricated with an antibody against HSA, the detection limit was 100 pg/ml of HSA when using a secondary antibody labeled with a fluorescence tag. The fabricated protein array maintained its activity for 14 days.
This paper presents a basic concept of lab-on-a-chip systems and their advantages in chemical and biological analyses. In addition, magnetic bead-based immunoassay on a microfluidic system is also presented as a typical example of lab-on-chip systems. Rapid and low volume immunoassays have been successfully achieved on the demonstrated lab-on-a-chip using magnetic beads, which are used as both immobilization surfaces and bio-molecule carriers. Total time required for an immunoassay was less than 20 minutes including sample incubation time, and sample volume wasted was less than $50{\mu}l$ during five repeated assays. Lab-on-a-chip is becoming a revolutionary tool for many different applications in chemical and biological analysis due to its fascinating advantages (fast and low cost) over conventional chemical or biological laboratories. Furthermore, simplicity of lab-on-a-chip systems will enable self-testing capability for patients or health consumers overcoming space limitation.
We developed a simple method to determine benzodiazepines in biological samples using electron capature detectors and nitrogen-phosphorous detectors. The extraction of 13 benezodiazepines in urine at pH 9.5 with toluene and its analysis in GC/NPD showed the peaks in 9-16 min. In this retention time range, the biological backaground was fairly low and the drugs could be identified in low concentrations. The benzodiazepines in urine samples were screened by the fluorescence polarization immunoassay and positive samples were confirmed by the GC/NPD method.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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