Technologies on preimplantation porcine embryos have been developed quickly and significantly. Successful development of systems for culture of porcine zygotes to the blastocyst stage has made it possible to utilize follicular oocytes for in vitro production of embryos and thus stimulated research on various embryo technologies. Recent technological development of embryo cryopreservation, separation of X- and Y-bearing spermatozoa and non-surgical embryo transfer has also made it easy to utilize in vivo- and in vitro-produced embryos for artificial manipulation to produce clones and transgenic pigs. Further progress in overcoming various problems associated with each embryo technology will result in acceptable efficiency to utilize porcine embryos with a high or increased quality. Combining these technologies will accelerate further expansion of the swine industry not only for meat production but also for the production of therapeutic recombinant proteins and xonografts.
Park, M.C.;Kim, J.Y.;Kim, S.B.;Park, Y.S.;Park, H.D.;Lee, J.H.;Oh, D.S.;Kim, Jae-myeoung
Asian-Australasian Journal of Animal Sciences
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v.22
no.2
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pp.174-180
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2009
This study was carried out to establish an appropriate condition for the efficient cryopreservation of the mouse pronuclear embryo. In vitro cryopreservation of pronuclear embryos was carried out by slow freezing or vitrification methods and development rate of 2-cell, blastocyst and hatched blastocyst was measured as well as survival rate of the thawed pronuclear embryo. After slow freezing, vitrification and thawing of mouse pronuclear embryos, the survival rate and blastocyst development rate for the vitrification group was 97.3 and 53.4%, respectively, which was significantly higher as compared to the slow freezing group with 88.6 and 23.9%, respectively (p<0.05). Blastocyst developmental rate in each experimental group was significantly higher for 21 h in the post-hCG group at 40.5-57.0% than the 24 h post-hCG group at 40.5% (p<0.05). ICM (Inner cell mass) cell numbers of blastocyst-stage embryos during the different stages of mouse pronuclear embryos, slow freezing and vitrification period in the control and vitrification groups were 22.1${\pm}$2.7 and 17.0${\pm}$3.1-22.0${\pm}$3.2, respectively; hence, the slow freezing group (10.2${\pm}$2.0) had significantly higher cell numbers than those of the other two groups (p<0.05). Trophoblast (TE) cell number in the control group, 65.8${\pm}$12.6, was significantly higher than in the slow freezing group, 41.6${\pm}$11.1 (p<0.05). The total cell numbers in the control group and 21 h post hCG group were 87.9${\pm}$13.6 and 81.8${\pm}$14.1, respectively, and were significantly higher than for the slow freezing group (51.8${\pm}$12.6; p<0.05).
Cryopreservation and in vitro fertilization (IVF) protocols are important in genetic studies and applications to transgenic animals. Various studies about boar sperm cryopreservation have been studied for a long time. Those were about the use of extenders, the choice of sugars, the cooling and warming rates. The factors that influence the boar sperm are the dramatic changes in temperatures, osmotic and toxic stresses, and reactive oxygen species (ROS) generation. Among these factors, ROS generation is the main damage to DNA which is a principal genetic material and the most important for the practical applications. So we wondered whether ROS generation could be reduced. In previous study, monothioglycerol (MTG) was essential for the culture of embryo stem cells. Therefore we added MTG in the freezing extender based on lactose-egg yolk (LEY) with trehalose. For the assessment of the frozen-thawed sperm, we focused onmotility, membrane integrity and DNA damage. First, we used a computer-aided sperm analysis system for overall conditions of sperm such as motility and viability. Then we performed the sperm chromatin structure assay for DNA integrity and hypo-osmotic swelling test for membrane integrity. And our result showed the existence of MTG in the freezing extender caused less damage to DNA and higher motility in frozen-thawed boar sperm. Also we checked a relative antioxidant activity of MTG in modified Modena B extender. We concluded that this reagent can activate sperm mitochondria at MTG $0.2{\mu}M$, contribute to sperm motility and DNA integrity but there was no significant difference on membrane integrity. Also antioxidant activity of MTG in modified Modena B extender was proved.
While the technique of In Vitro Fertilization and Embryo Transfer has been proven undoutedly, it is for from reaching a consensus on the legal implication. Legal authority regarding clinical therapeutic In Vitro Fertilization and Embryo Transfer is, for all practical purpose, nonexistant. In this paper, it is discussed existing regulation dealing with In Vitro Fertilization and Embryo Transfer and related areas i.e. the regulation related medical technologies, the use of donor sperm, donor eggs, surrogate uteri, multiple pregnancy, miscarriages, extra embryos, the technique of cryopreservation. The legality of embryo donation, the responsibility for embryo preservation or destruction and the legal status of the embryos are surveyed. Finally the various legal theories that may give rise to physician liability in connection with clinical In Vitro Fertilization are also reviewed.
A cryopreservation is an essential tool for preservation of germplasm. In this study, the possibility for cryopreservation of embryogenic cells of Siberian ginseng (Eleutherococcus senticosus) in liquid nitrogen (-196℃) was evaluated. The effects of glycerol and dimethyl sulfoxide (DMSO) at different concentrations (5%, 10% and 20%) as cryoprotectants on regrowth of cryopreserved E. senticosus embryogenic cells were tested. There was significant effect of cryoprotectants on regrowth of embryogenic cells (p=0.0019). The highest and lowest fresh mass gain were achieved when embryogenic cells were frozen with 10% DMSO and 5% glycerol (138.2±5.9 and 61.3±14.6, respectively). The effect of the cryoprotectants on the frequency embryo germination was tested. There was no significant difference between glycerol and DMSO (p=0.846). Three different concentrations of cryoprotectants did not significantly affect the frequency embryo germination (p=0.534). Finally, the genetic fidelity of the plantlets regenerated from non-cryopreserved and cryopreserved embryogenic cells was tested by random amplified polymorphic DNA (RAPD) and inter simple sequence repeat (ISSR) analysis. RAPD and ISSR analysises showed that there was no genetic variation among regenerants.
The objective of this study was to evaluated the efficiency on sperm cryosurvival and ability of in vitro fertilization using Triladyl and Lactose Egg-Yolk(LEY) as extenders for cryopreservation of separated sperm by 65% percoll in miniature pig. Sperm viability was measured with SYBR-14/PI double stained sperm by flow cytometry. Ability on embryo cleavage rate and blastocyst development were observed by in vitro fertilization after frozen-thawing of sperm separated by 65% percoll. The experimental groups were designed that separated sperm by 65% percoll with Triladyl (ST) or LEY(SL) and unseparated sperm with Triladyl(UT) or LEY(UL) for cryopreservation. As a results, the viability was significantly(p<0.05) higher in ST(55.1%), SL(63.1%), UL(58.8%) than UT(38.2%) group. Sperm viability in SL(63.1%) group was significantly(p<0.05) higher than other experimental groups. On the other hand, embryo cleavage rate was significantly(p<0.05) higher in ST(79.1%), SL(83.2) than UT(74.1) and UL(75.7%) groups at 96h after in vitro fertilization. Blastocyst development was also significantly(p<0.05) higher in ST(21.5%), SL(20.9%) than UT(17.0%) and UL(18.8%) groups. In conclusion, cryopreservation of miniature boar sperm separated by 65% percoll were beneficial to viability and capacity on in vitro fertilization.
This study was performed to evaluate whether vitrification method using ethyle glycol and eletron microscopic (EM) grid could be used far the cryopreservation of human oocytes in ART program. Surplus oocytes were obtained from consented IVF patients. These surplus human oocytes were frozen with our vitrification method, Oocytes were exposed to 1.5M ethylene glycol (EG) in DPBS far 2,5 minutes, followed by 5.5M EG plus 1.0M Sucrose in DPBS for 20 seconds. Then oocytes were transferred onto the EM grid and the grid was plunged into LN2 for storage. For thawing, oocytes containing EM grid were sequentially transferred in 1.0M, 0.5M, 0.25M, 0.125M and 0 M sucrose in DPBS solution at the intervals of 2.5 minutes. Thawed and survived oocytes were provided for ICSI. Embryos from vitrified oocytes were transferred to uterus of the patient on 4 to 5 days after ovulation in natural cycles of on 15 to 17 day of hormone replacement cycles. A total of 370 oocytes from 26 patients were thawed and 159 (43.0%) of them survived. One hundred thirty four oocytes (84.3%) were fertilized normally and 126 pre-embryos were transferred to 26 patients, resulting in 5 clinical pregnancies. The pregnancy rate per transfer was 19.2% and implantation rate was 4.0%. Among the five pregnant, 4 patients delivered 4 healthy babies and the one patient was 32-week ongoing pregnancy. From this results, vitrification using ethylene glycol as cryoprotectant and EM grid is a rapid and simple method that can be effectively applied for the cryopreservation of human oocytes in ART program.
Kim, Ji-Chul;Seo, Byoung-Boo;Park, Sung-Baek;Kim, Jae-Myeoung
Journal of Embryo Transfer
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v.27
no.1
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pp.63-69
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2012
The objective of this study was to investigate the effectiveness of cryopreservation methods for the effect of various vitrification containers, such as EM-grid, OPS, or cryo-loop on the survival and developmental rate of vitrified mouse pronuclear embryos, and mouse cleavage embryo, at 21, 24, 27 and 30 hr after hCG injection. Post-thaw cleavage was similar among treatments, while the developmental rates of mouse blastocyst and hatched blastocyst were higher ($p$ <0.05) in 27 hr and 30 hr than 21 hr. The developmental rate of hatched blastocyst at vitrified cleavage mouse embryos in cryo-loop was significantly higher than vitrified pronuclear embryos of control group as well as EM-grid and OPS ($p$ <0.05). The developmental rate using cryo-loop was higher than EM-grid, but in case of OPS at vitrified cleavage and mouse pronuclear embryos, no significant difference was noticed. These results of our study show that the developmental rates of mouse embryos were unaffected by various vitrification containers, but in case of mouse embryos and hatched blastocysts at late vitrified pronuclear embryos the developmental rates were higher than early vitrified pronuclear embryos. Moreover, the developmental rate of hatched blastocyst at vitrified cleavage mouse embryos was significantly higher than vitrified pronuclear embryos. For better execution of this study, it will be mandatory to include improvement of vitrification containers, cryopreservation methods and conditions, higher survival rate, safe preservation, contamination and embryo loss.
The study has been carried out in order to evaluate the effects of embryonic stage, and cryopreservation method on the rates of viability and development of the cryopreserved mouse early embryos. The results were as following:In the treatment steps of cryoprotectant, for the fertilized oocyte with pronucleus(PN), 2-step was better than the others. And for the other embryos, 4-step was better than 2- or 3-step. In respect to the embryonic stage, as the embryos developed from fertilized oocytes to 8-cell embryos, the rates of viability and development were increased higher. Therefore, 8-cell embryo was better stage than the others. In respect to the kind of cryoprotectants, PROH was better than DMSO for the fertilized oocyte, as a cryoprotectant. DMSO, for the 2-cell embryos and PROH and DMSO for the 4- and 8-cell embryos were suitable for cryopreservation.
A simplified technique which cryoprotects zygotic embryos by encapsulation-dehydration was developed for the germplasm conservation of herbaceous peony (Paeonia lactiflora Pall.). The highest survival rate $(85\%)$ was obtained from embryos treated by encapsulation-dehydration. The zygotic embryos were precultured on MS medium containing 0.3mg/L $GA_3$ for 1 day. The precultured embryos were encapsulated in $3\%$ (w/v) alginate beads and immersed for 1 h in MS medium containing 2 M glycerol and 0.5 M sucrose. The encapsulated embryos were dehydrated for 5h by air drying prior to direct immersion in liquid nitrogen. This encapsulation-dehydration method appears to be a promising technique for germplasm cryopreservation of a herbaceous peony.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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