Drug development and preclinical trials are challenging processes and more than 80% to 90% of drug candidates fail to gain approval from the United States Food and Drug Administration. Predictive and efficient tools are required to discover high quality targets and increase the probability of success in the process of new drug development. One such solution to the challenges faced in the development of new drugs and combination therapies is the use of low-cost and experimentally manageable in vivo animal models. Since the 1980's, scientists have been able to genetically modify the mouse genome by removing or replacing a specific gene, which has improved the identification and validation of target genes of interest. Now genetically engineered mouse models (GEMMs) are widely used and have proved to be a powerful tool in drug discovery processes. This review particularly covers recent fascinating technologies for drug discovery and preclinical trials, targeted transgenesis and RNAi mouse, including application and combination of inducible system. Improvements in technologies and the development of new GEMMs are expected to guide future applications of these models to drug discovery and preclinical trials.
Breast cancer remains the second leading cause of cancer death among woman, worldwide, despite advances in identifying novel targeted therapies and the development of treating strategies. Classification of clinical subtypes (ER+, PR+, HER2+, and TNBC (Triple-negative)) increases the complexity of breast cancers, which thus necessitates further investigation. Mouse models used in breast cancer research provide an essential approach to examine the mechanisms and genetic pathway in cancer progression and metastasis and to develop and evaluate clinical therapeutics. In this review, we summarize tumor transplantation models and genetically engineered mouse models (GEMMs) of breast cancer and their applications in the field of human breast cancer research and anti-cancer drug development. These models may help to improve the knowledge of underlying mechanisms and genetic pathways, as well as creating approaches for modeling clinical tumor subtypes, and developing innovative cancer therapy.
Mouse models are crucial for the functional annotation of human genome. Gene modification techniques including gene targeting and gene trap in mouse have provided powerful tools in the form of genetically engineered mice (GEM) for understanding the molecular pathogenesis of human diseases. Several international consortium and programs are under way to deliver mutations in every gene in mouse genome. The information from studying these GEM can be shared through international collaboration. However, there are many limitations in utility because not all human genes are knocked out in mouse and they are not yet phenotypically characterized by standardized ways which is required for sharing and evaluating data from GEM. The recent improvement in mouse genetics has now moved the bottleneck in mouse functional genomics from the production of GEM to the systematic mouse phenotype analysis of GEM. Enhanced, reproducible and comprehensive mouse phenotype analysis has thus emerged as a prerequisite for effectively engaging the phenotyping bottleneck. In this review, current information on systematic mouse phenotype analysis and an issue-oriented perspective will be provided.
Recently, it was reported that entire mammalian mtDNA genomes could be transplanted into the mitochondrial networks of yeast, where they were accurately and stably maintained without rearrangement as intact genomes. Here, it was found that engineered mtDNA genomes could be readily transferred to and steadily maintained in the mitochondria of genetically modified yeast expressing the mouse mitochondrial transcription factor A (Tfam), one of the mitochondrial nucleoid proteins. The transferred mtDNA genomes were stably retained in the Tfam-expressing yeast cells for many generations. These results indicated that the engineered mouse mtDNA genomes introduced in yeast mitochondria could be relocated into the mitochondria of other cells and that the transferred genomes could be maintained within a mitochondrial environment that is highly amenable to mimicry of the biological conditions in mammalian mitochondria.
Proceedings of the Korean Society of Applied Pharmacology
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1998.11a
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pp.192-192
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1998
The blood - brain barrier (BBB) expresses high concentrations of transferrin receptor, and it was revealed that anti-transferrin receptor mouse monoclonal antibody (OX26) undergoes transcytosis through the BBB. This property allows the OX26 to serve as a brain drug delivery vector. In an attempt to produce broadly useful targeting agents, genetic engineering and expression techniques have been used to produce antibody-avidin (AV) fusion protein (OX26 IgG3C$\_$H/3-AV). In the present study we estimated the BBB permeability and stability of genetically engineered vector.
Cryopreservation of mouse embryos and spermatozoa has become the foremost technique for preserving large numbers of different strains of mice with induced mutations. In 1998, our mouse bank was established in the Center for Animal Resources and Development (CARD), Institute of Resource Development and Analysis, Kumamoto University, Japan, based on the Preservation, supply and development of genetically engineered animals report published by the Ministry of Education, Culture, Sports, Science and Technology. We cryopreserve mouse embryos and sperm, supply these resources, organize training courses to educate people and form part of a domestic and international network of both mutagenesis and resource centers. We currently have over 1,500 mouse strains, 842,000 frozen embryos and 26,000 straws containing frozen sperm. Moreover, we disclose information about 1,300 deposited strains. Furthermore, over 400 strains of frozen embryos or mice produced from frozen embryos and sperm are being supplied to the requesters both domestically and internationally. Additionally we hold training courses on the cryopreservation of mouse germplasm 2~3 times a year, both domestically and internationally. In the course, we teach basic reproductive engineering techniques to trainees on a man-to-man basis. We have already held 28 training courses on the cryopreservation of mouse germplasm at our center and at other institutes.
Objective : With the growing interests of bacteria as a targeting vector for cancer treatment, diverse genetically engineered Salmonella has been reported to be capable of targeting primary or metastatic tumor regions after intravenous injection into mouse tumor models. The purpose of this study was to investigate the capability of the genetically engineered Salmonella typhimurium (S. typhimurium) to access the glioma xenograft, which was monitored in mouse brain tumor models using optical bioluminescence imaging technique. Methods : U87 malignant glioma cells (U87-MG) stably transfected with firefly luciferase (Fluc) were implanted into BALB/cAnN nude mice by stereotactic injection into the striatum. After tumor formation, attenuated S. typhimurium expressing bacterial luciferase (Lux) was injected into the tail vein. Bioluminescence signals from transfected cells or bacteria were monitored using a cooled charge-coupled device camera to identify the tumor location or to trace the bacterial migration. Immunofluorescence staining was also performed in frozen sections of mouse glioma xenograft. Results : The injected S. typhimurium exclusively localized in the glioma xenograft region of U87-MG-bearing mouse. Immunofluorescence staining also demonstrated the accumulation of S. typhimurium in the brain tumors. Conclusion : The present study demonstrated that S. typhimurium can target glioma xenograft, and may provide a potentially therapeutic probe for glioma.
Granulosa cell tumors (GCTs) are rare sex cord-stromal tumors that have been studied for decades. However, their infrequency has delayed efforts to research their etiology. Recently, mutations in human GCTs have been discovered, which has led to further research aimed at determining the molecular mechanisms underlying the disease. Mouse models have been important tools for studying GCTs, and have provided means to develop and improve diagnostics and therapeutics. Thus far, several genetically modified mouse models, along with one spontaneous mouse model, have been reported. This review summarizes the phenotypes of these mouse models and their applicability in elucidating the mechanisms of granulosa cell tumor development.
Purpose: C57BL/6 mice, which are among the most common backgrounds for genetically engineered mice, are resistant to the induction of periodontitis by oral infection with periodontal pathogens. This study aimed to develop a periodontitis model in C57BL/6 mice using coaggregation between human pathogens and the mouse oral commensal Streptococcus danieliae (Sd). Methods: The abilities of Porphyromonas gingivalis ATCC 33277 (Pg33277), P. gingivalis ATCC 49417 (Pg49417), P. gingivalis KUMC-P4 (PgP4), Fusobacterium nucleatum subsp. nucleatum ATCC 25586 (Fnn), and F. nucleatum subsp. animalis KCOM 1280 (Fna) to coaggregate with Sd were tested by a sedimentation assay. The Sd-noncoaggregating Pg33277 and 2 Sd-coaggregating strains, PgP4 and Fna, were chosen for animal experiments. Eighty C57BL/6 mice received oral gavage with Sd once and subsequently received vehicle alone (sham), Fna, Pg33277, PgP4, or Fna+PgP4 6 times at 2-day intervals. Mice were evaluated at 5 or 8 weeks after the first gavage of human strains. Results: Fnn, Fna, and PgP4 efficiently coaggregated with Sd, but Pg33277 and Pg49417 did not. Alveolar bone loss was significantly higher in the PgP4 group at both time points (weeks 5 and 8) and in all experimental groups at week 8 compared with the sham group. The PgP4 group presented greater alveolar bone loss than the other experimental groups at both time points. A higher degree of alveolar bone loss accompanied higher bacterial loads in the oral cavity, the invasion of not only PgP4 but also Sd and Fna, and the serum antibody responses to these bacteria. Conclusions: Periodontitis was successfully induced in C57BL/6 mice by oral infection with a P. gingivalis strain that persists in the oral cavity through coaggregation with a mouse oral commensal bacterium. This new model will be useful for studying the role of human oral bacteria-host interactions in periodontitis using genetically engineered mice.
Kim, Hyeonhui;Kim, Minki;Im, Sun-Kyoung;Fang, Sungsoon
Laboraroty Animal Research
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v.34
no.4
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pp.147-159
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2018
Genetically engineered mouse models are commonly preferred for studying the human disease due to genetic and pathophysiological similarities between mice and humans. In particular, Cre-loxP system is widely used as an integral experimental tool for generating the conditional. This system has enabled researchers to investigate genes of interest in a tissue/cell (spatial control) and/or time (temporal control) specific manner. A various tissue-specific Cre-driver mouse lines have been generated to date, and new Cre lines are still being developed. This review provides a brief overview of Cre-loxP system and a few commonly used promoters for expression of tissue-specific Cre recombinase. Also, we finally introduce some available links to the Web sites that provides detailed information about Cre mouse lines including their characterization.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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