Erythropoietin (EPO) is a glycoprotein that mediates the growth and differentiation of erythroid progenitors. In order to produce recombinant human erythropoietin in tobacco plant, the EPO genomic DNA (5.4 kb) was cloned into plant expression vectors, pBI$\Delta$GUS121, pBD$\Delta$GUS121 and pPEV-1, and introduced in Nicotiana tabacum (var. Xanthi) via Agrobacterium tumefaciens-mediated transformation. After selection on MS media containing kanamycin (Km), 10 Km-resistant plants were obtained per each construct. The correct integration of EPO genomic DNA in the genome of transgenic plant was confirmed by polymerase chain reaction (PCR). Northern blot showed that transcripts of 1.8 kb length were produced in leaves of the plants, but there was no difference of mRNA amount according to promoter number and 5'-untranslated sequence (UTS). The proteins obtained from leaves of transgenic plants were immunologically detected by Western blot using rabbit anti-human EPO polyclonal antibody. The expressed protein appeared as smaller band of apparent mass of 30 kDa as compared to the EPO protein from human urine (37 kDa), suggesting that the modification (glycosylation) system in tobacco plant might be different from that of mammalian cells.
To understand the tissue specific expression pattern of S RNase genes associated with self-incompatibility in L. peruvianum, two promoter regions of $S_{11}$ and $S_{12}$ RNase genes were compared. Homologous sequences between two S RNase gene promoters were found within 300 bp upstream of transcription start site. Moreover short direct repeat sequences within $S_{11}$ RNase gene promoter existed in the vicinity of 350-500 bp upstream of transcription start site. To identify whether the unique promoter sequences of $S_{11}$ RNase gene confer the tissue specific expression, six deletion fragments for $S_{11}$ genomic gene promoter constructed by PCR were fused to $\beta$-glucuronidase gene, and introduced into various tissues of L. peruvianum by microprojectile bombardment. Transient expression assays indicated that $S_{11}$ RNase gene promoter contained the positive and negative regulatory sequences, which can control the floral tissue-specific expression in L. peruvianum.
Koo, Sung Cheol;Choi, Man Soo;Chun, Hyun Jin;Park, Hyeong Cheol;Kang, Chang Ho;Shim, Sang In;Chung, Jong Il;Cheong, Yong Hwa;Lee, Sang Yeol;Yun, Dae-Jin;Chung, Woo Sik;Cho, Moo Je;Kim, Min Chul
Molecules and Cells
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v.27
no.4
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pp.467-473
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2009
Our previous study suggested that OsBWMK1, a gene which encodes a member of the rice MAP kinase family, generates transcript variants which show distinct expression patterns in response to environmental stresses. The transcript variants are generated by alternative splicing and by use of alternative promoters. To test whether the two alternative promoters, pOsBWMK1L (promoter for the OsBWMK1L splice variant) and pOsBWMK1S (promoter for the OsBWMK1S splice variant), are biologically functional, we analyzed transgenic plants expressing GUS fusion constructs for each promoter. Both pOsBWMK1L and pOsBWMK1S are biologically active, although the activity of pOsBWMK1S is lower than that of pOsBWMK1L. Histochemical analysis revealed that pOsBWMK1L is constitutively active in most tissues at various developmental stages in rice and Arabidopsis, whereas pOsBWMK1S activity is spatially and temporally restricted. Furthermore, the expression of pOsBWMK1S::GUS was upregulated in response to hydrogen peroxide, a plant defense signaling molecule, in both plant species. These results suggest that the differential expression of OsBWMK1 splice variants is the result of alternative promoter usage and, moreover, that the mechanisms controlling OsBWMK1 gene expression are conserved in both monocot and dicot plants.
Proceedings of the Botanical Society of Korea Conference
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1985.08b
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pp.59-71
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1985
In rice, limited efforts have been made to identify genes by the use of insertional mutagens, especially heterologous transposons such as the maize Ac/Ds. We constructed Ac and gene trap Ds vectors and introduced them into the rice genome by Agrobacterium-mediated transformation. In this report, rice plants that contained single and simple insertions of T-DNA were analyzed in order to evaluate the gene-tagging efficiency. The 3'end of Ds was examined for putative splicing donor sites. As observed in maize, three splice donor sites were identified at the 3'end of the Ds in rice. Nearly 80% of Ds elements wered excised from the original T-DNA sites, when Ac cDNA was expressed under a CaMV 35S promoter. Repetitive ratoon culturing was performed to induce new transpositions of Ds in new plants derived from cuttings. About 30% of the plants carried at least one Ds that underwent secondary transposition in the later cultures. 8% of transposed Ds elements expressed GUS in various tissues of rice panicles. With cloned DNA adjacent to Ds, the genomic complexities of the insertion sites were examined by Southern hybridization. Half of the Ds insertion sites showed simple hybriodization patterns which could be easily utilized to locate the Ds. Our data demonstrate that the Ac/Ds mediated gene trap system could prove an excellent tool for the analysis of functions of genes in rice. We discuss genetic strategies that could be employed in a largee scale mutagenesis using a heterologous Ac/Ds family in rice.
To evaluate the human risk of long-term intake of genetically modified (GM) rice, we carried out RT-PCR of housekeeping genes. Housekeeping genes, which show highly uniform expression in living organisms during various stages of development and under different environmental conditions, were normalized by RT-PCR. We assessed the expression of 10 common housekeeping genes (18s rRNA, 25S rRNA, UBC, UBQ5, UBQ10, ACT11, GAPDH, eEF-$1{\alpha}$, ${\beta}$-TUB, GAPDH, ${\beta}$-actin, B2m, G6pd2, Gyk, Gus, Hprt, Cyclophlin A, Tfrc, ${\alpha}$-tubulin and RPL13A) in the liver, stomach, small intestine, large intestine, kidney and spleen of mice fed GM or non-GM rice. We found no significant differences in the expression of housekeeping genes between the two groups of mice.
Argonaute 2 (AtAGO2) is a well characterized effector protein in Arabidopsis for its functionalities associated with DNA double-strand break (DSB)-induced small RNAs (diRNAs) and for its inducible expression upon ${\gamma}$-irradiation. However, its transcriptional regulation depending on the recovery time after the irradiation and on the specific response to DSBs has been poorly understood. We analyzed the 1,313 bp promoter sequence of the AtAGO2 gene ($1.3kb_{pro}$) to characterize the transcriptional regulation of AtAGO2 at various recovery times after ${\gamma}$-irradiation. A stable transformant harboring $1.3kb_{pro}$ fused with GUS gene showed that the AtAGO2 is highly expressed in response to ${\gamma}$-irradiation, after which the expression of the gene is gradually decreased until 5 days of DNA damage recovery. We also confirm that the AtAGO2 expression patterns are similar to that of ${\gamma}$-irradiation after the treatments of radiomimetic genotoxins (bleomycin and zeocin). However, methyl methanesulfonate and mitomycin C, which are associated with the inhibition of DNA replication, do not induce the expression of the AtAGO2, suggesting that the expression of the AtAGO2 is closely related with DNA DSBs rather than DNA replication.
Tobacco transformants harboring cinnamic acid 4-hydroxylase gene (C4H) fused with susquiterpene cyclase promoter was developed in order to regulate biosynthesis of phenolic compounds by the expression of the introduced gene. Twenty transformants for each specific promoter were used to analyze the incorporation of the chimeric genes by PCR and Southern blot analysis. PCR products of NPTII(neomycin phosphotransferase) gene (553bp) were detected in the transgenic tobacco plants. The incorporation of the chimeric gene was confirmed in the Southern blot analysis. C4H activity in the transgenic plants was elevated by UV-irradiation and its level was higher compared to that of control plants.
Salicylic acid(SA) is a phytohormone that is related to plant defense mechanism. The SA accumulation is triggered by abiotic and biotic stresses. SA acts as a signal molecular compound mediating systemic acquired resistance and hypersensitive response in plant. Although the role of SA has been studied extensively, an understanding of the SA regulatory mechanism is still lacking in plants. In order to comprehend SA regulatory mechanism, we have been transformed with a SID2 promoter:GUS::LUC fusion construct into siz1-2 mutant and wild plant(Col-0). SIZ1 encodes SUMO E3 ligase and negatively regulates SA accumulation in plants. SID2(SALICYLIC ACID INDUCTION DEFICIENT2) is a crucial enzyme of SA biosynthesis. The Arabidopsis SID2 gene encodes isochorismate synthase(ICS) that controls SA level by conversion of chorismate to isochorismate. We compared the regulation of SID2 in wild-type and siz1-2 transgenic plants that express SID2 promoter:GUS::LUC constructs respectively. The expressions of $\beta$-GLUCURONIDASE and LUCIFERASE were higher in siz 1-2 transgenic plant without any stress treatment. SID2 promoter:GUS::LUC/siz1-2 transgenic plant will be used as a starting material for isolation of siz1-2 suppressor mutants and genes involved in SA-mediated stress signaling pathway.
During plant development, active gibberellins (GAs) control many aspects of plant growth and development including seed germination, stem elongation, flower induction, anther development and seed growth. To understand the biosynthesis and functional role of active GAs in high plants, this study investigated GA 3$\beta$-hydroxylase gene en-coding $GA_1$ and$GA_4$ catalizing last step in GA biosynthetic pathway. The antisense GA 3$\beta$-hydroxylase gene was inserted into expression vector, pIG121-Hm. Calli derived from mature seeds of rice (Oryza satiiva L. cv. Donjinbyeo) were co-cultivated with Agrohacterium tumefaciens EHA101 earring a pIG121-Hm containing hygromycin resistance ($Hyg^r$) and antisense GA 3$\beta$-hydroxylase gene. Seventeen transgenic plants obtained inhibiting GA 3$\beta$-hydroxylase. Transgenic plants had shorter plant height more than that of the Dongjinbyeo. Stable integration of antisense GA 3$\beta$-hydroxylase gene was confirmed by polymerase chain reaction of genomic DNA isolated from the leaf organs of the $T_o$ generation.
Hang Gyeong;Mi Sook Choe;Sung-Ho Lee;Sung Han Park;Hyuk Kim;Ja Choon Koo;No Youl Kim;Su Hyun Park;Jeung Joo Lee
Proceedings of the Botanical Society of Korea Conference
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1999.07a
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pp.17-20
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1999
In rice, limited efforts have been made to identify genes by the use of insertional mutagens, especially heterologous transposons such as the maize Ac/Ds. We constructed Ac and gene trap Ds vectors and introduced them into the rice genome by Agrobacterium-mediated transformation. In this report, rice plants that contained single and simple insertions of T-DNA were analyzed in order to evaluate the gene-tagging efficiency. The 3'end of Ds was examined for putative splicing donor sites. As observed in maize, three splice donor sites were identified at the 3'end of the Ds in rice. Nearly 80% of Ds elements wered excised from the original T-DNA sites, when Ac cDNA was expressed under a CaMV 35S promoter. Repetitive ratoon culturing was performed to induce new transpositions of Ds in new plants derived from cuttings. About 30% of the plants carried at least one Ds that underwent secondary transposition in the later cultures. 8% of transposed Ds elements expressed GUS in various tissues of rice panicles. With cloned DNA adjacent to Ds, the genomic complexities of the insertion sites were examined by Southern hybridization. Half of the Ds insertion sites showed simple hybriodization patterns which could be easily utilized to locate the Ds. Our data demonstrate that the Ac/Ds mediated gene trap system could prove an excellent tool for the analysis of functions of genes in rice. We discuss genetic strategies that could be employed in a largee scale mutagenesis using a heterologous Ac/Ds family in rice.
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