Streptomyces clavuligerus NRRL3585 produces a clinically important $\beta$-lactamase inhibitor, clavulanic acid (CA). In order to increase the production of CA, the glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase (GAPDH) gene (gap) was deleted in S. clavuligerus NRRL3585 to overcome the limited glyceraldehyde-3-phosphate pool; the replicative and integrative expressions of ccaR (specific regulator of the CA biosynthetic operon) and claR (Lys-type transcriptional activator) genes were transformed together into a deletion mutant to improve clavulanic acid production. We constructed two recombinant plasmids to enhance the production of CA in the gap1 deletion mutant of S. clavuligerus NRRL3585: pHN11 was constructed for overexpression of ccaR-claR, whereas pHN12 was constructed for their chromosomal integration. Both pHN11 and pHN12 transformants enhanced the production of CA by 2.59-fold and 5.85-fold, respectively, compared with the gap1 deletion mutant. For further enhancement of CA, we fed the pHN11 and pHN12 transformants ornithine and glycerol. Compared with the gap1 deletion mutant, ornithine increased CA production by 3.24- and 6.51-fold in the pHN11 and pHN12 transformants, respectively, glycerol increased CA by 2.96- and 6.21-fold, respectively, and ornithine and glycerol together increased CA by 3.72- and 7.02-fold, respectively.
Background: Loss of heterozygosity (LOH) on chromosomal regions is crucial in tumor progression and this study aimed to identify genome-wide LOH in pancreatic cancer. Materials and Methods: Single-nucleotide polymorphism (SNP) profiling data GSE32682 of human pancreatic samples snap-frozen during surgery were downloaded from Gene Expression Omnibus database. Genotype console software was used to perform data processing. Candidate genes with LOH were screened based on the genotype calls, SNP loci of LOH and dbSNP database. Gene annotation was performed to identify the functions of candidate genes using NCBI (the National Center for Biotechnology Information) database, followed by Gene Ontology, INTERPRO, PFAM and SMART annotation and UCSC Genome Browser track to the unannotated genes using DAVID (the Database for Annotation, Visualization and Integration Discovery). Results: The candidate genes with LOH identified in this study were MCU, MICU1 and OIT3 on chromosome 10. MCU was found to encode a calcium transporter and MICU1 could encode an essential regulator of mitochondrial $Ca^{2+}$ uptake. OIT3 possibly correlated with calcium binding revealed by the annotation analyses and was regulated by a large number of transcription factors including STAT, SOX9, CREB, NF-kB, PPARG and p53. Conclusions: Global genomic analysis of SNPs identified MICU1, MCU and OIT3 with LOH on chromosome 10, implying involvement of these genes in progression of pancreatic cancer.
To examine the interrelationship between transgenic insertion patterns and transgene expression profiles in established transgenic fish lines, four stable transgenic marine medaka Oryzias dancena germlines harboring ${\beta}$-actin regulator-driven RFP reporter constructs were selected. The established transgenic strains were characterized with regard to their transgenic genotypes (insertion pattern, concatemer formation, and transgene copy number based on genomic Southern blot hybridization and qPCR assay) and expression characteristics at the mRNA (qRT-PCR), protein (western blot), and phenotypic (fluorescent appearance) levels. From comparative examinations, it was found that transgenic expression at both the transcription and translation levels could be significantly downregulated in transgenic strains, potentially through methylation-mediated transgene silencing that was particularly associated with the formation of a long tail-to-head tandem concatemer in the chromosomal integration site(s). When this occurred, an inverse relationship between the transgene copy number and fluorescence intensity was observed in the resultant transgenic fish. However, with the other transgenic genotype, transgenic individuals with an identical Southern blot hybridization pattern, containing a tandem concatemer(s), had very different expression levels (highly robust vs. low expression strengths), which was possibly related to the differential epigenetic modifications and/or degrees of methylation. The concatemer-dependent downregulation of transgene activity could be induced in transgenic fish, but the overall pattern was strain-specific. Our data suggest that neither a low (or single) transgene copy number nor tandem transgene concatemerization is indicative of strong or silenced transgene expression in transgenic fish carrying a ubiquitous transgene. Hence, a sufficient number of transgenic lineages, with different genotypes, should be considered to ensure the establishment of the best-performance transgenic line(s) for practical applications.
The herbicide bialaphos is a potent inhibitor of glutamine synthetase in higher plants. A bialaphos resistance (bar) gene encoding for an acetyltransferase was isolated from genomic DNA of Pseudomonas syringae pv tabaci. The bar gene was ligated to the binary vector pBI121. Pistils of tobacco plane were heated with the bar gene containing plasmid DNA at various times after pollination. When the treatment was applied at 30 and 40 h after pollination, a number of transgenic plants were obtained. Premary transformation (T$_{0}$ generation) and their progenies (T$_1$T$_2$) were resistant to both bialaphos and kanamycin at a dosage lathal to untransformed control plants. Stable integration of bar gene into chromosomal DNA was proven by Southern blot analysis of genomic DNA isolated from T$_1$progenies. These results show that the bialaphos resistant plane could be obtained by treatment to pistils with the exgenous bar gene through the fertilization cycle of tobacco.o.
Streptomyces is well known for their ability to synthesize enormous varieties of antibiotics as secondary metabolites. Among them, S. avermitilis produces avermectins, a group of antiparasitic agents used in human and veterinary medicine. However, S. avermitilis also produces oligomycin, which is a potential toxic inhibitor of oxidative phosphorylation in mammalian cells. Therefore, we decided to disrupt oligomycin synthetase gene to prevent co-production of oligomycin in S. avermitilis. To create plasmid for disruption, the smallest gene of oligomycin synthetase gene cluster was obtained by PCR from S. avermitilis chromosome. Then, apramycin resistance gene was inserted in oligomycin synthetase gene for selection. After transformation of this plasmid, oligomycin synthetase gene (olmA5) in the chromosome was displaced with disruption cassette on the plasmid via homologous recombination. As a result of this gene replacement, we obtained mutants (olmA5::apra) that no longer makes the toxic oligomycin. And the mutants confirmed by PCR and HPLC analysis. However, showed no increasement of avermectin production in the mutant was observed.
Kim, Oh Cheol;Kim, Sang-Yoon;Hwang, Dong Hyeon;Oh, Doo-Byoung;Kang, Hyun Ah;Kwon, Ohsuk
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.23
no.3
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pp.304-312
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2013
The thermotolerant methylotrophic yeast Hansenula polymorpha is attracting interest as a potential strain for the production of recombinant proteins and biofuels. However, only limited numbers of genome engineering tools are currently available for H. polymorpha. In the present study, we identified the HpPOL3 gene encoding the catalytic subunit of DNA polymerase ${\delta}$ of H. polymorpha and mutated the sequence encoding conserved amino acid residues that are important for its proofreading 3'${\rightarrow}$5' exonuclease activity. The resulting $HpPOL3^*$ gene encoding the error-prone proofreading-deficient DNA polymerase ${\delta}$ was cloned under a methanol oxidase promoter to construct the mutator plasmid pHIF8, which also contains additional elements for site-specific chromosomal integration, selection, and excision. In a H. polymorpha mutator strain chromosomally integrated with pHIF8, a $URA3^-$ mutant resistant to 5-fluoroorotic acid was generated at a 50-fold higher frequency than in the wild-type strain, due to the dominant negative expression of $HpPOL3^*$. Moreover, after obtaining the desired mutant, the mutator allele was readily removed from the chromosome by homologous recombination to avoid the uncontrolled accumulation of additional mutations. Our mutator system, which depends on the accumulation of random mutations that are incorporated during DNA replication, will be useful to generate strains with mutant phenotypes, especially those related to unknown or multiple genes on the chromosome.
The argE gene of E.coli was introduced into #Ilmibyeo# cultivar of rice by Agrobacterium tumefaciens and a large number of transgenic plants were produced. Embryogenic calli were co-cultivated with A. tumefaciens strain AGL1 carrying the plasmid pCAMBIA1300 containing hygromycin resistance(HygR). Transgenic plants showing in vitro resistance to 50mg/L hygromycin were obtained using a selection procedure. Stable integration of argE and HPT genes into chromosomal DNA was proven by southern blot analysis and PCR analysis of genomic isolated from $T_0$ progenies. The fragments of 650 bp(HPT) were detected in transgenic rice lines. The 230 bp(argE) fragments were showed in agarose gel, and detected fragments were matched with size of argE specific primer. The microscopic feature of leaf on scanning electron microscope(SEM) revealed differences between clear and chalky in shape and arrangement of stoma but did not discriminate.
Seo, Mi-Suk;Bae, Chang-Hyu;Choi, Dae-Ock;Rhim, Seong-Lyul;Seo, Suk-Chul;Song, Pill-Soon;Lee, Hyo-Yeon
Journal of Plant Biotechnology
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v.29
no.2
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pp.85-92
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2002
This study has been focused on improving transformation efficiency of rice using Agrobacterium tumefaciens. We have demonstrated the effect of this system when the GPAT gene related to the cold-resistance was transferred by Agrobacterium tumefaciens in rice. Transformation conditions were modified using intron $\beta$-glucuronidase (GUS) expression as a reporter gene in the rice. In this study, mature seed-derived calli of rice (Oruza sativa L. cv. Dongjin) were pre-cultured for 3 days and then infected with Agrobacterium. When this infected calli were cultured in the dark for 10 days on co-cu]lure medium containing 50 mg/L of CaCl$_2$, 30 mg/L of acetosyringone, 2 mg/L of 2,4-D, 120 mg/L of betaine, high GUS expression was observed. In the present transformation system, the efficiency of transformation of GPAT gene was about 54%. Stable integration of GPAT gene into chromosomal DNA was proven by southern blot analysis of genomic DNA isolated from T$_{0}$ progenies. The progenies (T1 generation) derived from primary transformant of 5 lines were segregated with a 3 (resistant) : 1 (sensitive ratio) in medium containing hygromycin. This high frequency transformation system can be used as a useful tool in transformation of another monocotyledon.n.
The bialaphos is a potent inhibitor of glutamine synthease in higher plants and is used as a non-selective herbicide. We have used the bialaphos resistant gene(Bar) encoding for an acetyltransferase isolated from Streptomyces hygroscopicus SF1293. Callus derived from mature seeds of rice(Oryza sativa L. cv. Dong Jin) were co-cultivated with Agrobacterium tumefaciens EHA101 carring a plasmid pGPTV-HB containing genes for hygromycin resistance (HygR) and Bar. Transgenic plants showing in vitro resistance to 50 mg/L hygromycin and 10 mg/L bialaphos were obtained by using a two-step selection/regeneration procedure. Transformation efficiency of rice was about 30% which was as high as reported in other dicotyledons. Progenies ($\textrm{T}_{1}$ generation) derived from primary transformant of 17 lines were segregated with a 3 resistant : 1 sensitive ratio in medium containing hygromycin and bialaphos. Stable integration of Bar gene into chromosomal DNA was proven by Southern blot analysis of genomic DNA isolated from $\textrm{T}_{2}$ progenies. Transgenic plants ($\textrm{T}_{3}$) grown in the field were resistant to bialaphos (Basta) at a dosage lethal to wild type plants.
Park, Jae-Yong;Kim, Jeong-Ran;Chang, Hee-Jin;Kim, Chang-Ho;Park, Jae-Ho;Jung, Tae-Hoon
Tuberculosis and Respiratory Diseases
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v.45
no.3
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pp.587-595
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1998
Background: Recombinant adenovirus hold promise as vectors to carry therapeutic genes for several reasons: 1) they can infect both dividing and non-dividing cells; 2) they have the ability to directly transduce tissues in vivo; 3) they can easily be produced in high titer; and 4) they have an established record of safety as vaccination material. However, one of the major limitation in the use of adenoviruses is that transgene expression is quite short because adenovirusees insert their DNA genome episomally rather than by chromosomal integration, and an immune response against the virus destroys cells expressing the therapeutic gene. Since sodium butyrate has been reported to induce adenovirus-mediated gene expression, we hypothesized that treatment of tumor cells, transduced with herpes simples virus thymidine kinase(HSVtk) gene using adenoviral vector, with butyrate could augment the effect of gene therapy. Methods: We transduced HSVtk gene, driven by the cytomegalovirus promoter, into REN cell line(human mesothelioma cell line). Before proceeding with the comparison of HSVtk/ganciclovir mediated bystander killing, we evaluated the effect of butyrate on the growth of tumor cells in order to rule out a potential antitumor effect of butyrate alone, and also on expression of HSVtk gene by Western blot analysis. Then we determined the effects of butyrate on bystander-mediated cell killing in vitro. Results: There was no inhibition of growth of cells exposed to butyrate for 24 hours at a concentration of 1.5mM/L. Toxic effects were seen when the concentration of butyrate was greater than 2.0mM/L. Gene expression was more stable and bystander effect was augmented by butyrate treatment of a concentration of 1.5mM/L. Conclusion: These results provide evidence that butyrate can augment the efficiency of cell killing with HSVtk/GCV system by inducing transgene expression and may thus by a promising new approach to improve responses in gene therapy using adenoviral vectors.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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