The present study was conducted to investigate the antimutagenic potential of the methanolic extract from the leaves of sweet potato (Ipomea batatas, IB) with the SOS chromotest (umu test) and Salmonella typhimurium TA 98 and TA 100. The anticarcinogenic effects were also studied by calculation of the $IC_{50}$ on human cancer cell lines and investigating the function of gap junction in rat liver epithelial cells. The IB extract inhibited dose-dependently the ${\beta}$-galactosidase activity induced spontaneously at concentration of more than 200 mg/ml in S. typhimurium TA 1535/pSK 1002, and decreased significantly (p < 0.01) the ${\beta}$-galactosidase activities induced by mutagen 6-chloro-9-[3-(2-chloroethylamino)proylamino]-2-methoxyacridine dihydrochloride (ICR) at dose of more than 0.4 mg/0.1 ml. The IB extract showed no effect on the spontaneous reversions of S. typhimurium TA 98 and 100 but benzo(${\alpha}$)pyrene (BaP)-stimulated reversions were decreased dose-dependently (p < 0.01) at the concentration of more than 100 mg/ml. The $IC_{50}$ value of stomach cancer cells was lower than that of normal rat liver epithelial cells, but the values of colon and uterine cancer cell lines were similar to those of normal rat liver epithelial cells. The transfer of dye through gap junctions was not affected by treatment of the IB extracts at any concentration during treatment periods. The simultaneously treatment of IB extract and 12-O-tetradecanoylphorbol-13-acetate (TPA) effectively prevented the inhibition of dye transfer induced by TPA 1 hour after treatment at all exposed concentrations. The number of gap junctions was significantly (p < 0.01) increased by the treatment with IB extract at concentrations of more than 40 ${\mu}g$/ml. The inhibition of the expression of gap junction proteins by TPA (0.01 ${\mu}g$/ml) was recovered dose dependently by the simultaneous treatment of IB extracts. Our data suggest that Ipomea batatas has antimutagenic and anticarcionogenic activity in vitro.
The gut epithelial barrier, which is composed of the mucosal layer and the intestinal epithelium, has multiple defense mechanisms and interconnected regulatory mechanisms against enteric microbial pathogens. However, many bacterial pathogens have highly evolved infectious stratagems that manipulate mucin production, epithelial cell-cell junctions, cell death, and cell turnover to promote their replication and pathogenicity in the gut epithelial barrier. In this review, we focus on current knowledge about how bacterial pathogens regulate mucin levels to circumvent the epithelial mucus barrier and target cell-cell junctions to invade deeper tissues and increase their colonization. We also describe how bacterial pathogens manipulate various modes of epithelial cell death to facilitate bacterial dissemination and virulence effects. Finally, we discuss recent investigating how bacterial pathogens regulate epithelial cell turnover and intestinal stem cell populations to modulate intestinal epithelium homeostasis.
The purpose of this study was to investigate the transport characteristics of passage cultured l1uman nasal epithelial cell monolayers grown on Transwell@ inserts using liquid-covered culture (LCC) method. The monolayer of passage 2 and 3 exhibited tight barrier (TEER>1,000 ohmxcm$^2$) in 2-3 days after seeding. In the morphological studies by actin staining and SEM/TEM, the existence of tight junction was clearly observed. (omitted)
The primary culture of human nasal epithelial cell monolayer was performed on a Transwell. The effect of various factors on the tight junction formation was observed in order to develop an in vitro experimental system for nasal transport studies. Human nasal epithelial cells, collected from human normal inferior turbinates, were plated onto diverse inserts. After 4 days, media of the apical surface was removed for air-liquid interface (ALI) culture. Morphological characteristics was observed by transmission electron microscopy (TEM). A polyester membrane of $0.4\;{\mu}m$ pore size was determined as the most effective insert based on the change in the transepithelial electric resistance (TEER) value as well as the $^{14}C-mannitol$ transport study. The ALI method was effective in developing the tight junction as observed in the further increase in the TEER value and reduction in the permeability coefficient $(P_{app})$ of $^{14}C-mannitol$ transport. Results of the transport study of a model drug, budesonide, showed that the primary culture system developed in this study could be further developed and applied for in vitro nasal transport studies.
Ptdlns(4,5)$P_2$ is a key cellular phosphoinositide that localizes in separate and distinctive pools in subcellular membrane and vesicular compartments. In membranes, Ptdlns(4,5)$P_2$ acts as a precursor to second messengers and is itself a main signaling and targeting molecule. Specific subcellular localization of type I PIP kinases directed by interacting with specific targeting module differentiates Ptdlns(4,5)$P_2$ production in a spatial and temporal manner. Several lines of evidences support the idea that Ptdlns(4,5)$P_2$ is generated in very specific pools in a spatial and temporal manner or by feeding Ptdlns(4,5)$P_2$ directly to effectors. In this concept, the interaction of PIPKI isoforms with a specific targeting module to allow precise subcellular targeting modulates highly specific Ptdlns(4,5)$P_2$ synthesis and channeling overall effectors. For instance, localization of PIPKI${\gamma}$661 to focal adhesions by an interaction with talin results in spatial and temporal production of Ptdlns(4,5)$P_2$, which regulates EGF-stimulated directional cell migration. In addition, Type $I{\gamma}$ PIPK is targeted to E-cadherin in cell adherence junction and plays a role in controlling dynamics of cell adherence junction and endocytosis of E-cadherin. Characterizing how PIP kinase isoforms are regulated by interactions with their targeting modules, as well as the mechanisms by which their product, Ptdlns(4,5)$P_2$, exerts its effects on cellular signaling processes, is crucial to understand the harmonized control of numerous cellular signaling pathways. Thus, in this review the roles of the Ptdlns(4)P(5) kinases and Ptdlns(4,5)$P_2$ were described and critically reviewed in terms of regulation of the E-cadherin trafficking, cell migration, and formation of cell adherence junction which is indispensable and is tightly controlled in epithelial-to-mesenchymal transition process.
Objectives : This study was carried out to investigate the inhibitory effect of Banhasasim-tang on early reflux esophagitis by control of gastric peristalsis and the lower esophageal sphincter in mice. Methods : Experimental mice were classified into three groups. The normal group were mice with no inflammation. The control group were mice with gastroesophageal reflux elicited by alcohol. The sample group were mice administered Banhasasim-tang after gastroesophageal reflux elicitation. We observed morphological change and production of ghrelin, substance P, and inducible nitric oxide synthase (iNOS) in gastroesophageal junction mucosa. In addition, we examined change of epithelial junction in esophageal mucosa and change of lower esophageal sphincter distribution. Results : The migration of inflammation-related cells in lamina propria of gastroesophageal junction decreased more in the sample group than in the control group. The positive reaction of ghrelin, substance P, and iNOS significantly decreased more in the sample group than in the control group (p<0.05). Injury of the epithelial junction in the esophageal mucosa and outer oblique layer in the lower esophageal sphincter were significantly mitigated by Banhasasim-tang administration in the sample group (p<0.05). Conclusions : According to the above results, it is supposed that Banhasasim-tang inhibits early reflux esophagitis by controlling not only gastric peristalsis and acid secretion through ghrelin, and substance P but also the lower esophageal sphincter through iNOS.
BACKGROUND/OBJECTIVES: Curcumin, a major component of the Curcuma species, contains antioxidant and anti-inflammatory properties. Although it was found to induce apoptosis in cancer cells, the functional role of curcumin as well as its molecular mechanism in anti-inflammatory response, particularly in intestinal cells, has been less investigated. The intestine epithelial barrier is the first barrier and the most important location for the substrate coming from the lumen of the gut. SUBJECTS/METHODS: We administered curcumin treatment in the human intestinal epithelial cell lines, T84 and Caco-2. We examined endoplasmic reticulum (ER) stress response by thapsigargin, qPCR of XBP1 and BiP, electrophysiology by wild-type cholera toxin in the cells. RESULTS: In this study, we showed that curcumin treatment reduces ER stress and thereby decreases inflammatory response in human intestinal epithelial cells. In addition, curcumin confers protection without damaging the membrane tight junction or actin skeleton change in intestine epithelial cells. Therefore, curcumin treatment protects the gut from bacterial invasion via reduction of ER stress and anti-inflammatory response in intestinal epithelial cells. CONCLUSIONS: Taken together, our data demonstrate the important role of curcumin in protecting the intestine by modulating ER stress and inflammatory response post intoxication.
The mitogen-activated protein kinase (MAPK) pathway controls intestinal epithelial barrier permeability by regulating tight junctions (TJs) and epithelial cells damage. Heme oxygenase-1 (HO-1) and carbon monoxide (CO) protect the intestinal epithelial barrier function, but the molecular mechanism is not yet clarified. MAPK activation and barrier permeability were studied using monolayers of Caco-2 cells treated with tissue necrosis factor α (TNF-α) transfected with FUGW-HO-1 or pLKO.1-sh-HO-1 plasmid. Intestinal mucosal barrier permeability and MAPK activation were also investigated using carbon tetrachloride (CCl4) administration with CoPP (a HO-1 inducer), ZnPP (a HO-1 inhibitor), CO releasing molecule 2 (CORM-2), or inactived-CORM-2-treated wild-type mice and mice with HO-1 deficiency in intestinal epithelial cells. TNF-α increased epithelial TJ disruption and cleaved caspase-3 expression, induced ERK, p38, and JNK phosphorylation. In addition, HO-1 blocked TNF-α-induced increase in epithelial TJs disruption, cleaved caspase-3 expression, as well as ERK, p38, and JNK phosphorylation in an HO-1-dependent manner. CoPP and CORM-2 directly ameliorated intestinal mucosal injury, attenuated TJ disruption and cleaved caspase-3 expression, and inhibited epithelial ERK, p38, and JNK phosphorylation after chronic CCl4 injection. Conversely, ZnPP completely reversed these effects. Furthermore, mice with intestinal epithelial HO-1 deficient exhibited a robust increase in mucosal TJs disruption, cleaved caspase-3 expression, and MAPKs activation as compared to the control group mice. These data demonstrated that HO-1-dependent MAPK signaling inhibition preserves the intestinal mucosal barrier integrity by abrogating TJ dysregulation and epithelial cell damage. The differential targeting of gut HO-1-MAPK axis leads to improved intestinal disease therapy.
Purpose: Epithelial barrier dysfunction is involved in the pathophysiology of periodontitis and oral lichen planus. Estrogens have been shown to enhance the physical barrier function of intestinal and esophageal epithelia, and we aimed to investigate the effect of estradiol (E2) on the regulation of physical barrier and tight junction (TJ) proteins in human oral epithelial cell monolayers. Methods: HOK-16B cell monolayers cultured on transwells were treated with E2, an estrogen receptor (ER) antagonist (ICI 182,780), tumor necrosis factor alpha ($TNF{\alpha}$), or dexamethasone (Dexa), and the transepithelial electrical resistance (TER) was then measured. Cell proliferation was measured by the cell counting kit (CCK)-8 assay. The levels of TJ proteins and nuclear translocation of nuclear factor $(NF)-{\kappa}B$ were examined by confocal microscopy. Results: E2 treatment increased the TER and the levels of junctional adhesion molecule (JAM)-A and zonula occludens (ZO)-1 in a dose-dependent manner, without affecting cell proliferation during barrier formation. Treatment of the tight-junctioned cell monolayers with $TNF{\alpha}$ induced decreases in the TER and the levels of ZO-1 and nuclear translocation of $NF-{\kappa}B$. These $TNF{\alpha}-induced$ changes were inhibited by E2, and this effect was completely reversed by co-treatment with ICI 182,780. Furthermore, E2 and Dexa presented an additive effect on the epithelial barrier function. Conclusions: E2 reinforces the physical barrier of oral epithelial cells through the nuclear ER-dependent upregulation of TJ proteins. The protective effect of E2 on the $TNF{\alpha}-induced$ impairment of the epithelial barrier and its additive effect with Dexa suggest its potential use to treat oral inflammatory diseases involving epithelial barrier dysfunction.
Background: Saponins from Panax japonicus (SPJ) are the most abundant and main active components of P. japonicus, which replaces ginseng roots in treatment for many kinds of diseases in the minority ethnic group in China. Our previous studies have demonstrated that SPJ has the effects of anti-inflammation through the mitogen-activated protein kinase (MAPK) and nuclear factor kappa B (NF-${\kappa}B$) signaling pathways. The present study was designed to investigate whether SPJ can modulate intestinal tight junction barrier in aging rats and further to explore the potential mechanism. Methods: Aging rats had been treated with different doses (10 mg/kg, 30 mg/kg, and 60 mg/kg) of SPJ for 6 mo since they were 18 mo old. After the rats were euthanized, the colonic samples were harvested. Levels of tight junctions (claudin-1 and occludin) were determined by immunohistochemical staining. Levels of proinflammatory cytokines (interleukin-$1{\beta}$ and tumor necrosis factor-${\alpha}$) were examined by Western blot. NF-${\kappa}B$ and phosphorylation of MAPK signaling pathways were also determined by Western blot. Results: We found that SPJ increased the expression of the tight junction proteins claudin-1 and occludin in the colon of aging rats. Treatment with SPJ decreased the levels of interleukin-$1{\beta}$ and tumor necrosis factor-${\alpha}$, reduced the phosphorylation of three MAPK isoforms, and inhibited the expression of NF-${\kappa}B$ in the colon of aging rats. Conclusion: The studies demonstrated that SPJ modulates the damage of intestinal epithelial tight junction in aging rats, inhibits inflammation, and downregulates the phosphorylation of the MAPK and $NF-{\kappa}B$ signaling pathways.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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