It has been more than a year since severe acute respiratory syndrome coronavirus 2 (SARS-CoV-2) first emerged. Many studies have provided insights into the various aspects of the immune response in coronavirus disease 2019 (COVID-19). Especially for antibody treatment and vaccine development, humoral immunity to SARS-CoV-2 has been studied extensively, though there is still much that is unknown and controversial. Here, we introduce key discoveries on the humoral immune responses in COVID-19, including the immune dynamics of antibody responses and correlations with disease severity, neutralizing antibodies and their cross-reactivity, how long the antibody and memory B-cell responses last, aberrant autoreactive antibodies generated in COVID-19 patients, and the efficacy of currently available therapeutic antibodies and vaccines against circulating SARS-CoV-2 variants, and highlight gaps in the current knowledge.
Bone marrow is a hematological and immunological organ that provides multiple immune cells, including B lymphocytes, and thus plays a critical role in the efficacy of vaccine. We previously demonstrated that Bordetella (B.) bronchiseptica antigen has high immunogenicity in spleen cells, a peripheral immune organ. In this study, we investigated the immunogenicity of B. bronchiseptica antigen in bone marrow cells, a central immune organ. B. bronchiseptica antigen increased the cellular activity of bone marrow cells and significantly enhanced the production of nitric oxide, IL-6, and TNF-${\alpha}$. Bone marrow cells primed with B. bronchiseptica antigen in vivo were harvested and stimulated with the same antigen in vitro. The stimulation of B. bronchiseptica antigen significantly increased the cellular activity and proliferation rate of the primed cells. B. bronchiseptica antigen also greatly induced the production of antigen-specific antibody in the primed cells. Taken together, the present study demonstrated that B. bronchiseptica antigen can stimulate bone marrow cells, a central immune organ, and recall the immune response of the primed bone marrow cells.
Hye Young Kim;Dongjin Jeong;Ji Hyung Kim;Doo Hyun Chung
IMMUNE NETWORK
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제24권1호
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pp.6.1-6.17
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2024
The intricate role of innate type-2 cytokines in immune responses is increasingly acknowledged for its dual nature, encompassing both protective and pathogenic dimensions. Ranging from defense against parasitic infections to contributing to inflammatory diseases like asthma, fibrosis, and obesity, these cytokines intricately engage with various innate immune cells. This review meticulously explores the cellular origins of innate type-2 cytokines and their intricate interactions, shedding light on factors that amplify the innate type-2 response, including TSLP, IL-25, and IL-33. Recent advancements in therapeutic strategies, specifically the utilization of biologics targeting pivotal cytokines (IL-4, IL-5, and IL-13), are discussed, offering insights into both challenges and opportunities. Acknowledging the pivotal role of innate type-2 cytokines in orchestrating immune responses positions them as promising therapeutic targets. The evolving landscape of research and development in this field not only propels immunological knowledge forward but also holds the promise of more effective treatments in the future.
Plasmid DNA vaccines encoding the hepatitis B virus (HBV) surface and hepatitis C virus (HCV) envelope antigens, respectively, were constructed, and attempt were made to find the possibility of a divalent vaccine against HBV and HCV. The expression of each plasmid in Cos-1 cells was confirmed using immunocytochemistry. To measure the induced immune response by these plasmids in vivo, female BALB/c mice were immunized intramuscularly with $100\;{\mu}g$ of either both or just one of the plasmids. Anti-HBV and HCV-specific antibodies and related cytokines were evaluated to investigate the generation of both humoral and cellular immune responses. As a result, specific anti-HBV and anti-HCV serum antibodies from mice immunized with these plasmids were observed using immunoblot. The levels of IL-2 and RANTES showing a $Th_{1}$ immune response were significantly increased, but there was no change in the level of IL-4 ($Th_{1}$ immune response) in any of the immunized groups. Compared with each plasmid DNA vaccine, the combined vaccine elicited similar immune responses in both humoral and cell-mediated immunities. These results suggest that the combined DNA vaccine can induce not only comparable immunity experimentally without antigenic interference, but also humoral and $Th_{1}$ dominant cellular immune responses. Therefore, they could serve as candidates for a simultaneous bivalent vaccine against HBV and HCV infections.
Foot-and-mouth disease virus (FMDV) is a small single-stranded RNA virus which belongs to the family Picornaviridae, genus Apthovirus. It is a principal cause of FMD which is highly contagious in livestock. In a wild type virus infection, infected animals usually elicit antibodies against structural and non-structural protein of FMDV. A structural protein, VP1, is involved in neutralization of virus particle, and has both B and T cell epitopes. A RNA-dependent RNA polymerase, 3D, is highly conserved among other serotypes and strongly immunogenic, therefore, we selected VP1 and 3D as vaccine targets. VP1 and 3D genes were codon-optimized to enhance protein expression level and cloned into mammalian expression vector. To produce recombinant protein, VP1 and 3D genes were also cloned into pET vector. The VP1 and 3D DNA or proteins were co-immunized into 5 weeks old BALB/C mice. Antigen-specific serum antibody (Ab) responses were detected by Ab ELISA. Cellular immune response against VP1 and 3D was confirmed by ELISpot assay. The results showed that all DNA- and protein-immunized groups induced cellular immune responses, suggesting that both DNA and recombinant protein vaccine administration efficiently induced Ag-specific humoral and cellular immune responses.
Kim, Min Ki;Lee, Ara;Hwang, Yu Kyeong;Kang, Chang-Yuil;Ha, Sang-Jun
IMMUNE NETWORK
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제14권4호
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pp.207-218
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2014
Chronic virus infection leads to the functional impairment of dendritic cells (DCs) as well as T cells, limiting the clinical usefulness of DC-based therapeutic vaccine against chronic virus infection. Meanwhile, B cells have been known to maintain the ability to differentiate plasma cells producing antibodies even during chronic virus infection. Previously, ${\alpha}$-galactosylceramide (${\alpha}GC$) and cognate peptide-loaded B cells were comparable to DCs in priming peptide-specific $CD8^+$ T cells as antigen presenting cells (APCs). Here, we investigated whether B cells activated by ${\alpha}GC$ can improve virus-specific T cell immune responses instead of DCs during chronic virus infection. We found that comparable to B cells isolated from naïve mice, chronic B cells isolated from chronically infected mice with lymphocytic choriomeningitis virus (LCMV) clone 13 (CL13) after ${\alpha}GC$-loading could activate CD1d-restricted invariant natural killer T (iNKT) cells to produce effector cytokines and upregulate co-stimulatory molecules in both naïve and chronically infected mice. Similar to naïve B cells, chronic B cells efficiently primed LCMV glycoprotein (GP) 33-41-specific P14 $CD8^+$ T cells in vivo, thereby allowing the proliferation of functional $CD8^+$ T cells. Importantly, when ${\alpha}GC$ and cognate epitope-loaded chronic B cells were transferred into chronically infected mice, the mice showed a significant increase in the population of epitope-specific $CD8^+$ T cells and the accelerated control of viremia. Therefore, our studies demonstrate that reciprocal activation between ${\alpha}GC$-loaded chronic B cells and iNKT cells can strengthen virus-specific T cell immune responses, providing an effective regimen of autologous B cell-based therapeutic vaccine to treat chronic virus infection.
Marek's disease virus(MDV) is a highly cell-associated, lymphotropic $\alpha$-herpesvirus that causes paralysis and neoplastic disease in chickens. The disease has been controlled by vaccination which was provided the first evidence for a malignant cancer being controlled by an antiviral vaccine. Marek's disease pathogenesis is complex, involving cytolytic and latent infection of lymphoid cells and oncogenic transformation of $CD4^+$ T cells in susceptible chickens. MDV targets a number of different cell types during its life cycle. Lymphocytes play an essential role, although within them virus production is restricted and only virion are produced. Innate and adaptive immune responses develop in response to infection, but infection of lymphocytes results in immunosuppressive effects. Hence in MDV-infected birds, MDV makes its host more vulnerable to tumour development as well as to other pathogens. All chickens are susceptible to MDV infection, and vaccination is essential to protect the susceptible host from developing clinical disease. Nevertheless, MDV infects and replicates in vaccinated chickens, with the challenge virus being shed from the feather-follicle epithelium. The outcome of infection with MDV depends on a complex interplay of factors involving the MDV pathotype and the host genotype. Host factors that influence the course of MD are predominantly the responses of the innate and adaptive immune systems, and these are modulated by: age at infection and maturity of the immune system; vaccination status; the sex of the host; and various physiological factors.
Toxoplasma gondii can infect all the vertebrates including human, and leads to serious toxoplasmosis and considerable veterinary problems. T. gondii heat shock protein 60 (HSP60) is associated with the activation of antigen presenting cells by inducing initial immune responses and releasing inflammatory cytokines. It might be a potential DNA vaccine candidate for this parasite. A pVAX-HSP60 DNA vaccine was constructed and immune responses was evaluated in Kunming mice in this study. Our data indicated that the innate and adaptive immune responses was elicited by successive immunizations with pVAX-HSP60 DNA, showing apparent increases of CD3e+CD4+ and CD3e+CD8a+ T cells in spleen tissues of the HSP60 DNA-immunized mice ($24.70{\pm}1.23%$ and $10.90{\pm}0.89%$, P<0.05) and higher levels of specific antibodies in sera. Furthermore, the survival period of the immunized mice ($10.53{\pm}4.78day$) were significantly prolonged during the acute T. gondii infection. Decrease of brain cysts was significant in the experimental group during the chronic infection (P<0.01). Taken together, TgHSP60 DNA can be as a vaccine candidate to prevent the acute and chronic T. gondii infections.
Background: Korean Red Ginseng (KRG; Panax ginseng Meyer) is a widely used medicinal herb known to exert various immune modulatory functions. KRG and one of its purified components, ginsenoside Rg3, are known to possess anti-inflammatory activities. How they impact helper T cell-mediated responses is not fully explored. In this study, we attempted to evaluate the effect of KRG extract (KRGE) and ginsenoside Rg3 on Th1 cell responses. Methods: Using well-characterized T cell in vitro differentiation systems, we examined the effects of KRGE or enhanced Rg3 on the Th1-inducing cytokine production from dendritic cells (DC) and the naïve $CD4^+$ T cells differentiation to Th1 cells. Furthermore, we examined the change of Th1 cell population in the intestine after treatment of enhanced Rg3. The influence of KRGE or enhanced Rg3 on Th1 cell differentiation was evaluated by fluorescence-activated cell sorting, enzyme-linked immunosorbent assay, and quantitative real-time polymerase chain reaction. Results: KRGE significantly inhibited the production level of IL-12 from DCs and subsequent Th1 cell differentiation. Similarly, enhanced Rg3 significantly suppressed the expression of interferon gamma ($IFN{\gamma}$) and T-bet in T cells under Th1-skewing condition. Consistent with these effects in vitro, oral administration of enhanced Rg3 suppressed the frequency of Th1 cells in the Peyer's patch and lamina propria cells in vivo. Conclusion: Enhanced Rg3 negatively regulates the differentiation of Th1 cell in vitro and Th1 cell responses in the gut in vivo, providing fundamental basis for the use of this agent to treat Th1-related diseases.
Plant-based protein sources such as soybean meal have low digestibility and are generally promoted accumulation of undigested proteins into the intestine by enzymatic treatments. Moreover, potential intestinal pathogens ferment undigested proteins, producing harmful substances, such as ammonia, amines and phenols, leading to an overactive immune response and diarrhea in weaned pigs. As a solution, dietary proteases hydrolyze soybean-based antinutritive factors, which negatively affect immune responses and gut microbiota. In this study, we investigated the effects of dietary proteases (PRO) in a low-crude protein (CP) commercial diet on the immune responses and gut microbiota of weaned pigs. The experimental design consisted of three dietary treatments: a commercial diet as a positive control (PC; phase1 CP = 23.71%; phase 2 CP: 22.36%), a lower CP diet than PC as negative control (NC; 0.61% less CP than PC), and NC diet supplement with 0.02% PRO. We found that PRO tended to decrease the frequency of diarrhea in the first two weeks after weaning compared with PC and NC. In addition, pigs fed PRO showed decreased TNF-α and TGF-β1 levels compared with those fed PC and NC. The PRO group had a higher relative proportion of the genus Lactobacillus and lower levels of the genus Streptococcus than the PC and NC groups. In conclusion, the addition of PRO to a low CP commercial weaned diet attenuated inflammatory responses and modified gut microbiota in weaned pigs.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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