Background: Dendritic cells (DCs) are the most potent APCs (antigen-presenting cells) and playa critical role in immune responses. Galectin-3 is a biological lectin with a beta-galactoside binding affinity. Recently, proteomic analysis revealed the presence of galectin-3 in the exosome of mature DCs. However, the expression and function of galectin-3 in DCs remains unclear yet. Methods: We used bone marrow-derived DCs of mouse and showed the expression of galectin-3 in DCs by using flow cytometry analysis and Western blot analysis. Results: Galectin-3 was determined as single band of 35 kDa in Western blot analysis. Flow cytometry analysis showed the major growth factor for DCs, granulocyte-macrophage colony stimulating factor (GM-CSF) and maturing agents, anti-CD40 monoclonal antibody (mAb) and lipopolysaccharide (LPS) consistently increased the intracellular expression of galectin-3 in DCs compared to medium alone. In addition, DCs treated with maturing agents did marginally express galectin-3 on their surface. Conclusion: This study suggests that galectin-3 in DCs may be regulated by critical factors for DC function.
In Caenorhabditis elegans, SHN-1 is the homologue of SHANK, a scaffolding protein. In this study, we determined the molecular basis for SHN-1/SHANK in the regulation of innate immune response to fungal infection. Mutation of shn-1 increased the susceptibility to Candida albicans infection and suppressed the innate immune response. After C. albicans infection for 6, 12, or 24 h, both transcriptional expression of shn-1 and SHN-1::GFP expression were increased, implying that the activated SHN-1 may mediate a protection mechanism for C. elegans against the adverse effects from fungal infection. SHN-1 acted in both the neurons and the intestine to regulate the innate immune response to fungal infection. In the neurons, GLR-1, an AMPA ionotropic glutamate receptor, was identified as the downstream target in the regulation of innate immune response to fungal infection. GLR-1 further positively affected the function of SER-7-mediated serotonin signaling and antagonized the function of DAT-1-mediated dopamine signaling in the regulation of innate immune response to fungal infection. Our study suggests the novel function of SHN-1/SHANK in the regulation of innate immune response to fungal infection. Moreover, our results also denote the crucial role of neurotransmitter signals in mediating the function of SHN-1/SHANK in regulating innate immune response to fungal infection.
Background: Cancer-associated fibroblasts (CAFs) are key components of the tumor microenvironment and significantly contribute to immune evasion. We investigated the effects of CAFs on the immune function of CD4+ and CD8+ T cells in non-small cell lung cancer (NSCLC). Methods: We isolated CAFs and normal fibroblasts (NFs) from tumors and normal lung tissues of NSCLC patients, respectively. CAFs were co-cultured with activated T cells to evaluate their immune regulatory function. We investigated the effect of CAF conditioned medium (CAF-CM) on the cytotoxicity of T cells. CAFs were also co-cultured with activated peripheral blood mononuclear cells and further incubated with cyclooxygenase-2 (COX2) inhibitors to investigate the potential role of COX2 in immune evasion. Results: CAFs and NFs were isolated from the lung tissues (n=8) and lymph nodes (n=3) of NSCLC patients. Immune suppressive markers, such as COX2 and programmed death-ligand 1 (PD-L1), were increased in CAFs after co-culture with activated T cells. Interestingly, CAFs promoted the expression of programmed death-1 in CD4+ and CD8+ T cells, and strongly inhibited T cell proliferation in allogenic and autologous pairs of CAFs and T cells. CAF-CM decreased the cytotoxicity of T cells. COX2 inhibitors partially restored the proliferation of CD4+ and CD8+ T cells, and downregulated the expression of COX2, prostaglandin E synthase, prostaglandin E2, and PD-L1 in CAFs. Conclusion: CAFs promote immune evasion by suppressing the function of CD4+ and CD8+ T cells via their effects on COX2 and PD-L1 in NSCLC. The immunosuppressive function of CAFs could be alleviated by COX2 inhibitors.
IL-1, a pleiotropic cytokine with profound effects on various cell types, particularly immune cells, plays a pivotal role in immune responses. The proinflammatory nature of IL-1 necessitates stringent control mechanisms of IL-1-mediated signaling at multiple levels, encompassing transcriptional and translational regulation, precursor processing, as well as the involvement of a receptor accessory protein, a decoy receptor, and a receptor antagonist. In T-cell immunity, IL-1 signaling is crucial during both the priming and effector phases of immune reactions. The fine-tuning of IL-1 signaling hinges upon two distinct receptor types; the functional IL-1 receptor (IL-1R) 1 and the decoy IL-1R2, accompanied by ancillary molecules such as the IL-1R accessory protein (IL-1R3) and IL-1R antagonist. IL-1R1 signaling by IL-1β is critical for the differentiation, expansion, and survival of Th17 cells, essential for defense against extracellular bacteria or fungi, yet implicated in autoimmune disease pathogenesis. Recent investigations emphasize the physiological importance of IL-1R2 expression, particularly in its capacity to modulate IL-1-dependent responses within Tregs. The precise regulation of IL-1R signaling is indispensable for orchestrating appropriate immune responses, as unchecked IL-1 signaling has been implicated in inflammatory disorders, including Th17-mediated autoimmunity. This review provides a thorough exploration of the IL-1R signaling complex and its pivotal roles in immune regulation. Additionally, it highlights recent advancements elucidating the mechanisms governing the expression of IL-1R1 and IL-1R2, underscoring their contributions to fine-tuning IL-1 signaling. Finally, the review briefly touches upon therapeutic strategies targeting IL-1R signaling, with potential clinical applications.
Insects mount a robust innate immune response against a wide array of microbial pathogens. The hallmark of the Drosophila humoral immune response is the rapid production of anti-microbial peptides in the fat body and their release into the circulation. Two recognition and signaling cascades regulate expression of these antimicrobial peptide genes. The Toll pathway is activated by fungal and many Gram-positive bacterial infections, whereas the immune deficiency (IMD) pathway responds to Gram-negative bacteria. Recent work has shown that the intensity and duration of the Drosophila immune response is tightly regulated. As in mammals, hyperactivated immune responses are detrimental, and the proper down-modulation of immunity is critical for protective immunity and health. In order to keep the immune response properly modulated, the Toll and IMD pathways are controlled at multiple levels by a series of negative regulators. In this review, we focus on recent advances identifying and characterizing the negative regulators of these pathways.
Recent technical advances have enabled unbiased transcriptomic and epigenetic analysis of each cell, known as "single-cell analysis". Single-cell analysis has a variety of technical approaches to investigate the state of each cell, including mRNA levels (transcriptome), the immune repertoire (immune repertoire analysis), cell surface proteins (surface proteome analysis), chromatin accessibility (epigenome), and accordance with genome variants (eQTLs; expression quantitative trait loci). As an effective tool for investigating robust immune responses in coronavirus disease 2019 (COVID-19), many researchers performed single-cell analysis to capture the diverse, unbiased immune cell activation and differentiation. Despite challenges elucidating the complicated immune microenvironments of chronic inflammatory diseases using existing experimental methods, it is now possible to capture the simultaneous immune features of different cell types across inflamed tissues using various single-cell tools. In this review, we introduce patient-based and experimental mouse model research utilizing single-cell analyses in the field of chronic inflammatory diseases, as well as multi-organ atlas targeting immune cells.
Pregnancy represents an immunological paradox where the maternal immune system must tolerate the semi-allogeneic fetus expressing paternally-derived Ags. Accumulating evidence over decades has revealed that successful pregnancy requires the active development of robust immune tolerance mechanisms. This review outlines the multi-layered processes that establish fetomaternal tolerance, including the physical barrier of the placenta, restricted chemokine-mediated leukocyte trafficking, lack of sufficient alloantigen presentation, the presence of immunosuppressive regulatory T cells and tolerogenic decidual natural killer cells, expression of immune checkpoint molecules, specific glycosylation patterns conferring immune evasion, and unique metabolic/hormonal modulations. Interestingly, many of the strategies that enable fetal tolerance parallel those employed by cancer cells to promote angiogenesis, invasion, and immune escape. As such, further elucidating the mechanistic underpinnings of fetal-maternal tolerance may reciprocally provide insights into developing novel cancer immunotherapies as well as understanding the pathogenesis of gestational complications linked to dysregulated tolerance processes.
Background: The expression of BRG1 associated factors (BAF) 155 and BAF 170 in response to $IFN-{\gamma}$ or $TNF-{\alpha}$ was studied in astrocytoma cell lines and primary astrocytes. BAFs are complexed with BRG1 and are also associated with activated glucocorticoid for glucocorticoid trans-activation. Methods: $IFN-{\gamma}$ was pretreated for 18 hrs and cells were incubated with IL-1 or $TNF-{\alpha}$ for 72 hrs or 96 hrs with different concentrations of steroid. Cell death was measured by LDH assay. BAF expression was assayed by RT-PCR. Results: $IFN-{\gamma}$ increased cell death by dexamethasone in LN215 cells but not in LN319 cells. The $IFN-{\gamma}$ increased the expression of BAF 155 and BAF 170 in adult astrocytes and LN215 cells, but $IFN-{\gamma}$ decreased the expression of BAF 155/170 in LN319 cells. The effect of $IFN-{\gamma}$ on the expression of BAF was not as clear in fetal astrocytes as it was in adult astrocytes. Conclusion: Our results suggest cytokines produced during immune reaction or immunotherapy may modulate steroid susceptibility of astrocytes and astrocytoma cells by influencing the expression of BAFs.
Kyung-Hee Kim;Sulhye Park;Jong-Won Park;Minhwan Jeong;Julan Kim;Hyejin Kim;Jeong-Ho Lee;Dain Lee
Development and Reproduction
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v.27
no.2
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pp.67-75
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2023
Polymeric immunoglobulin receptor (pIgR) mediates the transfer of polymeric immunoglobulin to protect organisms and is one of the most important mucosal effectors. In this study, the developmental stage- and tissue-specific expression of pIgR were observed before virus inoculation in olive flounder. pIgR was gradually expressed until the formation of immune tissue, exhibiting high expression in the late juvenile period; thereafter, pIgR expression gradually decreased and exhibited high expression in the spleen and skin. Moreover, pIgR expression after viral hemorrhagic septicemia virus infection was high in the kidney and spleen tissues at high density and low at low density. The results of this study can provide a basis for future studies on breeding density, virus expression, and immune system studies in fish.
Yang, Hyeonji;Choi, Kwanyong;Kim, Kyeong Jin;Park, Soo-yeon;Jeon, Jin-Young;Kim, Byung-Gon;Kim, Ji Yeon
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.32
no.2
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pp.228-237
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2022
In this study, the effects of the immune stimulator Euglena gracilis (Euglena) in cyclophosphamide (CCP)-induced immunocompromised mice were assessed. The key component β-1,3-glucan (paramylon) constitutes 50% of E. gracilis. Mice were orally administered Euglena powder (250 and 500 mg/kg body weight (B.W.)) or β-glucan powder (250 mg/kg B.W.) for 19 days. In a preliminary immunology experiment, ICR mice were intraperitoneally injected with 80 mg of CCP/kg B.W. during the final 3 consecutive days. In the main experiment, BALB/c mice were treated with CCP for the final 5 days. To evaluate the enhancing effects of Euglena on the immune system, mouse B.W., the spleen index, natural killer (NK) cell activity and mRNA expression in splenocytes lungs and livers were determined. To detect cytokine and receptor expression, splenocytes were treated with 5 ㎍/ml concanavalin A or 1 ㎍/ml lipopolysaccharide. The B.W. and spleen index were significantly increased and NK cell activity was slightly enhanced in all the experimental groups compared to the CCP-only group. In splenocytes, the gene expression levels of tumor necrosis factor-α, interferon-γ, interleukin (IL)-10, IL-6, and IL-12 receptor were increased in the E. gracilis and β-glucan groups compared to the CCP-only group, but there was no significant difference. Treatment with 500 mg of Euglena/kg B.W. significantly upregulated dectin-1 mRNA expression in the lung and liver compared to the CCP-only group. These results suggest that Euglena may enhance the immune system by strengthening innate immunity through immunosuppression.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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