A virus was isolated from petunia (Petunia hybrida Vilm.) plants showing chlorotic ring spots on the leaves and color breaking on the flowers, and was identified as petunia asteroid mosaic virus (PAMV). Identification of the PAMV was established by host range test, electron microscopy, serological reaction, and physical properties of the virus. In the host range test, Nicotiana glutinosa, N. rustica, N. clevelandii, P. hybrida, Gomphrena globosa, and Chenopodium amaranticolor were systemically infected with the virus. The virus produced local lesions on inoculated leaves of N. tabacum‘Samsun’, N. tabacum‘Xanthi nc’, Datura stramonium, Vigna unguiculata‘White eye’, C. quinoa, Capsicum annuum, Vicia faba, and Lycopersicon esculentum‘Rutgers’. However, Cucurbita sativus and C. moschata did not show any symptoms. PAMV particles were isometric with 30 nm in diameter. The crude sap from G. globosa infected with the virus reacted positively with antiserum to tomato bushy stunt virus (TBSV) in agar gel double diffusion test. Thermal inactivation point of the virus was 8$0^{\circ}C$ and the virus retained its infectivity at the dilution of 10-4. Longevity in vitro of the virus was estimated longer than 35 days.
A Tomato spotted wilt virus (TSWV-KP) was isolated from Paprika (Capsicum annuum var. grossum) showing necrosis spot on the leaves and malformation of the fruit in Yesan, Korea. The virus infected Chenopodium amaranticolor, C. quinoa, Petunia hybrida, Nicotiana glutunosa, Gomphrena globosa, and Physalis floridana. Ten plants including tomato were observed to have systemic TWSV-KP infection. The virus produced necrosis or necrotic ring spots on the inoculated leaves and mosaic, vein necrosis or death on the upper leaves of Datura stramonium, N. clevarandii, N. rustica, and N.tabacum cvs. Thin sections of the infected leaf tissue contained spherical to oval particles, a characteristic of a Tospovirus. The virion contained three molecules of genomic RNAs, which were approximately 9.0, 4.9 and 3.0 kb. The nucleocapsid (N) protein of the purified virion migrated as a single band with molecular weight of about 29 kDa in SDS-PAGE. The N gene of TSWV-KP showed 96.5-97.2% and 97.7-98.5% identities to the three different TSWV isolates of Genbank Database at the nucleotide and amino acid, respectively.
This study was undertaken to test the effects of Daturae Flos(DF) and Daturae Semen(DS) on the cellular and humoral immune responses, and the functions of the cells involved in immunoinflammation. Both extracts decreased the activity of superoxide dismutase, and the decrease was greater in the mouse group which was treated with DS. Both extracts decreased the phagocytic activity as measured by assessing the number of the latex particle within the phagocyte after incubation of peritoneal macrophages with fluorochrome-labelled latex particle and decreased natural killer cell activity as measured by enumerating the viable YAC-1 cells after treatment of target cells with splenic natural killer cells. Both extracts also decreased the cell-mediated immunity in vivo as assessed by measuring the ear thickness after sensitization and challenge with dinitrofluorobenzene, however, had no effects on the humoral immune responses as measured by checking hemolysin and hemagglutinin titers after immunization with sheep red blood cells(SRBC). Extracts of Semen caused decrease in the number of rosette forming cells between the splenic cells and SRBC. The results of this study suggested that both Daturae extracts could depress the immunoinflammation by affecting the various cell types involved in inflammation.
Kim, Young-Ho;Choi, Do-Il;Yeo, Woon-Hyung;Kim, Young-Sook;Chae, Soon-Yong;Park, Eun-Kyung;Kim, Sang-Seock
The Plant Pathology Journal
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v.16
no.5
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pp.264-268
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2000
A fluorescent material was accumulated in inoculated leaves showing necrotic local lesions of tobacco plants with N gene, Nicotiana tabacum cvs. Xanthi-nc NN, Samsun NN, Burley 21 and KF 114, and N. glutinosa, and Datura stramonium at the early growth stages by the inoculation of Tobacco mosaic virus (TMV). It was identified as a coumarin phytoalexin, scopoletin. Although the material was most prominently produced in TMV-inoculated tobacco leaves with local necrotic lesions, its accumulation was also noted in uninoculated leaves of TMV-inoculated plants. Its accumulation was somewhat greater in high resistance-induced leaves than low resistance-induced and intact leaves. Scopoletin treatment induced the expression of a pathogenesis-related protein, PR-1, prominently at the concentration of 500 or 1000 ${\mu}$g/ml. This suggests that scopoletin is a phytoalexin abundantly accumulating in N gene-containing resistant plants in response to TMV infection, and may be related to hypersensitive responses (HR) and systemic acquired resistance (SAR) in the resistant tobacco plants.
Atropa belladonna is a valuable medicinal plant and a commercial source of tropane alkaloids, which are frequently utilized in therapeutic practice. In this study, bioinformatic methodologies were used to examine the pattern of coding sequences and the factors that might influence codon usage bias in the chloroplast genome of Atropa belladonna and other nightshade genomes. The chloroplast engineering being a promising field in modern biotechnology, the characterization of chloroplast genome is very important. The results revealed that the chloroplast genomes of Nicotiana tabacum, Solanum lycopersicum, Capsicum frutescens, Datura stramonium, Lyciumbarbarum, Solanum melongena, and Solanum tuberosum exhibited comparable codon usage patterns. In these chloroplast genomes, we observed a weak codon usage bias. According to the correspondence analysis, the genesis of the codon use bias in these chloroplast genes might be explained by natural selection, directed mutational pressure, and other factors. GC12 and GC3S were shown to have no meaningful relationship. Further research revealed that natural selection primarily shaped the codon usage in A. belladonna and other nightshade genomes for translational efficiency. The sequencing properties of these chloroplast genomes were also investigated by investing the occurrences of palindromes and inverted repeats, which would be useful for future research on medicinal plants.
Three mild mutant strains of tobacco mosaic virus (TMV) were isolated from Nicotiana tabacum var. Samsun incubated at $38^{\circ}C$ for 10 days after inoculation with a wild type of TMV-OM strain. They were designated into Tg 5272, Tw 227 and Tw 333. All mild strains could be distinguished from TMV-OM by their reactions on different indicator plants. The mild strains induced the mild mottling without distinct symptoms, whereas the wild strain produced severe mosaic, rugose and stunting on tobacco and red pepper plants. Tw 227 and Tw 333 produced smaller necrotic spots than those of Tg 5272 and TMV-OM on N. glutinosa and Datura stramonium. The former two strains also produced ring spots and mosaic on Gomphrena globosa compared with necrotic spots by the latter strains. Three mild strains were serologically identical to TMV-OM. Their physical properties were thermal inactivation point $80-85^{\circ}C$, dilution end point between $10^{-4}\;and\;10^{-6}$, and longevity in vitro 7days or longer. Ultraviolet absorption spectra of purified preparations of the mild strains and TMV-OM were identical, with a minimum at 247nm, a maximum at 260nm, and a slight shoulder at 290nm. Electrophoresis of the strains in polyacrylamide-agarose gel showed that all the strains formed one major band and two minor bands, except for one minor band of Tw 333. However, when sodium dodecyl sulfate was added to the purified viruses before electrophoresis, each strain formed only one major band.
We isolated the Cucumber green mottle mosaic virus(CGMMV) particles from watermelon leaves and designated as CGMMV-HY1 as a watermelon isolate and attempted to characterize the pathogenic isolate responsible for such an epidemic in watermelon and also to monitor dominant viral isolates in greenhouse. The watermelon plants infected with CGMMV generally showed mottle mosaic, mosaic, growth stunting, necrosis and deformed fruit. The reactions of indicator plants to CGMMV-HY1 were the local lesions on Nicotiana tabacum cv. White Burley, Nicotiana tabacum cv. Samsun, and Chenopodium amaranticola, and the mosaic symptoms only on Cucumis sativus, but the CGMMV-HY1 did not infect Nicotiana sylvesytis, Datura stramonium, Chenopodium quinoa, and Petunia hybrida. Purified virus particles were rod-shaped and about 300 nm long. The coat protein (CP) of purified CGMMV-HY1 was single band with molecular weight of about 16.5 kDa which was confirmed by western blot analysis probed with monoclonal antibody of CGMMV-HY1. The genomic and subgenomic RNAs of 6.4 kb and 0.75 kb were revealed by the electrophoresis on 1.2% formaldehydedenatured agarose gel. Viral and complementary CGMMV-specific primer sets were designed for spanning the genome using previously reported CGMMV sequences. A 464bp of CP gene of CGMMV-HY1 was amplified by RT-PCR and cloned into PGEM-T easy vector. The nucleotide sequence of CP gene of CGMMV-HY1 shared 98%, 99%, and 100% identities with that of CGMMV strains W, KOM, and KW respectively. Based on these results, we identified CGMMV-HY1 as a CGMMV isolate of watermelon, a member of Tobamovirus.
A new isolate of Cucumber mosaic virus (CMV), identified as Li-CMV was isolated from a diseased Korean native lily (Lithium tsingtauense Gilg). Biological and serological properties of Li-CMV were characterized, and reverse transcription-polymerase chain reaction (RT-PCR) analysis, restriction enzyme profiling of RT-PCR products, and nucleotide sequence analysis of RNA3 of the virus were performed in this study. Remarkable differences in symptoms between Li-CMV and ordinary CMV strains were found in tobacco plants and Datura stramonium. Li-CMV-infected tobacco plants (cv. Xanthi-nc and cv. Samsun) induced chlorotic ringspots on uninoculated upper leaves, and the symptom expression was delayed or faint whereas, ordinary CMV strains induced green mosaic symptoms on the plant. Systemic infections were observed on Nicotiana benthamiana with severe mosaic symptom. Restriction mapping analysis of RT-PCR products using MspI showed that Li-CMV belonged to CMV subgroup I. A full-length CDNA copy of RNA3 for the virus was amplified by RT-PCR, cloned, and its complete nucleotide sequence was determined. The RNA3 of Li-CMV was 2, 232 nucleotides long, and consisted of two open reading frames of 843 and 657 bases encoding 3a protein (movement protein) and coat protein, respectively. Results of this study indicate that Li-CMV is a novel strain and belongs to subgroup I of CMV in the genus Cucumovirus.
Kim, Mi-Kyeong;Kwak, Hae-Ryun;Lee, Su-Heon;Kim, Jeong-Soo;Kim, Kook-Hyung;Cha, Byeong-Jin;Choi, Hong-Soo
The Plant Pathology Journal
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v.27
no.4
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pp.372-377
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2011
A virus causing mottle and stunt symptom on Zea mays was observed around Ulleng-do, Korea and identified as Cucumber mosaic virus (CMV-ZM) based upon biological, serological, and molecular characteristics. In host range studies, the CMV-ZM isolate produced local lesions on Datura stramonium, Vigna unguiculata, Cucurbita moschata, Chenopodium amaranticolor, Ch. quinoa, whereas this isolate produced systemic mosaic on Nicotiana tabacum cv. 'Xanthi-nc', Capsicum annuum, Solanum lycopersicum, Solanum melongena, Cucurbita pepo, and Z. mays. In addition, chlorotic local rings on inoculated leaves along with severe mosaic, malformation, and fern leaf symptoms on upper systemic leaves were shown in N. glutinosa plants. Complete nucleotide sequences of each genomic RNA segment was determined and compared to those of the other CMV strains. Comparison of the nucleotide sequence of 1a open reading frame (ORF) revealed approximately 89.2-92.4% sequence identity with each CMV subgroup IA and IB strain, while showing only 78% sequence identity with CMV subgroup II. Nucleotide sequence analysis of RNA2 ORFs revealed 85.3-97.6% sequence identity with subgroup I. In ORFs of RNA3, levels of nucleotide sequence identities were higher than 92-99.2% with CMV subgroup I and lower than 82% with CMV isolates of subgroup II. These results suggest that CMV-ZM isolate is more closely related to subgroup I than subgroup II and therefore, CMV-ZM isolate might be classified into as CMV subgroup I based on biological and molecular analysis.
Kim, Mi-Kyeong;Kwak, Hae-Ryun;Ko, Sug-Ju;Lee, Su-Heon;Kim, Jeong-Soo;Kim, Kook-Hyung;Cha, Byeong-Jin;Choi, Hong-Soo
The Plant Pathology Journal
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v.26
no.1
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pp.93-98
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2010
A virus isolate causing symptoms of yellow mosaic, fern leaves, malformation and plant necrosis on Rudbeckia bicolor was prevalent around Pyeongchang area in Korea. The causal virus was identified as Cucumber mosaic virus (CMV) using characteristics from biological, serological and molecular analyses and named as CMV-Rb. CMV-Rb caused mosaic on Nicotiana benthamiana, N. tabacum, Capsicum annuum, and Lycopersicon esculentum. However, typical local lesions did not develop on inoculated Pisum sativum, Cucurbita moschata, Datura stramonium and Tetragonia expansa plants. Full-length genome sequences of CMV-Rb RNAs 1, 2 and 3 were obtained using 12 primer pairs by RT-PCR analysis. The genome of CMV-Rb RNA segments 1, 2, and 3 consists of 3363nt, 3049nt, and 2214nt in length, respectively. In order to ascertain their taxonomic identity, nucleotide and the deduced amino acid sequence analyses RNAs 1, 2 and 3 of CMV-Rb isolates were conducted with previously reported sequences of CMV strains and/or isolates. CMV-Rb RNAs showed about 90 to 99% sequence identity to those of subgroup I strains suggesting that CMV-Rb is more closely related to CMV isolates belong to subgroup I. To our knowledge, this is the first report of CMV on Rudbeckia bicolor in Korea.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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