Relationships between biochemical phenomena and hemodynamics on human endothelial cells are very important to study the mechanism of atherosclerotic formation and development. The objective of this study is to investigate the flow phenomena around the endothelial cell model by the PIV experiment. The microscopic images of endothelial cells were acquired by a CCD camera to fabricate the shape of endothelial cell. The cell models were fabricated by using a photoforming process. Two consecutive particle images were captured by the CCD camera for the image processing. Conifer powder as the tracing particles was added to water to visualize the flow field. The cross-correlation method was applied fer the image processing of the flow visualization. Pressure and wall shear stress variations on the surfaces of the endothelial cells were calculated to investigate the effects of hemodynamic forces on the morphological changes.
To investigate the protective effect of Sophorae Radix (SR) on the damage by pulmonary vascular endothelial cells by xanthine oxidase (XO)/hypoxanthine (HX)-induced oxygen tree radical, Neutral Red (NR) and c-fos immunopositive cell assay were used. The results were obtained as follows ; The viability of vascular endothelial cells treated with XO/HX was decreased. And c-fos immunopositive cells represented a maximal increase in group treated with XO/HX for 2 hour in pulmonary vasvular endothelial cells. But pretreated groups with SR extracts were not inhibited the increase of c-fos immunopositive cells by XO/HX in a dose-dependent manner. These results show that XO/HX elicits toxic effects in cultured pulmonary vascular endothelial cells, and suggest that SR extract is very effective in the prevention of XO/HX-induced increase of c-fos immunopositive cells.
Park, Sung Lyea;Lee, Bo Kyung;Kim, Young-Ae;Lee, Byung Ho;Jung, Yi-Sook
Biomolecules & Therapeutics
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제21권4호
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pp.277-283
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2013
In this study, we investigated the effects of a selective urotensin II (UII) receptor antagonist, SB-657510, on the inflmmatory response induced by UII in human umbilical vein endothelial cells (EA.hy926) and human monocytes (U937). UII induced inflammatory activation of endothelial cells through expression of proinflammatory cytokines (IL-$1{\beta}$ and IL-6), adhesion molecules (VCAM-1), and tissue factor (TF), which facilitates the adhesion of monocytes to EA.hy926 cells. Treatment with SB-657510 significantly inhibited UII-induced expression of IL-$1{\beta}$, IL-6, and VCAM-1 in EA.hy926 cells. Further, SB-657510 dramatically blocked the UII-induced increase in adhesion between U937 and EA.hy926 cells. In addition, SB-657510 remarkably reduced UII-induced expression of TF in EA.hy926 cells. Taken together, our results demonstrate that the UII antagonist SB-657510 decreases the progression of inflammation induced by UII in endothelial cells.
Journal of the Korean Association of Oral and Maxillofacial Surgeons
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제31권1호
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pp.39-45
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2005
Stem cell therapy using mesenchymal stem cells(MSCs) transplantation have been paid attention because of their powerful proliferation and pluripotent differentiating ability. Although umbilical cord blood (UCB) is well known to be a rich source of hematopoietic stem cells with practical and ethical advantages, the presence of mesenchymal stem cells (MSCs) in UCB has been controversial and it remains to be validated. In this study, we examine the presence of MSCs in UCB harvests and the prevalence of them is compared to that of endothelial progenitor cells. For this, CD34+ and CD34- cells were isolated and cultured under the endothelial cell growth medium and mesenchymal stem cell growth medium respectively. The present study showed that ESC-like cells could be isolated and expanded from preterm UCBs but were not acquired efficiently from full-terms. They expressed CD14-, CD34-, CD45-, CD29+, CD44+, CD105+ cell surface marker and could differentiate into adipogenic and osteogenic lineages. Our results suggest that MSCs are fewer in full-term UCB compared to endothelial progenitor cells.
The role of apurinic/apyrimidinic endonuclease1/redox factor-1 (Ref-1) on the lead (Pb)-induced cellular response was investigated in the cultured endothelial cells. Pb caused progressive cellular death in endothelial cells, which occurred in a concentration- and time-dependent manner. However, Ref-1 overexpression with AdRef-1 significantly inhibited Pb-induced cell death in the endothelial cells. Also the overexpression of Ref-1 significantly suppressed Pb-induced superoxide and hydrogen peroxide elevation in the endothelial cells. Pb exposure induced the downregulation of catalase, it was inhibited by the Ref-1 overexpression in the endothelial cells. Taken together, our data suggests that the overexpression of Ref-1 inhibited Pb-induced cell death via the upregulation of catalase in the cultured endothelial cells.
Fabry disease is a lysosomal storage disorder characterized by the lysosomal accumulations of glycosphingolipids in a variety of cytotypes, which include endothelial cells. The disease is inherited and originates from an error in glycosphingolipid catabolism caused by insufficient α-galactosidase A activity, which causes uncontrolled progressive storage of intracellular globotriaosylceramide (Gb3) in the vasculature and extracellular accumulation of lyso-Gb3 (a deacetylated soluble form of Gb3). Necrosis can lead to inflammation, which exacerbates necrosis and creates a positive feedback loop that triggers necroinflammation. However, the role played by necroptosis, a form of programmed necrotic cell death, in the cell-to-cell inflammatory reaction between epithelial and endothelial cells is unclear. Thus, the present study was undertaken to determine whether lyso-Gb3 induces necroptosis and whether necroptosis inhibition protects endothelial dysfunction against lyso-Gb3 inflamed retinal pigment epithelial cells. We found lyso-Gb3 induced necroptosis of a retinal pigment epithelial cell line (ARPE-19) in an autophagy-dependent manner and that conditioned media (CM) from ARPE-19 cells treated with lyso-Gb3 induced the necroptosis, inflammation, and senescence of human umbilical vein endothelial cells. In addition, a pharmacological study showed CM from lyso-Gb3 treated ARPE-19 cells induced endothelial necroptosis, inflammation, and senescence were significantly inhibited by an autophagy inhibitor (3-MA) and by two necroptosis inhibitors (necrostatin and GSK-872), respectively. These results demonstrate lyso-Gb3 induces necroptosis via autophagy and suggest that lyso-Gb3 inflamed retinal pigment epithelial cells trigger endothelial dysfunction via the autophagy-dependent necroptosis pathway. This study suggests the involvement of a novel autophagy-dependent necroptosis pathway in the regulation of endothelial dysfunction in Fabry disease.
This study aimed to investigate the effects and potential mechanisms of Chikusetsusaponin V (CsV) on endothelial nitric oxide synthase (eNOS) and vascular endothelial cell functions. Different concentrations of CsV were added to animal models, bovine aorta endothelial cells (BAECs) and human umbilical vein endothelial cells (HUVECs) cultured in vitro. qPCR, Western blotting (WB), and B ultrasound were performed to explore the effects of CsV on mouse endothelial cell functions, vascular stiffness and cellular eNOS mRNA, protein expression and NO release. Bioinformatics analysis, network pharmacology, molecular docking and protein mass spectrometry analysis were conducted to jointly predict the upstream transcription factors of eNOS. Furthermore, pulldown and ChIP and dual luciferase assays were employed for subsequent verification. At the presence or absence of CsV stimulation, either overexpression or knockdown of purine rich element binding protein A (PURA) was conducted, and PCR assay was employed to detect PURA and eNOS mRNA expressions, Western blot was used to detect PURA and eNOS protein expressions, cell NO release and serum NO levels. Tube formation experiment was conducted to detect the tube forming capability of HUVECs cells. The animal vasodilation function test detected the vasodilation functions. Ultrasonic detection was performed to determine the mouse aortic arch pulse wave velocity to identify aortic stiffness. CsV stimulus on bovine aortic cells revealed that CsV could upregulate eNOS protein levels in vascular endothelial cells in a concentration and time dependent manner. The expression levels of eNOS mRNA and phosphorylation sites Ser1177, Ser633 and Thr495 increased significantly after CsV stimulation. Meanwhile, CsV could also enhance the tube forming capability of HUVECs cells. Following the mice were gavaged using CsV, the eNOS protein level of mouse aortic endothelial cells was upregulated in a concentration- and time-dependent manner, and serum NO release and vasodilation ability were simultaneously elevated whereas arterial stiffness was alleviated. The pulldown, ChIP and dual luciferase assays demonstrated that PURA could bind to the eNOS promoter and facilitate the transcription of eNOS. Under the conditions of presence or absence of CsV stimulation, overexpression or knockdown of PURA indicated that the effect of CsV on vascular endothelial function and eNOS was weakened following PURA gene silence, whereas overexpression of PURA gene could enhance the effect of CsV upregulating eNOS expression. CsV could promote NO release from endothelial cells by upregulating the expression of PURA/eNOS pathway, improve endothelial cell functions, enhance vasodilation capability, and alleviate vessel stiffness. The present study plays a role in offering a theoretical basis for the development and application of CsV in vascular function improvement, and it also provides a more comprehensive understanding of the pharmacodynamics of CsV.
Activated protein C (APC) is thought to exert antiinflammatory activities through the endothelial protein C receptor (EPCR)-dependent cleavage of protease activated receptor 1 (PAR-1) in endothelial cells. Since thrombin cleaves PAR-1 with $\sim$3-4-orders of magnitude higher efficiency, and PAR-1 is a target for proinflammatory activities of thrombin, it is not understood how APC can elicit protective responses through the cleavage of PAR-1. In this study, we demonstrate that EPCR is associated with caveolin-1 in endothelial lipid rafts, but its occupancy by protein C leads to its dissociation from caveolin-1 and subsequent recruitment of PAR-1 to protective signaling pathways through the coupling of PAR-1 to Gi-protein. When EPCR is bound by protein C, the PAR-1-dependent protective response in endothelial cells can be mediated by either thrombin or APC. These results provide a new paradigm for understanding the mechanism through which PAR-1 and EPCR participate in cellular signaling events in endothelial cells.
Ca2+ signaling of endothelial cells plays a critical role in controlling blood flow and pressure in small arteries and arterioles. As the impairment of endothelial function is closely associated with cardiovascular diseases (e.g., atherosclerosis, stroke, and hypertension), endothelial Ca2+ signaling mechanisms have received substantial attention. Increases in endothelial intracellular Ca2+ concentrations promote the synthesis and release of endothelial-derived hyperpolarizing factors (EDHFs, e.g., nitric oxide, prostacyclin, or K+ efflux) or directly result in endothelial-dependent hyperpolarization (EDH). These physiological alterations modulate vascular contractility and cause marked vasodilation in resistance arteries. Transient receptor potential (TRP) channels are nonselective cation channels that are present in the endothelium, vascular smooth muscle cells, or perivascular/sensory nerves. TRP channels are activated by diverse stimuli and are considered key biological apparatuses for the Ca2+ influx-dependent regulation of vasomotor reactivity in resistance arteries. Ca2+-permeable TRP channels, which are primarily found at spatially restricted microdomains in endothelial cells (e.g., myoendothelial projections), have a large unitary or binary conductance and contribute to EDHFs or EDH-induced vasodilation in concert with the activation of intermediate/small conductance Ca2+-sensitive K+ channels. It is likely that endothelial TRP channel dysfunction is related to the dysregulation of endothelial Ca2+ signaling and in turn gives rise to vascular-related diseases such as hypertension. Thus, investigations on the role of Ca2+ dynamics via TRP channels in endothelial cells are required to further comprehend how vascular tone or perfusion pressure are regulated in normal and pathophysiological conditions.
Kim, Su-Ryun;Park, Hyun-Joo;Bae, Soo-Kyung;Park, Ji-Hyun;Kim, Hyo-Sun;Koo, Tae-Hyeon;Bae, Moon-Kyoung
International Journal of Oral Biology
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제33권4호
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pp.149-154
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2008
Porphyromonas gingivalis, a major periodontal pathogen, has been implicated in the initiation and progression of periodontal disease. Endothelial dysfunction (Editor note: Aberrant and dysfunction are somewhat redundant. The authors may want to choose one or the other.) contributes to chronic periodontal inflammation. Using cDNA-representational difference analysis, we found that P.gingivalis lipopolysaccharide differentially induces a number of genes in human microvascular endothelial cells. Among these upregulated genes, we focused on intercellular adhesion molecule-1 (VCAM-1), which is crucial for leukocyte recruitment during vascular inflammation. P. gingivalis LPS significantly increased the expression of vascular cell adhesion molecule-1 (VCAM-1) as well as ICAM-1. Promoter assays revealed that the transcription of these cell adhesion molecules was mainly regulated by nuclear factor-${\kappa}B$ (NF-${\kappa}B$) in endothelial cells. Furthermore, P. gingivalis LPS significantly increased leukocyte adhesiveness to microvascular endothelial cells and to aortic endothelium. Taken together, our results demonstrate that P. gingivalis LPS activates microvascular endothelial cells through NF-${\kappa}B$-dependent expression of cell adhesion molecules.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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