To isolate a calcium-binding peptide from chlorella protein hydrolysates, chlorella protein was extracted and hydrolyzed using Flavourzyme, a commercial protease. The degree of hydrolysis and calcium-binding capacity were determined using trinitrobenzenesulfonic acid and orthophenanthroline methods, respectively. The enzymatic hydrolysis of chlorella protein for 6 hr was sufficient for the preparation of chlorella protein hydrolysates. The hydrolysates of chlorella protein were then ultra-filtered under 5 kDa as molecular weight. The membrane-filtered solution was fractionated using ion exchange, reverse phase, normal phase chromatography, and fast protein liquid chromatography to identify a calcium-binding peptide. The purified calcium-binding peptide had a calcium binding activity of 0.166 mM and was determined to be 700.48 Da as molecular weight, and partially identified as a peptide containing Asn-Ser-Gly-Cys based on liquid chromatography/electrospray ionization tandem mass spectrum.
In the present study, two kinds of D-xylanases (1, 4-$\beta$-D-xylan xylanohydrolase (EC 3.2.1.8) were purified and characterized from crude extract of Aspergillus niger KG79. Xylanase I was most active at pH 5.0, whereas xylanse II at pH 4.0 Both enzymes demonstrated their maximum activity at 45$^{\circ}C$. They were relatively stable between pH 4.0 and 6.0 at 3$0^{\circ}C$ for 6 hours. Molecular weight of xylanse I and II were 12, 500 and 11, 500, respectively. Michaelis-Menten constants of xylanse I and II were 0.28% and 0.26% of xylan, respectively. Both enzymes could degrade commercial D-xylan to xylose, xylobiose, and xylotriose to the degree of about 10% of total reducing power. Xylanse I could, however, liberate arabinose from barley straw xylan in addition to xylose and xylooligasaccharides more rapidly than xylanase II. The degree of hydrolysis was about 25%. The reconstituted D-xylanase system with purified xylanases and $\beta$-xylosidase degraded commercial xylan and barley straw xylan to the degree of 28% and 54% respectively. The limit of hydrolysis by the enzymes was suggested to be resulted from the physical structure of the substrate.
The objectives of this study were to evaluate a protease suitable for the enzymatic hydrolysis of a snow crab processing by-product (SPB) and to optimize the hydrolysis conditions using response surface methodology (RSM). The SPB was hydrolyzed at $50^{\circ}C$ and pH 7.0-7.2 to obtain various degree of hydrolysis (DH) using Flavourzyme at an enzyme/substrate (E/S) ratio of 3.0%. The reaction progress curve exhibited an initial fast reaction rate followed by a slowing of the rate. The DH was increased to 30% at 90 min with a final DH 32 to 36%. A central composite experimental design having three independent variables (reaction temperature, reaction time, and E/S ratio) with five levels was used to optimize the enzymatic hydrolysis conditions. Based on the DH data, the optimum reaction conditions for the enzymatic hydrolysis of the SPB were a temperature of $51.8^{\circ}C$, reaction time of 4 hr 45 min, and an E/S ratio of 3.8%. It was demonstrated that the enzymatic hydrolysate of SPB could be used as a flavoring agent or a source of precursors for the production of reaction flavors.
The purpose of this study was to determine the optimum hydrolysis conditions for the production of enzymatic hydrolysate from tuna boiled extract (TBE) using membrane (molecular weight cut off 10,000Da) reator. The tuna pyloric caeca crude enzyme (TPCCE) was identified as the most suitable enzymes for the hydrolysis of TBE. The optimum hydrolysis conditions of TBE in the batch reactor were $40^{\circ}C$, pH 9 and substrate to TPCCE ratio 50 (w/w). For 6hr under the above conditions, $70\%$ of the total amount of initial TBE was hydrolysed. The optimum hydrolysis conditions of TBE in the membrane reactor were $40^{\circ}C$, pH 9, enzyme 0,1 g/$\ell$, volume 1$\ell$ and substrate to enzyme ratio 100(w/w). The degree of hydrolysis of TBE was above $60\%$ for 3 hr. The TBE hydrolysate were prepared with $5\%$ TBE solution under the optimum hydrolytic conditions in the membrane reactor
The debranching enzyme of Nostoc punctiforme (NPDE) is a novel enzyme that catalyzes the hydrolysis of $\alpha$-1,6-glycosidic linkages in starch, followed by the sequential hydrolysis of $\alpha$-1,4-glycosidic linkages. The debranching activity of NPDE is highly specific for branched chains with a degree of polymerization (DP)>8. Moreover, the rate of hydrolysis of $\alpha$-1,4-linkages by NPDE is greatly enhanced for maltooligosaccharides (MOs) with a DP>8. An analysis of reaction mixtures containing various starches revealed the accumulation of maltooctaose (G8) with glucose and maltose. Based on the novel enzymatic properties of NPDE, an MO mixture containing more than 60% G8 with yield of 18 g G8 for 100 g starch was prepared by the reaction of NPDE with soluble starch, followed by ethanol precipitation and gel permeation chromatography (GPC). The yield of the G8-rich mixture was significantly improved by the addition of isoamylase. In summary, a 4-step process for the production of a G8-rich mixture was developed involving the enzymatic hydrolysis of starch by NPDE.
Cho, Dae-Yeon;Jo, Kyungae;Cho, So Young;Kim, Jin Man;Lim, Kwangsei;Suh, Hyung Joo;Oh, Sejong
Food Science of Animal Resources
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v.34
no.3
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pp.362-371
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2014
This study utilized commercially available proteolytic enzymes to prepare egg-white protein hydrolysates (EPHs) with different degrees of hydrolysis. The antioxidant effect and functionalities of the resultant products were then investigated. Treatment with Neutrase yielded the most ${\alpha}$-amino groups (6.52 mg/mL). Alcalase, Flavourzyme, Protamex, and Ficin showed similar degrees of ${\alpha}$-amino group liberation (3.19-3.62 mg/mL). Neutrase treatment also resulted in the highest degree of hydrolysis (23.4%). Alcalase and Ficin treatment resulted in similar degrees of hydrolysis. All hydrolysates, except for the Flavourzyme hydrolysate, had greater radical scavenging activity than the control. The Neutrase hydrolysate showed the highest 2,2-azino-bis-(3-ethylbenzothiazoline-6-sulfonic acid) (ABTS) radical scavenging activity ($IC_{50}=3.6mg/mL$). Therefore, Neutrase was identified as the optimal enzyme for hydrolyzing egg-white protein to yield antioxidant peptides. During Neutrase hydrolysis, the reaction rate was rapid over the first 4 h, and then subsequently declined. The $IC_{50}$ value was lowest after the first hour (2.99 mg/mL). The emulsifying activity index (EAI) of EPH treated with Neutrase decreased, as the pH decreased. The EPH foaming capacity was maximal at pH 3.6, and decreased at an alkaline pH. Digestion resulted in significantly higher 1,1-diphenyl-2-picrylhydrazyl (DPPH) and ABTS radical scavenging activity. The active peptides released from egg-white protein showed antioxidative activities on ABTS and DHHP radical. Thus, this approach may be useful for the preparation of potent antioxidant products.
The relationship between the molecular structure of acid-hydrolyzed rice starch and the retrogradation rate of starch gel was investigated. The molecular structure of starch was modified by acid hydrolysis with 1 N HCl at $35^{\circ}C$. The molecular weight of starch decreased as acid hydrolysis time was increased. At the early stage of hydrolysis up to 3 hr, the branching point of amylopectin was degraded and thereafter both ${\alpha}-1,4\;and\;{\alpha}-1,6$ linkages were hydrolyzed. The starch gel (50%) stored at $20^{\circ}C$ revealed that the rapid retrogradation occurred during 4 hr of storage which was more pronounced as the hydrolysis time increased. The degree of retrogradation of starch gels after 4 hr storage showed a linear relationship with the yield of hydrolyzate. These results suggested that the retrogradation of starch gel was accelerated by degradation of ${\alpha}-1,6$ linkages with acid.
This study was performed to understand the behavior of protein mobility and intensity of enzymatic hydrolysis according to crosslinking of sodium caseinate, whey protein isolate, skim milk and whole milk powders with or without transglutaminase (TGase, w/w = 200 : 1) at $38^{\circ}C$. Whey protein was limited to crosslinking and skim milk was relatively more increased in high molecular polymer than whole milk. The degree of crosslinking decreased in the order of sodium caseinate>skim milk>whole milk>whey protein isolate. The SDS-PAGE results indicated that main bands of TGase treated samples had a high mobility and formed bands of molecular weights below 15 kDa by hydrolysis with pepsin after 10 min of reaction time. However, ${\beta}-lactoglobulin$ showed remarkable stability against pepsin hydrolysis treated with and without TGase. The high molecular polymers were easily hydrolyzed with digestive enzymes in vitro experiment. These results suggested that novel dairy products using TGase would have no special digestive problem in human body.
A two-step method for obtaining poly(N-isopropylacrylamide) (PNIPAAm) from poly(acrylonitrile) (PAN) was investigated in order to find a feasibility of imparting thermo-responsive property onto textile fiber materials. PAN was converted to poly(acrylic acid) (PAA) by hydrolysis at a first-step, and then PAA was converted to PNIPAAm at a second step via an amidation reaction of PAA with isopropylamine (IPA) in DMF medium using 1-ethyl-3-(3-dimethylaminopropyl) carbodiimide hydrochloride (EDC) and N-hydroxysuccinimide (NHS) as catalysts. High content of carboxylic groups at the first step was obtained by the successive alkaline and acid hydrolysis of PAN. The degree of conversion of PAA to PNIPAAm at the second step was dependent on the amount of catalysts EDC and NHS. PNIPAAm converted from PAA through amidation reaction showed a lower critical solution temperature (LCST) behavior when the conversion was higher than about 53%.
Journal of the Korea Organic Resources Recycling Association
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v.29
no.4
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pp.99-106
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2021
The purpose of this study was to evaluate the performance of novel process with thermal hydrolysis and separation as pre-treatment of anaerobic digestion (AD). The dewatered sludge was pre-treated using THP, and then separated. The separated liquid used as substrate for AD and separated solid was returned on THP(Thermal Hydrolysis Process). The degree of disintegration (DD, based on COD) using only THP found 45.1-49.3%. The DD using THP+separation found 76.1-77.6%, which was higher than only THP. As result from dual-pool two-step model, the ratio of rapidly degradable substrate to total degradable substrate found 0.891-0.911 in separated liquid, which was higher than only THP. However, the rapidly degradable substrate reaction constant (kF) of only THP and THP+separation were similar. This results found that dewatered sludge was disintegrated by THP, and then rapidly degradable substrate of hydrolyzed sludge was sorted by separation.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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