CRISPR/Cpf1 has emerged as a new CRISPR-based genome editing tool because, in comparison with CRIPSR/Cas9, it has a different T-rich PAM sequence to expand the target DNA sequence. Single-base editing in the microbial genome can be facilitated by oligonucleotide-directed mutagenesis (ODM) followed by negative selection with the CRISPR/Cpf1 system. However, single point mutations aided by Cpf1 negative selection have been rarely reported in Corynebacterium glutamicum. This study aimed to introduce an amber stop codon in crtEb encoding lycopene hydratase, through ODM and Cpf1-mediated negative selection; deficiency of this enzyme causes pink coloration due to lycopene accumulation in C. glutamicum. Consequently, on using double-, triple-, and quadruple-base-mutagenic oligonucleotides, 91.5-95.3% pink cells were obtained among the total live C. glutamicum cells. However, among the negatively selected live cells, 0.6% pink cells were obtained using single-base-mutagenic oligonucleotides, indicating that very few single-base mutations were introduced, possibly owing to mismatch tolerance. This led to the consideration of various target-mismatched crRNAs to prevent the death of single-base-edited cells. Consequently, we obtained 99.7% pink colonies after CRISPR/Cpf1-mediated negative selection using an appropriate single-mismatched crRNA. Furthermore, Sanger sequencing revealed that single-base mutations were successfully edited in the 99.7% of pink cells, while only two of nine among 0.6% of pink cells were correctly edited. The results indicate that the target-mismatched Cpf1 negative selection can assist in efficient and accurate single-base genome editing methods in C. glutamicum.
Proceedings of the Korean Society of Applied Pharmacology
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1996.04a
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pp.180-180
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1996
Previous studies have shown that kainic acid (KA) causes an elevation of hippocampal proenkephalin mRNA level. However, the role of proto-oncogene products, such as c-Fos, c-Jun and Fra proteins in the regulation of KA-induced proenkephalin mRNA increase in the hippocampus has not been well characterized. Thus, in the present study, the effect of cycloheximide (CHX) on KA-induced proenkephalin mRNA and immediate early gene products induction was examined. After pretreating with either vehicle or CHX (20 mg/kg, s.c.) for 30 min, KA (10 mg/kg) was administered s.c. The animals were sacrificed 1,2, or 8 hrs after KA administration. Total RNA and were isolated for Northern blot assay, and proteins were isolated for Western and electrophoretic gel-shift assays. First, we found that CHX inhibited KA-induced proenkephalin mRNA increase without altering intracellular proenkephalin protein level. Secondly, Western blot assays showed that KA increased c-Fos, c-Jun and Fra proteins at 1,2, and 8 hrs and CHX inhibited these immediate early gene products. Finally, electrophoretic gel shift assays revealed that KA increased both AP-1 and ENKCRE-2 DNA binding activities. Furthermore, CHX attenuated KA-induced AP-1 and ENKCRE-2 DNA binding activities. Both AP-1 and ENKCRE-2 DNA binding activities were abolished by cold AP-1 or ENKCRE-2 oligonucleotides, and further reduced by antibodies against c-Fos or c-Jun. Antibody against CREB reduced ENKCRE-2, but not AP-1, DNA binding activity. Our results suggest that on-going protein synthesis is required for elevation of hippocampal proenkephalin mRNA level induced by KA. All c-Fos, c-Jun, and Fra proteins appears to be involved in the regulation of hippocampal proenkephalin mRNA level induced by KA (This study was supported by a grant from KOSEF).
Based on the reported cDNA sequences of $BmK{\alpha}Txs$, the genes encoding toxin $BmK{\alpha}Tx11$ and $BmK{\alpha}Tx15$ were amplified by PCR from the Chinese scorpion Buthus martensii Karsch genomic DNA employing synthetic oligonucleotides. Sequences analysis of nucleotide showed that an intron about 500 bp length interrupts signal peptide coding regions of $BmK{\alpha}Tx11$ and $BmK{\alpha}Tx15$. Using cDNA sequence of $BmK{\alpha}Tx11$ as probe, southern hybridization of BmK genome total DNA was performed. The result indicates that $BmK{\alpha}Tx11$ is multicopy genes or belongs to multiple gene family with high homology genes. The similarity of $BmK{\alpha}$-toxin gene sequences and southern hybridization revealed the evolution trace of $BmK{\alpha}$-toxins: $BmK{\alpha}$-toxin genes evolve from a common progenitor, and the genes diversity is associated with a process of locus duplication and gene divergence.
Kim, Jae-Jong;Koh, Suk-Hoon;Kim, Joong-Su;Lee, Dae-Sil
BMB Reports
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v.31
no.2
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pp.149-155
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1998
The N199H variant of the EcoRI endonuclease has about twice the catalytic activity of the wild-type. A comparison of their biochemical characteristics, using synthetic oligonucleotides 5'-dAAAACTTAAGAAAAAAAAAAA-3' (KA) and 5'-dTTTTTGAATTCTTTTTTTTTT-3' (KT), helps to define the cleavage reaction pathway of these enzymes. Both EcoRI and EcoRI variant N199H were found to cleave singlestranded KA or KT about three times faster than the double-stranded forms, although the KT oligonucleotide was more susceptible. Using the ssDNA substrate in kinetic analyses, lower $K_m$ values were obtained for the N199H variant than for the wild-type at low (50 mM), as well as high (200 mM), sodium chloride concentrations. This difference between the endonucleases is attributed to a grealter accessibility for tbe substrate by the variant, and also a higher affinity for the DNA backbone. It also appears that the relative activities of the two enzymes, particularly at high ionic strength, are proportional to their populations in the monomeric enzyme form. That is, according to gel filtration data, half of the N199H molecules exist as monomers in 200 mM NaCl, whereas those of the wild-type are mainly dimeric. Consequently, the Asp199 residue of the EcoRI endonuclease may be implicated in the protein-protein interaction leading to dimerization, as well as in coupling to DNA substrates. In summary, it is proposed that active monomeric endonuclease molecules, derived from the dimeric enzyme, recognize and form a complex with a single stranded form of the DNA substrate, which then undergoes nucleophilic substitution and cleavage.
An oligonucleotide microarray system was developed for the simultaneous detection of porcine epidemic diarrhea virus, transmissible gastroenteritis virus, porcine enteric calicivirus, porcine group A and C rotavirus. RNAs of the reference viruses and porcine diarrhea samples were extracted and amplified using one-step multiplex RT-PCR in the presence of cyanine 5-dCTP and hybridized on the microarray chip that spotted the virus-specific oligonucleotides. This system were approximately 10-to 100-fold higher in sensitivity than conventional RT-PCR, and the assay time was less than 3 hours. The relative sensitivity and specificity were 92% and 72.2%, respectively, based on 102 porcine diarrhea samples using RT-PCR as gold standard. These results suggested that the oligonucleotide microarray system in this study be probably more reliable and reproducible means for detecting porcine enteric viruses and that it could be of substantial use in routine diagnostic laboratories.
Aptamers, composed of single-stranded DNA or RNA oligonucleotides that interact with target molecules through a specific three-dimensional structure, are selected from pools of combinatorial oligonucleotide libraries. With their high specificity and affinity for target proteins, ease of synthesis and modification, and low immunogenicity and toxicity, aptamers are considered to be attractive molecules for development as anticancer therapeutics. Two aptamers - one targeting nucleolin and a second targeting CXCL12 - are currently undergoing clinical trials for treating cancer patients, and many more are under study. In this mini-review, we present the current clinical status of aptamers and aptamer-based cancer therapeutics. We also discuss advantages, limitations, and prospects for aptamers as cancer therapeutics. [BMB Reports 2015; 48(4): 234-237]
Gene targeting is an in situ manipulation of endogenous gene with precise manner by the introduction of exogenous DNA. The process of gene targeting involves a homologous recombination reaction between the targeted genomic sequence and an exogenous targeting vector. In elucidating the function of many genes, gene targeting has become the most important method of choice. (omitted)
Proceedings of the Korean Aquaculture Society Conference
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2004.05a
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pp.321-322
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2004
Of the 20 arbitrarily chosen primers, six oligonucleotides decamer primers were used on the basis of the number of the polymorphisms generated in catfish (Silurus asotus) from Yesan and bullhead (Pseudobagrus fulvidraco) from Dangjin in Korea. Six primers were used generating a total of 602 scorable bands in catfish and 195 in bullhead population, respectively, ranging in size of DNA fragments from less than approximately 100 to larger than 2,000 base pairs (bp). Six primers yielded 199 polymorphic fragments (33.1 %) in catfish and 47 (24 %) in bullhead, respectively. In the present study, a total of 328 common fragments (an average of 54.7 per prime.) were observed in catfish population, whereas 84 (an average of 14.0 per prime.) in bullhead. The total number of specific fragments in catfish and bullhead population were 76and 64, respectively.
We prepared two oligonucleotides containing same base pairing, but different base sequence in the middle region, d(CGAATTCG) and d(CGTATACG). NMR and UV absorbance data represented that such variation in base sequence could cause a significant difference in melting temperature and dynamics between d(CGAATTCG)$_2$ and d(CGTATACG)$_2$ duplexes, which are regarded to be associated with the stacked structure and the width of the minor groove of them. The latter showed poor stability compared to the former, because of poor stacking of bases. And berenil could bind to the minor groove of d(CGAATTCG)$_2$ which is relatively narrow, more strongly than d(CGTATACG)$_2$ and this gave rise to large improvement in thermal stability of the d(CGAATTCG)$_2$ duplex, compared to d(CGTATACG)$_2$.
Oligonucleotides for a conserved region of the coat protein gene of cucumber mosaic virus (CMV) and a hammerhead structure ribozyme against CMV RNA were synthesized using a DNA synthesizer. Both strands of oligonucleotides were annealed and restricted with BamHI/SacI, then cloned into a plasmid pBS SK (+). The cloned CMV substrate and ribozyme were sequenced to verify correct constructions. In vitro transcriptions were carried out by using T7 RNA polymerase with BssHII or SspI digests of $1\;{\mu}g$ of substrate and ribozyme clones. The size of substrate RNA was 176 nucleotides (nt) containing 50 nt of CMV RNA sequence, 6 nt of XbaI restriction site and 120 nt of vector-derived sequence in the case of BssHII digest. The size of ribozyme RNA was 164 nt containing 40 nt of ribozyme RNA sequence and same sequences of substrate. Substrate RNA was efficiently cleaved into two fragments (96 nt and 80 nt) by ribozyme RNA. This endonucleolytic cleavage occurred more efficiently at $55^{\circ}C$ than $37^{\circ}C$. SspI digest-derived substrate RNA (2234 nt) was also cleaved into two fragments by the same ribozyme. SspI digest-derived ribozyme RNA (2222 nt) cleaved the above substrate to two fragments. In vitro-tested ribozyme construct is being cloned into a plant transformation vector to develop virus-resistant plants.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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