Long-chain fatty acids (LCFAs) are vital in cellular compartments, primarily regulating lipid metabolism. Fatty Acid-Binding Proteins (FABPs) facilitate LCFA transport, lipid synthesis, storage, and act as signaling molecules influencing various pathways, including inflammation. FABP4, in particular, is linked to vascular and cardio-related diseases, and it plays a role in macrophage-mediated inflammatory responses. Previous studies have identified FABP4 as not only a representative biomarker for lipogenesis but also as having correlations with immune responses. This study aims to investigate the regulation of the chicken FABP4 (chFABP4) gene by toll-like receptor 3 (TLR3) activation and determine the signaling pathways that are involved in chFABP4 transcriptional regulation. We analyzed the transcriptional regulation of chFABP4 in TLR3-stimulated DF-1 cells. The results showed that chFABP4 was up-regulated upon stimulation with polyinosinic-polycytidylic acid (PIC), a TLR3 ligand. Notably, chFABP4 transcription was independently regulated in the NF-κB signaling pathway. It was up-regulated in p38 inhibition, demonstrating that the p38 signaling pathway might suppress the transcription of chFABP4 within TLR3-activated DF-1 cells. In contrast, chFABP4 expression was down-regulated in JNK signaling pathway inhibition, suggesting the positive regulation of JNK signaling pathway for chFABP4 transcription in DF-1 cells in response to TLR3 activation, consistent with findings in macrophages. MEK pathway inhibition resulted in a similar regulation to NF-κB signaling. These results suggest that each MAPK contributes differentially to the transcriptional regulation of chFABP4 by in DF-1 cells in response to TLR3 activation.
Park, Mi Na;Jang, Hyun-Jun;Keum, Dae Ho;Choi, Jin Ae;Yoo, Jae Gyu;Byun, Sung June;Park, Jong Ju;Ji, Ju Young;Lee, Kyung-Tai;Kim, Tae-Hun;Lee, Hyun-Jeong
Korean Journal of Poultry Science
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v.40
no.4
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pp.299-304
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2013
Tracheal epithelial cells (TECs) are an important tool for studies of viral respiratory diseases. Primary TECs have been cultured from human, mouse and hamster. It is also necessary to diagnose viral respiratory disease and reveal infection mechanisms in chicken. In this study, we isolated tracheal epithelial layers from tracheal of 20-day-old chicks and cultured primary TECs from the isolated layers. Ciliated cells which were a typical morphology of TECs were observed in cultured primary TECs and maintained until cell passage 5 (15 to 20 days). When we analyzed expression patterns of epithelial marker genes (retinoic acid responder, FGF-binding protein, virus activating protease (VAP) in TECs compared to immortalized chicken embryonic fibroblast cell line (DF-1), all the marker genes are highly expressed in TECs than in DF-1. When TECs were cultured with 0.1 and 1 MOI of ND virus (rNDV-GFP strain) to test the susceptibility of TECs for ND virus, 12.6% and 48.2% of the incubated TECs were infected respectively. In addition, when DF-1 was incubated with 1 MOI of ND virus, the virus infection rate of DF-1 was three times lower than the virus infection rate of TECs. These data could contribute to study infection mechanisms of viral respiratory diseases and control them in chicken.
Avian influenza viruses (AIVs) must utilize host cellular factors to complete their life cycle, and fragile X mental retardation protein (FMRP) has been reported to be a host factor promoting AIV ribonucleoprotein (vRNP) assembly and exports vRNP from the nucleus to the cytoplasm. The functional role of chicken FMRP translational regulator 1 (cFMR1) as a host factor of AIV is, however, poorly understood. In this study, we targeted the cFMR1 gene in DF1 cells using clustered regularly interspaced short palindromic repeats/Cas9-mediated genome editing to examine the functional role of cFMR1 as a host factor of AIV. We found that cFMR1 stimulated viral gene transcription during early stages of the viruses' life cycle and did not affect viral progeny production and viral polymerase activity in DF1 cells 24 hours post infection. cFMR1 overexpression did not exert significant effects on virus production, compared to the control. Therefore, unlike in mammalian systems (e.g., humans or mice), cFMR1 did not play a pivotal role in AIV but only seemed to stimulate viral proliferation during early stages of the viral life cycle. These results imply that the interplay between host factors and AIV differs between mammals and avian species, and such differences should be considered when developing anti-viral drugs for birds or establishing AIV-resistant bird models.
Jeong Woong Park;Marc Ndimukaga;Jaeyoung Heo;Ki-Duk Song
Korean Journal of Poultry Science
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v.50
no.4
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pp.193-202
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2023
Influenza IAVs are encapsulated negative-strand RNA viruses that infect many bird species' respiratory systems and can spread to other animals, including humans. This work reanalyzed previous microarray datasets to identify common and specific differentially expressed genes (DEGs) in chickens, as well as their biological activities. There were 760 and 405 DEGs detected in HPAIV and LPAIV-infected chicken cells, respectively. HPAIV and LPAIV have 670 and 315 DEGs, respectively, with both viruses sharing 90 DEGs. Because of HPAIV infection, numerous genes were implicated in a fundamental biological function of the cell cycle, according to the functional annotation of DEGs. Of the targeted genes, expressions of CDC Like Kinase 3 (CLK3), Nucleic Acid Binding Protein 1 (NABP1), Interferon-Inducible Protein 6 (IFI6), PIN2 (TERF1) Interacting Telomerase Inhibitor 1 (PINX1), and Cellular Communication Network Factor 4 (WISP1) were altered in DF-1 cells treated with polyinosinic:polycytidylic acid (PIC), a toll-like receptor 3 (TLR3) ligand, suggesting that transcription of these genes be controlled by TLR3 signaling. To gain a better understanding of the pathophysiology of AIVs in chickens, it is crucial to focus more research on unraveling the mechanisms through which AIV infections may manipulate host responses during the infection process. Insights into these mechanisms could facilitate the development of novel therapeutic strategies.
This study aims to investigate the effects of hydrogen peroxide and grapefruit seed extract used as a chemical and natural disinfectants on human conjunctival cells in vitro. The main component of grapefruit seed extract is a narigin. It is one of the flavonoid types in citrus fruits and f1avonoids are widely recognized as naturally occurring(삭제) antioxidants. Cytotoxicity was determined by mitochondrial activity(MTT assay) and DNA damage was analyzed by measuring Comet assay. In LDH assay, 5% of grapefruits seed extract has been observed as a material is giving recovery effect of damaged cultured conjuctival cells by hydrogen peroxide. And also, each of concentrations has been treated simultaneously with same amounts and cytotoxicity of hydrogen peroxide and grapefruit seed extract have been estimated by LDH leakage assay after 24 hours. In conclusion, H2O2-induced cytotoxicity, apoptosis were Significantly prevented by grapefruit seed extract. It is a main component of bioflavonoids that we can simply take it as food. The present results suggest that grapefruit seed extract is a useful disinfectanct having antioxidant and antiapoptopic activity as a natural product.
A chicken clathrin-associated adaptor protein $3-{\delta}$ subunit 2 (AP3S2) is a subunit of AP3, which is involved in cargo protein trafficking to target membrane with clathrin-coated vesicles. AP3S2 may play a role in virus entry into host cells through clathrin-dependent endocytosis. AP3S2 is also known to participate in metabolic disease developments of progressions, such as liver fibrosis with hepatitis C virus infection and type 2 diabetes mellitus. Chicken AP3S2 (chAP3S2) gene was originally identified as one of the differentially expressed genes (DEGs) in chicken kidney which was fed with different calcium doses. This study aims to characterize the molecular characteristics, gene expression patterns, and transcriptional regulation of chAP3S2 in response to the stimulation of Toll-like receptor 3 (TLR3) to understand the involvement of chAP3S2 in metabolic disease in chicken. As a result, the structure prediction of chAP3S2 gene revealed that the gene is highly conserved among AP3S2 orthologs from other species. Evolutionarily, it was suggested that chAP3S2 is relatively closely related to zebrafish, and fairly far from mammal AP3S2. The transcriptional profile revealed that chAP3S2 gene was highly expressed in chicken lung and spleen tissues, and under the stimulation of poly (I:C), the chAP3S2 expression was down-regulated in DF-1 cells (P<0.05). However, the presence of the transcriptional inhibitors, BAY 11-7085 (Bay) as an inhibitor for nuclear factor ${\kappa}B$ ($NF{\kappa}B$) or Tanshinone IIA (Tan-II) as an inhibitor for activated protein 1 (AP-1), did not affect the expressional level of chAP3S2, suggesting that these transcription factors might be dispensable for TLR3 mediated repression. These results suggest that chAP3S2 gene may play a significant role against viral infection and be involved in TLR3 signaling pathway. Further study about the transcriptional regulation of chAP3S2 in TLR3 pathways and the mechanism of chAP3S2 upon virus entry shall be needed.
Nucleoporin 210 (Nup210) is associated with several physiological processes including muscle and neural cell differentiation, autoimmune diseases, and peripheral T cell homeostasis. Chicken Nup210 (chNup210) gene was originally identified as one of the differentially expressed genes (DEGs) in the kidney tissues of chicken. To elucidate the role of Nup210 in metabolic disease of chicken, we studied the molecular characteristics of chNup210 and analyzed its gene expression under the stimulation of Toll-like receptor 3 (TLR3) ligands. The Nup210 genomic DNA and amino acid sequences of various species including fowls, fishes, and mammals were retrieved from the Ensemble database and subjected to bioinformatics analyses. The expression of Nup210 from several chicken tissues was probed through qRT-PCR, and chicken fibroblast DF-1 cell line was used to determine the change in expression of chNup210 after stimulation with TLR3 ligand, polyinosinic-polycytidylic acid (poly (I:C)). The chNup210 gene was highly expressed in chicken lung and spleen tissues. Although highly conserved among the species, chNup210 was evolutionary clustered in the same clade as that of duck compared to other mammals. Furthermore, this study revealed that chNup210 is expressed in TLR3 signaling pathway and provides fundamental information on Nup210 expression in chicken. Future studies that offer insight into the involvement of chNup210 in the chicken innate immune response against viral infection are recommended.
The biodegradation of Aroclor 1242 was investigated by the mixed cultivation of the natural bacterial isolates and a genetically engineered microorganism (GEM). The natural strain of MS-1003 degraded the Aroclor 1242 through the ortho-cleavage pathway, while the other strains through the meta-cleavage pathway. When the MS-1003 strain was additionally inoculated into the 1 day culture of the DJ-26 strain and then cultivated for 2 days, the Aroclor was degraded up to 86% and resulted in increase of the meta-cleavage product. But in the MS-1003 culture inoculated with the DJ-26, degradation of the Aroclor was limited to the level of each pure culture. By the mixed cultivation of the DJ-26 strain together with the DJ-12 or its GEM strain of DF-10, which degrades the Aroclor through the meta-cleavage pathway, degradation of the Aroclor as well as production of the meta-cleavage compound were lower than those of each pure culture. The degradation of Aroclor 1242 by the GEM strain was not improved over the parental strain. Therefore, a form of cometaboiism of Aroclor 1242 was found in the mixed culture of the DJ-26 and MS-1003 strains which degrade the Aroclor through the different metabolic pathway, but in the mixed culture of the DJ-26 and DJ-12 strains degrading Aroclor 1242 through the same pathway, a kind of competetion for the substrate was observed.
We investigated the fruits of Rubus crataegifolius Bge, a plant which has been traditionally used in Korea in phytotherapy, to describe antioxidant materials from plant sources. R. crataegifolius fruits were extracted with methanol and further fractionated into n-hexane, diethyl ether, and ethyl acetate. The antioxidant activity of each fraction and the residue was assessed using a 1,1-diphenyl-2-picrylhydrazyl (DPPH), $H_2O_2$ radical scavenging method, and their cytotoxicity on human primary kerationcyte (HK) was determined by an MTS assay. The R. crataegifolius fruit methanol extract showed strong antioxidant activity (75.04%, 50%) compared with vitamin C (79.9%, 54.1%) by the DPPH, and $H_2O_2$ method, respectively. The measured activity from the subsequent extracts of the methanol extract were 20.3% for n-hexane fraction (HF), 68.8% for diethyl ether fraction (DF), 67.1% for ethyl acetate fraction (EF), and 67.1% for the residue fraction (RE) by DPPH and 2.2% for HF, 1.6% for DF, 10% for EF, and 50% for the RE by $H_2O_2$ assay. An oxidative stress model of HK was established under a suitable concentration (1 mM). The cell viability of the RE treated group increased and the percentage of apoptotic cells decreased at concentrations of 0.005-0.02% RE compared with the $H_2O_2$ treated group. Fruit extracts of the medicinal plant R. crataegifolius showed potent antioxidant activity and the ability to relieve cell damage from $H_2O_2$ induced injury to HK.
The transcription of mRNA of avian influenza virus is regulated temporally during infection. Therefore, the measurement of transcript level in host cells should be performed before viral release from host cells because errors can occur in the analysis of the transcript levels if the viruses released from the infected cells re-infect cells. In this study, the timing of viral release was determined by measuring the level of viral RNA from viruses released from H9N2-infected chicken fibroblast cell line UMNSAH/DF-1 by semi-quantitative RT-PCR. The viral genomic RNA was isolated together with mouse total RNA which was added to the collected medium as carrier to monitor the viral RNA recovery and to use its GAPDH as an internal control for normalizing reverse transcription reaction as well as PCR reaction. It was found that viral release of H9N2 in the chicken fibroblast cell line UMNSAH/DF-1 took between 16 and 20 h after infection. We measured all 8 viral mRNA levels. Of the 8 transcripts, 7 species of viral mRNAs (each encoding HA, NA, PB1, PB2, NP, M, NS, respectively) except PA mRNA showed robust amplification, indicating these mRNA can be used as targets for amplification to measure transcript levels. These results altogether suggest that the method in this study can be used for screening antiviral materials against viral RNA polymerase as a therapeutic target.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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