Roh Jong Yul;Lee In Hee;Li Ming Shun;Chang Jin Hee;Choi Jae Young;Boo Kyung Saeng;Je Yeon Ho
Journal of Microbiology
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v.42
no.4
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pp.340-345
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2004
To investigate the co-expression and crystallization of a fusion gene between the Bacillus thuringiensis crystal protein and a foreign protein in B. thuringiensis, the expression of the Cry1Ac fused with green fluorescent protein (GFP) genes in a B. thuringiensis $Cry^-B$ strain was examined. The cry1Ac gene was cloned in the B. thuringiensis-E. coli shuttle vector, pHT3101, under the control of the native cry1Ac gene promoter, while the GFP gene was inserted into the XhoI site upstream of the proteolytic cleavage site, in the middle region of the crylAc gene (pProAc-GFP). The B. thuringiensis $Cry^-B$ strain carrying pProAc-GFP (ProAc-GFP/CB) did not produce any inclusion bodies. However, the transformed strain expressed fusion protein forms although the expression level was relatively low. Furthermore, an immunoblot analysis using GFP and Cry1Ac antibodies showed that the fusion protein was not a single species, but rather multiple forms. In addition, the N-terminal fragment of Cry1Ac and a non-fused GFP were also found in the B. thuringiensis $Cry^-B$ strain after autolysis. The sporulated cells before autolysis and the spore-crystal mixture after autolysis of ProAc-GFP/CB exhibited insecticidal activities against Plutella xylostella larvae. Accordingly, the current results suggest that a fusion crystal protein produced by the transfomant, ProAc-GFP/CB, can be functionally expressed but easily degraded in B. thuringiensis.
We have expressed GFP in Sf9 and Bm5 cells or Bombyx mori larvae by using Ac-Bm hybrid virus capable of replicating in both Bm5 and Sf9 cells. Genomic DNA of Ac-Bm hybrid virus expressing ${\beta}$-galactosidase was cotransfected with baculovirus transfer vector containing GFP gene, pBacPAK-GFP in Sf9 cells. The Ac-Bm hybrid virus harboring GFP was named as Ac-Bm hybrid virus-GFP. The Ac-Bm hybrid virus-GFP-infected insect cells were easily selected by detecting the emission of GFP from each well of cell culture dish on the UV illuminator. GFP produced by Ac-Bm hybrid virus-GFP in Sf9 and Bm5 cells or B. mori larvae was confirmed by SDS-PAGE and Western blot analysis using GFP antibody. In addition, B. mori larvae infected with Ac-Bm hybrid virus-GFP was apparently appeared fluorescence from the whole body at S days postinoculation. The fluorescence of GFP from the hemolymph and fat body of B. mori larvae infected with Ac-Bm hybrid virus-GFP was also observed by fluorescence microscope. In conclusion, our results demonstrated that in baculovirus expression vector system, use of Ac-Bm hybrid virus have an additional advantage of expanded host range for producing recombinant proteins.
The present study was conducted to evaluate the efficiency of transgenic rabbit production by DNA microinjection using EGFP (Enhanced Green Fluorescent Protein) gene. In this experiment EGFP coding sequences fused to CMV promoter were microinjected into rabbit one-cell embryos, and then GFP expression and gene integration were evaluated in preimplantation embryos and fetuses recovered on day 15 of pregnancy to determine efficiency of transgenic rabbit production. Effect of DNA concentration was also tested on development in vitro following microinjection and transgene integration in fetuses. Development of embryos in vitro was decreased by DNA microinjection, but the rates of pregnancy and implantation were not significantly affected by microinjection. As development progressed in vitro percentage of GFP expression in rabbit embryos was decreased, resulting GFP expression detected in 37.5% of blastocysts. The efficiencies for production of transgenic fetuses were 4.0% and 7.6%, respectively, when $10ng/{\mu}l$ and $20ng/{\mu}l$ of DNA concentration were microinjected. Transgenic fetuses were confirmed by GFP expression and PCR analysis of fetus genomic DNA. These results indicated that DNA microinjection itself damaged embryo development and DNA concentration affected the efficiency of transgenic rabbit production.
Kim, Jin Young;Oh, Sang Taek;Youn, JeeHee;Lee, Suk Kyeong
IMMUNE NETWORK
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v.4
no.3
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pp.190-197
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2004
Background: Rheumatoid arthritis (RA) is an autoimmune disorder characterized by chronic synovial inflammation which leads to joint destruction. Gene therapy of RA targets the players of inflammation or articular destruction. However, viral vectors have safety problems and side effects, while non-viral vectors suffer from inefficient gene transfer and fast loss of gene expression. To overcome the limits of non-vial vectors, an EBV-based plasmid which is known to exert prolonged high level gene expression can be used. Methods: pEBVGFP, pEBVIL-10, and pEBVvIL-10 were constructed by cloning GFP, IL-10, and vIL-10 genes into an EBV-based plasmid, respectively. The pGFP was used as a control plasmid. Each constructs were lipofected into HIG-82 rabbit synoviocytes. The expression of GFP was monitored by FACS and confocal microscopy. IL-10 and vIL-10 expressions were measured by ELISA. Results: GFP expression 2 days after transfection was achieved in 33.2% of cells. GFP-expressing cells transfected with pGFP decreased rapidly from 4 days after transfection and disappeared completely by 11 days. Cells transfected with pEBVGFP began to decrease slowly from 4 days. But GFP expression was detected for over 35 days. In addition, HIG-82 cells transfected with pEBVIL-10 ($44.6{\pm}1.5ng/ml$) or pEBVvIL-10 ($51.0{\pm}5.7ng/ml$) secreted these cytokines at high levels. High level cytokine production by hygromycin selection was maintained at least for up to 26 days after transfection. Conclusion: These results suggest that the EBV-based plasmid has a potential to improve non-viral gene transfer system and may be applicable to treat RA without the drawbacks of viral vectors.
Caspase-11 has been known as a dual regulator of apoptosis and inflammatory response. An unusual feature of caspase-11 is that its expression is induced by apoptotic or proinflammatory stimuli. Utilizing these unusual features of caspase-11, we have developed a simple and sensitive assay method to screen pro- or anti-apoptotic/inflammatory molecules. To develop this assay method, we generated a reporter construct where GFP expression is regulated by caspase-11 promoter. When several types of cultured cells were transfected with this reporter construct and subsequently treated with various apoptotic or proinflammatory molecules, expression of GFP by the activation of caspase-11 promoter was easily detected by fluorescence microscopy or spectrofluorometry. In addition, a reduction of the GFP fluorescence was detected when an agent reported to suppress caspase-11 induction was applied. These results suggest that our reporter system can be used to screen pro- or anti-apoptotic/inflammatory molecules.
One of the critical problems to be solved in transgenic animal production is uncontrollable constitutive expression of foreign genes, which usually results in serious physiological disturbances in the transgenic animal. To circumvent this problem, we constructed and tested two retrovirus vectors designed to express the GFP(green fluorescent protein) gene under the control of the tetracycline-inducible promoters. To maximize the GFP gene expression at turn-on state, WPRE(woodchuck hepatitis virus posttranscriptional regulatory element) sequence was introduced into the retrovirus vectors at downstream region of either the GFP gene or the sequence encoding rtTA(reverse tetracycline-controlled transactivator). Transformed cells were cultured in the medium supplemented with or without doxycycline(tetracycline derivative) for 48 hours, and induction efficiency was measured by comparing the GFP gene expression level using fluorometry and western blotting. Higher GFP expression was observed from the vector carrying the WPRE sequence at 3' side of the GFP gene, while tighter expression control(up to 20 fold) was obtained from the vector in which the WPRE sequence was placed at 3' side of rtTA sequence. The resulting tetracycline inducible vector system may be used in transgenic animal production and gene therapy.
Park, Sung-Kil;Chung, Choong-Sik;Lee, Jong-Jin;Lee, Youn-Hyung;Chung, In-Sik
Applied Biological Chemistry
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v.44
no.4
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pp.215-218
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2001
To examine the expression of foreign protein in Polygonum tinctorium cells, plasmid pCAMBIA1302 encoding Green Fluorescent Protein(GFP) was used to transform the cells and the expression was confirmed using Western blot analysis. When the effect of sodium buryrate on the formation of GFP was examined, cell growth was retarded at the addition of 10 mM and was stalled at more than 15 mM. The amount of GFP production was increased by 15% when 5 mM of sodium butyrate was added at three-days after inoculation as compared to at 0-day. Moreover, when sodium butyrate was added at three-days after inoculation, the amount of GFP was increased by 50% at the addition of 5 mM of sodium butyrate as compared to 10 mM.
Since there is no report about more than one gene expression simultaneously in a single mitochondria, this report is very important to novel type of eukaryotic gene expression. In this study, investigated whether mitochondrial expressed gene and GFP that expression in mitochondria of plant expressed to mitochondria. Expression vector (pBin) containing AtBI-1 (mitochondrial expressed gene) and GFP driven by 35S promoter was bombarded by gene gun to leaves and cotyledon of tobacco. Regenerated shoot confirmed expression of AtBI-1 in mitochondria by GFP expression, PCR, and Southern analysis. Successful mitochondria of plant cell transformation in this report implies possible eukaryotic mitochondrial transformation including plants and animals, and moreover two or more gene expression which can be excellent applicable protocols to pharmaceutical field including antibody production.
C. elegans DLK-1 has been reported to play an important role in synaptogenesis by shaping the structure of presynaptic terminal. In this study, we investigated the expression pattern and regulation of the dlk-1 gene in C. elegans. To determine the expression pattern, we made a dlk-1::gfp fusion construct, named pPDdg1, which consisted of -2.2 kb 5' upstream region, the first exon, the first intron, and a part of the second exon of the dlk-1 gene. By microinjecting this construct into the worm, we observed that the DLK-1::GFP was expressed mainly in neurons. We next examined the regulatory elements of gene expression by deletion analysis of pPDdg1. Removal of a large portion of the 5' upstream region (${\Delta}-361$ to -2246) of the gene had little effect on the expression pattern, whereas deletion of the first intron led to elimination of the DLK-1::GFP expression in most of the neurons. Our results suggest that the first intron of the C. elegans dlk-1 gene contains the regulatory element critical for gene expression.
In this study, to construct more effective retrovirus system, we compared four internal promoters (RSV: Rous sarcoma virus, UbC: Ubiquitin C, β-actin, CMV: human cytomegalovirus) in the retrovirus vector by measuring GFP (green fluorescent protein) expression. The effect of WPRE (woodchuck hepatitis virus posttrans-criptional regulatory element) sequence on transgene expression was also investigated. Experiments were conducted with cells derived from three different species (human, pig and chicken) and evaluated the activity of each promoter and the effect of WPRE sequence by fluorometry and Western blotting. In all cells tested, RSV and CMV promoters were superior to UbC and β-actin promoters, and RSV promoter was the best one in chicken cells. The boosting effect of WPRE sequence on GFP expression was evident in human and porcine cells but not in chicken cells.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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