Quan, Yan Shi;Naruse, Kenji;Choi, Su-Min;Kim, Myung-Youn;Han, Rong-Xun;Park, Chang-Sik;Jin, Dong-Il
Reproductive and Developmental Biology
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v.32
no.4
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pp.249-253
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2008
Interspecies somatic cell nuclear transfer (iSCNT) is a valuable tool for studying the interactions between an oocyte and somatic nucleus. The object of this study was to investigate the developmental competence of in vitro-matured porcine oocytes after transfer of the somatic cell nuclei of 2 different species (goat and rabbit). Porcine cumulus oocytes were obtained from the follicles of ovaries and matured in TCM-199. The reconstructed embryos were electrically fused with 2 DC pulses of 1.1kV/cm for $30{\mu}s$ 0.3M mannitol medium. The activated cloned embryos were cultured in porcine zygote medium-3 (PZM-3), mSOF or RDH medium for 7 days. The blastocyst formation rate of the embryos reconstructed from goat or rabbit fetal fibroblasts was significantly lower than that of the embryos reconstructed from porcine fetal fibroblast cells. However, a significantly higher number of embryos reconstructed from goat or rabbit fetal fibroblasts cultured in mSOF or RDH, respectively, developed to the morular stage than those cultured in PZM-3. These results suggest that goat and bovine fetal fibroblasts were less efficacious than porcine-porcine cloned embryos and that culture condition could be an important factor in iSCNT. The lower developmental potential of goat-porcine and porcine-bovine cloned embryos may be due to incompatibility between the porcine oocyte cytoplasm and goat and bovine somatic nuclei.
Kim, Bae-Chul;Han, Rong-Xun;Kim, Myung-Yoon;Shin, Young-Min;Park, Chang-Sik;Jin, Dong-Il
Reproductive and Developmental Biology
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v.33
no.2
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pp.107-111
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2009
The transfection efficiency of a transgene into pig and goat fetal fibroblast cells (PFF and GFF, respectively) was tested using co-transfection of a human tissue-type plasminogen activator (tPA) transgene and neomycin-resistant ($Neo^r$) gene, followed by G418 selection. To initially test G418 resistance, GFF and PFF were incubated in culture medium containing different concentration of G418 for 2 weeks, and cell survival was monitored over time. Based on the obtained results, the concentrations chosen for G418 selection were 800 ug/ml and 200 ug/ml for GFF and PFF, respectively. For co-transfection experiments, the pBC1/tPA and $Neo^r$ vectors were co-transfected into GFF and PFF ($1{\times}10^6$ cells in each case) using the FuGENE6 transfection reagent, and resistant colonies were obtained following 14 days of G418 selection. We obtained 96 and 93 drug-resistant colonies of GFF and PFF, respectively, only 54 and 39 of which, respectively, continued proliferating after drug selection. PCR-based screening revealed that 23 out of 54 analyzed GFF colonies and 5 out of 39 analyzed PFF colonies contained insertion of the tPA gene. Thus, the experimentally determined transfection efficiencies for tPA gene co-transfection with the $Neo^r$ gene were 42.6% for GFF and 12.8% for PFF. These findings suggest that co-transfection of a transgene with the $Neo^r$ gene can aid in the successful integration of the transgene into fetal fibroblast cells.
Ras homolog enriched in brain (Rheb) and FK506 binding protein 38 (FKBP38) are two important regulatory proteins in the mammalian target of rapamycin (mTOR) pathway. There are contradictory data on the interaction between Rheb and FKBP38 in human cells, but this association has not been examined in cashmere goat cells. To investigate the interaction between Rheb and FKBP38, we overexpressed goat Rheb and FKBP38 in goat fetal fibroblasts, extracted whole proteins, and performed coimmunoprecipitation to detect them by western blot. We found Rheb binds directly to FKBP38. Then, we constructed bait vectors (pGBKT7-Rheb/FKBP38) and prey vectors (pGADT7-Rheb/FKBP38), and examined their interaction by yeast two-hybrid assay. Their direct interaction was observed, regardless of which plasmid served as the prey or bait vector. These results indicate that the 2 proteins interact directly in vivo. Novel evidence is presented on the mTOR signal pathway in Cashmere goat cells.
p70 ribosomal S6 kinase (p70S6K) can integrate nutrient and growth factor signals to promote cell growth and survival. We report our molecular characterization of the complementary DNA (cDNA) that encodes the goat p70S6K gene 40S ribosomal S6 kinase 1 (S6K1) (GenBank accession GU144017) and its 3' noncoding sequence in Inner Mongolia Cashmere goats (Capra hircus). Goat S6K1 cDNA was 2,272 bp and include an open reading frame (ORF) of 1,578 bp, corresponding to a polypeptide of 525 amino acids, and a 694-residue 3' noncoding sequence with a polyadenylation signal at nucleotides 2,218 to 2,223. The relative abundance of S6K1 mRNA was measured by real-time PCR in 6 tissues, and p70S6K expression was examined by immunohistochemistry in heart and testis. The phosphorylation of p70S6K is regulated by mitogen-activated protein kinase (MAPK) signaling in fetal fibroblasts.
Insulin-like growth factor-binding protein-5 (IGFBP-5) is one of the six members of IGFBP family, important for cell growth, apoptosis and other IGF-stimulated signaling pathways. In order to explore the significance of IGFBP-5 in cells of the Inner Mongolian Cashmere goat (Capra hircus), IGFBP-5 gene complementary DNA (cDNA) was amplified by reverse transcription polymerase chain reaction (RT-PCR) from the animal's fetal fibroblasts and tissue-specific expression analysis was performed by semi-quantitative RT-PCR. The gene is 816 base pairs (bp) in length and includes the complete open reading frame, encoding 271 amino acids (GenBank accession number JF720883). The full cDNA nucleotide sequence has a 99% identity with sheep, 98% with cattle and 95% with human. The amino acids sequence shares identity with 99%, 99% and 99%, respectively. The bioinformatics analysis showed that IGFBP-5 has an insulin growth factor-binding protein homologues (IB) domain and a thyroglobulin type-1 (TY) domain, four protein kinase C phosphorylation sites, five casein kinase II phosphorylation sites, three prenyl group binding sites (CaaX box). The IGFBP-5 gene was expressed in all the tested tissues including testis, brain, liver, lung, mammary gland, spleen, and kidney, suggesting that IGFBP-5 plays an important role in goat cells.
Yoon, Ji Young;Kwon, Mo Sun;Kang, Jee Hyun;Ahn, Kwang Sung;Kim, So Seob;Kim, Nam-Hyung;Kim, Jin-Hoi;Kim, Teoan;Shim, Hosup
Asian-Australasian Journal of Animal Sciences
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v.22
no.2
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pp.168-173
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2009
Human follicle-stimulating hormone (hFSH) is a pituitary glycoprotein that regulates follicular development and ovulation. Clinically, hFSH has been used to induce follicular growth in infertile women. The hormone is composed of heterodimers, including a common ${\alpha}$ subunit among the gonadotropin family and a hormone-specific ${\beta}$ subunit. Since assembly of the heterodimer is a rate-limiting step in the production of functional hFSH, transgenic clone cows carrying a single-chain hFSH transgene may efficiently produce functional hormone. Genes encoding the ${\alpha}$ and ${\beta}$ subunits of hFSH were linked using the C-terminal peptide sequence from the ${\beta}$ subunit of human chorionic gonadotropin. Bovine fetal fibroblasts were transfected with the gene construct, including the goat ${\beta}$-casein promoter and a single-chain hFSH coding sequence. Transfected fibroblasts were transferred into enucleated oocytes, and individual nuclear transfer (NT) embryos developed to the blastocyst stage were analyzed for the transgene by polymerase chain reaction. Seventy eight blastocysts (30.8%) were developed from 259 reconstructed embryos. Among these blastocysts, the hFSH gene was detected in 70.8% (34/48) of the embryos. Subsequent transfer of hFSH-transgenic clone embryos to 31 recipients results in 11 (35.5%) early pregnancies. However, all fetuses were lost before reaching day 180 of gestation. The results from this study demonstrated that bovine NT embryos carrying single-chain hFSH could be produced, and further extensive studies in which NT embryos are transferred to more recipients may give rise to single chain hFSH-transgenic cows for biomedical applications.
Park H.S.;Kim T.S.;Jung S.Y.;Park J.K.;Lee J.S.;Jung J.Y.
Journal of Embryo Transfer
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v.21
no.2
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pp.137-146
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2006
The objective of this study was to examine the effect of donor cell types, the source of recipient oocytes and estrous synchronization on pregnancy and delivery rates of somatic cell nuclear transfer (SCNT) embryos in Korean native goats. Recipient oocytes were surgically collected after superovulation. Ear cells and fetal fibroblasts were collected and cultured in serum-starvation condition (TCM-199 + 0.5% FBS) for cell confluence. The zonae pellucidae of in vivo- and in vitro-matured oocytes were partially drilled using a laser system. Single somatic cell was transferred into the enucleated oocyte. The reconstructed oocytes were electrically fused with 0.3 M mannitol. After the fusion, embryos were activated by Ionomycin+6-DMAP. NT embryos were cultured in mSOF medium supplemented with 0.8% BSA at $39^{\circ}C$ in an atmosphere of 5% $CO_2$, 5% $O_2$, 90% $N_2$ for 12 to 20 hr. One hundred and two SCNT embryos were transferred into 20 recipients and pregnancy rate at days 30 was 20.0%. Of them, one developed to term and delivered 1 kid. Ear cells showed significantly higher fusion (63.8 vs. 26.5%) and pregnancy rates (20.0 vs. 0.0%) than those of fetal fibroblast (p<0.05). The recipients synchronized by CIDR showed significantly lower pregnancy rates compared to that of recipient in natural estrus ($0.0{\sim}25.0%$ vs. 100%) (p<0.05). Cloned kid was born from the recipient in natural estrus. For the synchronization of estrus between recipient and donor, there was no difference between treatments (${\pm}0$ vs. +12 hr) in pregnancy rate. The first healthy cloned kid (Jinsoonny) was produced by transfer of SCNT embryos derived from in vivo oocytes and ear cells into a recipient goat whose estrus was synchronized with the donor. These results imply that donor cells for nuclear transfer may affect the success rate, and the estrus synchronization between donor and recipient animals can also be important.
Park H. S.;Kim T. S.;Jung S. Y.;Lee Y. H.;Jung J. Y.
Journal of Embryo Transfer
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v.20
no.2
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pp.105-112
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2005
The present study was conducted to examine some factors affecting in vitro development of oocytes from somatic cell nuclear transfer (SCNT) in Korean native goats. Recipient oocytes were surgically collected after superovulation by using CIDR and FSH, PMSG, hCG and estrous synchronization in Korean Native goats. For nuclear transfer, the fibroblasts from caprine ear cells and fetal fibroblasts were surgically harvested and were cultured in vitro until cell confluency in serum-starvation condition (TCM-199 + $0.5\%$ FBS) for 3 to 5 days. The zona pellucidae of matured oocytes were partially drilled by laser irradiation. A single somatic cell was individually transferred into each enucleated oocyte. The reconstructed oocytes were then electrically fused and activated. Activated NT embryos were cultured in mSOF medium supplemented with $0.8\%\;BSA\;6\~7\;day\;at\;39^{\circ}C,\;5\%\;CO_2,\;5\%\;O_2,\;90\%\;N_2$ in air. There were no significant difference in the number of embryos cleaved and 4-cell development between the fibroblast nuclei from mature ear cells and fetal cells, but the rate of 8-cell development was higher (P<0.05) in ear cells $(40.5\%)$ than in fetal cells $(55.5\%)$. However, the embryo development to morula or blastocyst was not significantly different between both the groups$(6.7\%\;vs\;16.0\%)$, respectively. The number of embryo cleaved $(79.0\%)$ were higher (P<0.05) in the oocytes activated with ionomycin+6-DMAP than in the oocytes activated electrically $(9.5\%)$. The development of fused embryos to morula or blastocyst was found $15.6\%$ in ionomycin+6-DMAP, but no morula or blastocysts were developed in electrical stimulation. The development rate of SCNT embryos to morula or blastocyst was love. (P<0.05) in SCNT embryos $(19.0\%\;vs\;0.0\%)$ than that in parthenotes $(66.1\%\;vs\;59.1\%)$. In the parthenotes, the cleavage rate and development to morula or blastocyst were significantly higher (P<0.05) as $86.8\%\;and\;50.0\%$ in ovulated oocytes than in follicular oocytes $(69.0\%\;vs\;23.6\%)$, respectively. These results suggest that some factors Including superovulation treatment, oocyte source, maturation of follicular oocytes, activation method and culture condition may affect in vitro developmental capability of embryos produced by somatic cell nuclear transfer in Korean Native goats, and the fusion rate be greatly low compared with other species.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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