The objective of this study was to characterize the enzymatic hydrolysis of lipopolysaccharide (LPS) by wheat phytase and to investigate the effects of wheat phytase-treated LPS on in vitro toxicity, cell viability and release of a pro-inflammatory cytokine, interleukin (IL)-8 by target cells compared with the intact LPS. The phosphatase activity of wheat phytase towards LPS was investigated in the presence or absence of inhibitors such as L-phenylalanine and L-homoarginine. In vitro toxicity of LPS hydrolyzed with wheat phytase in comparison to intact LPS was assessed. Cell viability in human aortic endothelial (HAE) cells exposed to LPS treated with wheat phytase in comparison to intact LPS was measured. The release of IL-8 in human intestinal epithelial cell line, HT-29 cells applied to LPS treated with wheat phytase in comparison to intact LPS was assayed. Wheat phytase hydrolyzed LPS, resulting in a significant release of inorganic phosphate for 1 h (p < 0.05). Furthermore, the degradation of LPS by wheat phytase was nearly unaffected by the addition of L-phenylalanine, the inhibitor of tissue-specific alkaline phosphatase or L-homoarginine, the inhibitor of tissue-non-specific alkaline phosphatase. Wheat phytase effectively reduced the in vitro toxicity of LPS, resulting in a retention of 63% and 54% of its initial toxicity after 1-3 h of the enzyme reaction, respectively (p < 0.05). Intact LPS decreased the cell viability of HAE cells. However, LPS dephosphorylated by wheat phytase counteracted the inhibitory effect on cell viability. LPS treated with wheat phytase decreased IL-8 secretion from intestinal epithelial cell line, HT-29 cell to 14% (p < 0.05) when compared with intact LPS. In conclusion, wheat phytase is a potential therapeutic candidate and prophylactic agent for control of infections induced by pathogenic Gram-negative bacteria and associated LPS-mediated inflammatory diseases in animal husbandry.
Livestock species experience several stresses, particularly weaning, transportation, overproduction, crowding, temperature, and diseases in their life. Heat stress (HS) is one of the most stressors, which is encountered in livestock production systems throughout the world, especially in the tropical regions and is likely to be intensified due to global rise in environmental temperature. The gut has emerged as one of the major target organs affected by HS. The alpha- and beta-diversity of gut microbiota composition are altered due to heat exposure to animals with greater colonization of pathogenic microbiota groups. HS also induces several changes in the gut including damages of microstructures of the mucosal epithelia, increased oxidative insults, reduced immunity, and increased permeability of the gut to toxins and pathogens. Vulnerability of the intestinal barrier integrity leads to invasion of pathogenic microbes and translocation of antigens to the blood circulations, which ultimately may cause systematic inflammations and immune responses. Moreover, digestion of nutrients in the guts may be impaired due to reduced enzymatic activity in the digesta, reduced surface areas for absorption and injury to the mucosal structure and altered expressions of the nutrient transport proteins and genes. The systematic hormonal changes due to HS along with alterations in immune and inflammatory responses often cause reduced feed intake and production performance in livestock and poultry. The altered microbiome likely orchestrates to the hosts for various relevant biological phenomena occurring in the body, but the exact mechanisms how functional communications occur between the microbiota and HS responses are yet to be elucidated. This review aims to discuss the effects of HS on microbiota composition, mucosal structure, oxidant-antioxidant balance mechanism, immunity, and barrier integrity in the gut, and production performance of farm animals along with the dietary ameliorations of HS. Also, this review attempts to explain the mechanisms how these biological responses are affected by HS.
Bioactive peptides have great potentials as nutraceutical and pharmaceutical agents that can improve human health. The objectives of this research were to produce functional peptides from ovotransferrin, a major egg white protein, using single enzyme treatments, and to analyze the properties of the hydrolysates produced. Lyophilized ovotransferrin was dissolved in distilled water at 20 mg/mL, treated with protease, elastase, papain, trypsin, or α-chymotrypsin at 1% (w/v) level of substrate, and incubated for 0-24 h at the optimal temperature of each enzyme (protease 55℃, papain 37℃, elastase 25℃, trypsin 37℃, α-chymotrypsin 37℃). The hydrolysates were tested for antioxidant, metal-chelating, and antimicrobial activities. Protease, papain, trypsin, and α-chymotrypsin hydrolyzed ovotransferrin relatively well after 3 h of incubation, but it took 24 h with elastase to reach a similar degree of hydrolysis. The hydrolysates obtained after 3 h of incubation with protease, papain, trypsin, α-chymotrypsin, and after 24 h with elastase were selected as the best products to analyze their functional properties. None of the hydrolysates exhibited antioxidant properties in the oil emulsion nor antimicrobial property at 20 mg/mL concentration. However, ovotransferrin with α-chymotrypsin and with elastase had higher Fe3+-chelating activities (1.06±0.88%, 1.25±0.24%) than the native ovotransferrin (0.46±0.60%). Overall, the results indicated that the single-enzyme treatments of ovotransferrin were not effective to produce peptides with antioxidant, antimicrobial, or Fe3+-chelating activity. Further research on the effects of enzyme combinations may be needed.
Platycosides, Platycodi radix (Platycodon grandiflorus root) saponins, are used as food supplements and exert diverse pharmacological activities. Deglycosylation of saponins enhances their biological efficacy, and deglycosylated platycosides are produced mainly through enzymatic hydrolysis. However, the types of available deglycosylated platycosides remain limited because of a lack of hydrolyzing enzymes that can act on specific glycosides in glycosylated platycosides. In this study, a crude enzyme from Aspergillus tubingensis converted platycoside E (PE) and polygalacin D3 (PGD3) into deglucose-apiose-xylosylated (deGAX)-platycodin D (PD) and deGAX-polygalacin D (PGD), respectively. The products were identified through LC/MS analysis by specifically hydrolyzing all glucose residues at C-3, and apiose and xylose residues at C-28 of platycoside. The hydrolytic activity of the crude enzyme obtained after the cultivation of the fungus using citrus pectin and corn steep solid as carbon and nitrogen sources, respectively, in culture medium was increased compared with those using other carbon and nitrogen sources. The crude enzyme from A. tubingensis was the most effective in producing deGAX platycoside at pH 5.0 and 60℃. The crude enzyme produced 0.32 mg/ml deGAX-PD and 0.34 mg/ml deGAX-PGD from 1 mg/ml PE and 1 mg/ml PGD3 (at pH 5.0 and 60℃) for 12 and 10 h, with productivities of 32.0 and 42.5 mg/l/h and molar yields of 62.1 and 59.6%, respectively. To the best of our knowledge, this is the first study to produce deGAX platycosides from glycosylated platycosides.
The intake of probiotic lactic acid bacteria not only promotes digestion through the microbiome regulated host intestinal metabolism but also improves diseases such as irritable bowel syndrome and inflammatory bowel disease, and suppresses pathogenic harmful bacteria. This investigation aimed to evaluate the immunomodulatory effects in intestinal epithelial cells and to study the clinical efficacy of the selected the Bifidobacterium breve and Bifidobacterium longum groups. The physiological and biochemical properties were characterized, and immunomodulatory activity was measured against pathogenic bacteria. In order to find out the mechanism of inflammatory action of the eight viable and sonicated Bifidobacterium spp., we tried to confirm the changes in the pro-inflammatory cytokines (TNF-α, interleukin (IL)-6, IL-12) and anti-inflammatory cytokine (IL-10), and chemokines, (monocyte chemoattractant protein-1, IL-8) and inflammatory enzymatic mediator (nitric oxide) against Enterococcus faecalis ATCC 29212 infection in Caco-2 cells and RAW 264.7 cells. The clinical efficacy of the selected B. breve and B. longum group was studied as a probiotic adjuvant for acute diarrhea in children by oral administration. The results showed significant immunomodulatory effects on the expression levels of TNF-α, IL-6, IL-12, MCP-1, IL-8 and NO, in sonicated Bifidobacterium extracts and viable bifidobacteria. Moreover, each of the Bifidobacterium strains was found to react more specifically to different cytokines. However, treatment with sonicated Bifidobacterium extracts showed a more significant effect compared to treatment with the viable bacteria. We suggest that probiotics functions should be subdivided according to individual characteristics, and that personalized probiotics should be designed to address individual applications.
Barido, Farouq Heidar;Kim, Hee Ju;Kang, Sun Moon;Jang, Aera;Pak, Jae In;Lee, Sung Ki
Food Science of Animal Resources
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v.42
no.4
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pp.625-638
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2022
This study aimed to carefully investigate the effect of hydrolysis using Flavourzyme on meat quality, antioxidative status, and taste-related compounds in breast of Samgyetang that was supplemented with black garlic (BG). Four different treatment groups were compared: (1) conventional Samgyetang (control), (2) Samgyetang hydrolyzed with Flavourzyme (1%, v/w) (FS), (3) Samgyetang made with the BG extract without hydrolysis (NBG), and (4) BG samgyetang pre-treated with Flavourzyme (1%, v/w) in a water bath at 55℃ for 2.5 h and hydrolyzed before being processed (HBG). All the treatment groups were cooked by retorting at conditions 121℃ and 1.5 kg/cm2 for 1 h. Improved umami profiles through the increase of umami-related nucleotides (5c-GMP, 5'-IMP) and free amino acids-aspartic acid and glumtamic acid, in Samgyetang breast was recorded following hydrolysis. The HBG group tended to impart stronger scavenging activity toward free radicals compared with the other two groups, while not differing with NBG group regarding suppressing malondialdehyde. Textural properties were improved through hydrolysis, wherein the shear force value decreased from 2.29 kgf in the control to 1.19 and 1.25 kgf in the FS and HBG group. Moisture percentages were highly retained, with the redness score increasing and the lightness color decreasing following hydrolysis. In conclusion, the results of this study can be a preliminary information of the effect of hydrolysis pre-treatment for BG samgyetang. Further experiments are required to compare various enzymes along with its organoleptic acceptances.
This study aimed to obtain high Fischer's ratio oligopeptides from goat whey (HFO) and investigate antioxidant property of it. Hydrolysis of goat whey was done with the approach of sequential digestion of pepsin and flavourzyme. With the adsorption of aromatic amino acids by activated carbon, HFO with a Fischer's ratio of 27.070 and a molecular weight of 200-1,000 Da were obtained, and the branched-chain amino acids accounted for 22.87%. Then the antioxidant activity of HFO was evaluated. At the concentrations of 2.0 mg/mL and 0.50 mg/mL, HFO scavenged 77.27% and 99.63% of 1,1-diphenyl-2-picrylhydrazyl and 3-ethylbenzthiazoline-6-sulphonate free radicals respectively. The scavenging rate of HFO against hydroxyl radicals reached 92.31% at the concentration of 0.25 mg/mL. Animal experiments demonstrated that HFO could moderate the changes of malondialdehyde, superoxide dismutase and glutathione peroxidase caused by CCl4-induced oxidative stress in vivo. This study indicated that HFO from goat whey was capable of oxidation resistance both in vivo and in vitro, which provided a scientific basis for the high-value processing and application of goat milk whey.
A gene encoding thermostable cellulase B (TmCelB) was isolated from Thermotoga maritima. The open reading frame (ORF) of TmCelB gene was 825bp long which predicted to encode 274 amino acid residues with a molecular weight of 31,732 Da. The 17 amino acid residues from N-terminal of the TmCelB was known as signal peptides. To analyze the enzymatic activity and biochemical properties, the ORF of TmCelB gene excluding a putative signal sequence encoding 17 amino acids were introduced into the E. coli expression vector, pRSET-B, and overexpressed in E. coli BL21. The optimum temperature of recombinant TmCelB was around 95 ℃, and the optimum pH of recombinant TmCelB was around pH 4.5. The recombinant TmCelB was stable at temperature below 100 ℃.
Sang-A Lee;Vitchan Kim;Byoungyun Choi;Hyein Lee;Young-Jin Chun;Kyoung Sang Cho;Donghak Kim
Biomolecules & Therapeutics
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v.31
no.1
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pp.82-88
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2023
Genomic analysis indicated that the genome of Drosophila melanogaster contains more than 80 cytochrome P450 genes. To date, the enzymatic activity of these P450s has not been extensively studied. Here, the biochemical properties of CYP6A8 were characterized. CYP6A8 was cloned into the pCW vector, and its recombinant enzyme was expressed in Escherichia coli and purified using Ni2+-nitrilotriacetate affinity chromatography. Its expression level was approximately 130 nmol per liter of culture. Purified CYP6A8 exhibited a low-spin state in the absolute spectra of the ferric forms. Binding titration analysis indicated that lauric acid and capric acid produced type I spectral changes, with Kd values 28 ± 4 and 144 ± 20 µM, respectively. Ultra-performance liquid chromatography-mass spectrometry analysis showed that the oxidation reaction of lauric acid produced (ω-1)-hydroxylated lauric acid as a major product and ω-hydroxy-lauric acid as a minor product. Steady-state kinetic analysis of lauric acid hydroxylation yielded a kcat value of 0.038 ± 0.002 min-1 and a Km value of 10 ± 2 µM. In addition, capric acid hydroxylation of CYP6A8 yielded kinetic parameters with a kcat value of 0.135 ± 0.007 min-1 and a Km value of 21 ± 4 µM. Because of the importance of various lipids as carbon sources, the metabolic analysis of fatty acids using CYP6A8 in this study can provide an understanding of the biochemical roles of P450 enzymes in many insects, including Drosophila melanogaster.
Journal of the Korean Society of Marine Environment & Safety
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v.29
no.1
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pp.36-43
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2023
To establish a culture system with enhanced cellular nutrition, we investigated the effects of light quality (blue, 450 nm; yellow, 590 nm; and red, 630 nm) of a light-emitting diode (LED) on the biochemical composition of Tetraselmis suecica and T. tetrathele. The protein content of both species was higher (42-69%) than the content of other biochemical substances under all wavelengths. Carbohydrate, protein, and lipid contents were higher under the yellow wavelength, which showed a low growth rate, than those under other wavelengths. The contents of all biochemical substances were low under the red wavelength, which showed a high growth rate. These results indicated that protein synthesis occurs in response to decreased cell division rate, while lipid and carbohydrate synthesis occurs owing to altered chemical composition and enzymatic activity. Therefore, we suggested a two-phase LED culture system, which emitted red LED during the early-middle exponential phase and yellow LED during the late exponential and stationary phases, to increase the yield of useful biochemical substances of T. suecica and T. tetrathele.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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