${\mu}MT$ knockout mice are genetically deficient in the transmembrane domain of mu chain of the immunoglobulin M (IgM) heavy chain, resulting in the absence of mature B cells. ${\mu}MT$ knockout mice is an in vivo model system used to clarify the role of B cells in various diseases. Enteropathogenic Escherichia coli (EPEC) induces acute and chronic diarrheal disease, especially in children of developing countries. The formation of attaching and effacing (A/E) lesion is a prominent pathogenic factor in the intestinal epithelium of EPEC infection. The A/E lesion is modulated by genes located on the pathogenic island locus of enterocyte effacement (LEE) which encode a type III secretion system (T3SS) and A/E lesion-related effector proteins. Citrobacter rodentium is a murine pathogen utilized in studying the pathogenic mechanisms of EPEC in human infections. Citrobacter rodentium produce A/E lesion to attach to intestinal epithelium, thus providing a murine model pathogen to study EPEC. Several studies have investigated the pathogenesis of Citrobacter rodentium in the ${\mu}MT$ knockout mice. In this review, we introduce the ${\mu}MT$ murine model in the context of C. rodentium pathogenesis and describe in detail the role of B cells and antibodies in this disease.
The main objective of this study was to investigate whether Lactobacillus rhamnosus GG (LGG) ameliorated the effects of Citrobactor rodentium infection in Toll-like receptor 2 (TLR2) knockout (KO) and TLR4 KO mice, as well as in wild-type C57BL/6 (B6) mice. TLR2 KO, TLR4 KO, and B6 mice were divided into three groups per each strain. Each group had an uninfected control group (n = 5), C. rodentium-infected group (n = 8), and LGG-pretreated C. rodentium-infected group (n = 8). The survival rate of B6 mice infected with C. rodentium was higher when pretreated with LGG. Pretreatment with LGG ameliorated C. rodentium-induced mucosal hyperplasia in B6 and TLR4 KO mice. However, in C-rodentium-infected TLR2 KO mice, mucosal hyperplasia persisted, regardless of pretreatment with LGG. In addition, LGG-pretreated B6 and TLR4 KO mice showed a decrease in spleen weight and downregulation of tumor necrosis factor alpha, interferon gamma, and monocyte chemotactic protein 1 mRNA expression compared with the non-pretreated group. In contrast, such changes were not observed in TLR2 KO mice, regardless of pretreatment with LGG. From the above results, we conclude that pretreatment with LGG ameliorates C. rodentium-induced colitis in B6 and TLR4 KO mice, but not in TLR2 KO mice. Therefore, LGG protects mice from C. rodentium-induced colitis in a TLR2-dependent manner.
This study aimed to identify the therapeutic ability of a novel toll-like receptor (TLR) 5 agonist, KMRC011, on ulcerative colitis induced by Citrobacter rodentium and dextran sulfate sodium in a C57BL/6N mouse model. Ulcerative colitis was induced in the mice by the oral administration of 1% dextran sulfate sodium in sterile drinking water for seven days ad libitum, followed by C. rodentium infection on the seventh day by intra-gastric administration (DSS-CT group). KMRC011 was administered intramuscularly at both 24 h and 15 min before (Treatment 1 group), and at both 15 min and 24 h after (Treatment 2 group) the C. rodentium infection. The length of the large intestine and histopathological counts were significantly greater and mucosal thickness was significantly thinner in the Treatment 1 group compared to the DSS-CT and Treatment 2 groups. Il-6 and Il-10 mRNA expression levels were upregulated, while Ifn-γ and Tnf-α mRNA expression levels were significantly downregulated in the Treatment 1 group, compared to the DSS-CT group. NF-κB p65 expression level was elevated due to ulcerative colitis in the DSS-CT group, but was significantly downregulated in the Treatment 1 group. Overall, KMRC011 showed protective effects against murine colitis by inhibiting NF-κB signaling.
$Na^+/H^+$ exchangers (NHEs) have been shown to be involved in regulating cell volume and maintaining fluid and electrolyte homeostasis. Pooled evidences have suggested that loss of $Na^+/H^+$ exchanger isoform 8 (NHE8) impairs intestinal mucosa. Whether NHE8 participates in the pathology of infectious colitis is still unknown. Our previous study demonstrated that somatostatin (SST) could stimulate the expression of intestinal NHE8 so as to facilitate $Na^+$ absorption under normal condition. This study further explored whether NHE8 participates in the pathological processes of infectious colitis and the effects of SST on intestinal NHE8 expression in the setting of infectious colitis. Our data showed that NHE8 expression was reduced in Citrobacter rodentium (CR) infected mice. Up-regulation of NHE8 improved diarrhea symptom and mucosal damage induced by CR. In vitro, a similar observation was also seen in Enteropathogenic E. coli (EPEC) infected Caco-2 cells. Seglitide, a SST receptor (SSTR) 2 agonist, partly reversed the inhibiting action of EPEC on NHE8 expression, but SSTR5 agonist (L-817,818) had no effect on the expression of NHE8. Moreover, SST blocked the phosphorylation of p38 in EPEC-infected Caco-2 cells. Taken together, these results suggest that enhancement of intestinal NHE8 expression by SST could ameliorate the symptoms of mice with infectious colitis.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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