One subfraction from the hexane fraction of Acri graminei Rhizoma, the E4 fraction which is mainly consisted of acorenone, showed a potential inhibitory activity against chloramphenicol acetyltransferase (CAT) of S. aureus SA2 that is a multidrug-resistant strain to 10 usual antibiotics. The combination therapy of this fraction with chloramphenicol resulted in reduction of the minimal inhibitory concentration from 128 $\mu\textrm{g}$/ml to 8 $\mu\textrm{g}$/ml. The E4 fraction also revealed to prevent the induction of CAT from this strain.
A gene can be selectively overexpressed in E. coli by utilizing the phage T7 RNA polymerase's stringent recognition and active transcription of the T7 promoter. The T7 expression system was constructed such that the T7 RNA polymerase gene is under the control of lacUV5 promoter in one plasmid, and that the target gene, the promoterless chloramphenicol acetyltransferase (CAT) gene with E. coli ribosome binding site is under the control of T7 promoter in the other plasmid. Only the E. coli cells containing both plasmids show high resistance to chloramphenicol. When the copy number of the runaway plasmid containing the polymerase gene was varied by a temperature shift, amounts of the CAT protein synthesized upon induction was correspondingly changed as shown in SDS gel electrophoresis.
The nucleotide sequence of inducible chloramphenicol acetyl-transferase(CAT) gene isolated from a small plasmid pSBK203 of Staphylococcus aureus was determined. The base sequence shows that structural gene of pSBK203-CAT encodes a protein of 213 amino acids and has a leader region which encodes a short polypeptide of 9 amino-acids in its upstream. vertical bar /sup 35/S vertical bar-Methionine labelled CAT gene product in minicell showed almost same mobility with pC194-CAT of which molecular weight is 24Kdal on polyacrylamide gel electrophoresis. Predicted amino acid sequence of pSBK203-CAT has revealed a high degree of homology with the CATs of pC194 and pC221 than those of cat-86, Tn9 and proteus mirabilis PM13.
Trout CYP1A-CAT expression construct was generated by cloning -3.5 Kb $5^I$ flanking DNA of trout liver CYP1A gene in front of CAT gene at pCAT-basic vector. Hepa 1 cells, which are known to contain a functional arylhydrbcarbon $receptor^I$ were transfected with trout CYP1A-CAT using lipofectin. 3-Methylcholanthrene (1 nM) was added into hepa 1 cells in culture in order to examine if $5^I$ flanking DNA of trout CYP1A gene could interact with mouse transactivating factors to bring about transcription of the chloramphenicol acetyltransferase(CAT) reporter gene. The level of CAT protein was measured by CAT ELISA and the level of CAT mRNA was determined by RTPCR. The treatment of 1 nM 3-methylcholanthrene resulted in two fold increases in CAT protein as well as CAT mRNA compared to untreated control hepa 1 cells. These data indicate that arylhydrocarbon receptors of mouse hepa 1 cells are functional to activate exogenously transfected trout CYP1A-CAT construct in terms of both transcription and translation of CAT. We also examined the effect of 3-methylcholanthrene on endogenous cyplal activity in hepa 1 cell. 3-Methylcholanthrene (1 nM) treatment to hepa 1 cells trahsfected with trout CYP1A-CAT construct stimulated the level of cyp1a1 mRNA by two folds and the activity of ethoxyresorufin-O-deethylase by two fold compared to that of control cells. In this study we reported that trout CYP1A-CAT reporter gene expression construct could be expressed by 3-methylcholanthrene treatment in mouse hepa 1 cells. Thus trout CYP1A-CAT could serve as a good model to study the mechanism of regulation of CYP1A1 gene expression.
Overproduced proteins in many cases result in forming insoluble inclusion bodies, and their formation might be due to high concentration of protein. To investigate how proteins become insoluble, chloramphenicol acetyltransferase (CAT) and .betha.-lactamase were overproduced, and their solubilities and activities were determined. CAT was accumulated from 9 to 45% of total cellular protein in a fully soluble form without inclusion body formation. CAT specific activity was shown to be proportional to the amount of the protein produced. Moderately produced .betha.-lactamase by the phase T7 expression system at 30.deg.C comprised only mature forms in a soluble form. However, overproduced .betha.-lactamase at 37.deg.C became insoluble. Most precursor forms of .betha.-lactamase in the cytoplasm were insoluble, whereas majority of the mature forms in the periplasm space were soluble. Also, chaperone GroE proteins which assist proper protein folding and translocation did not increase .betha.-lactamase solubility significantly under the experimental condition. It seems that the formation of inclusion bodies in the cell is related to the nature of protein itself rather than just to high concentration of protein.
The combination of hexane extract (E4) of rhizome of Acorus gramineus with chloramphenicol (Cm) was applied to Gram negative Cm resistant microbials to find the possibility of clinical use and to clarify the relationship of the activity of chloramphenicol acetyltransferase (CAT). The combination of $1,000\;{\mu}g/ml$ of E4 and $8\;{\mu}g/ml$ of Cm entirely ceased the growth of S. aureus SA2, a gram positive resistant strain to 10 antibiotics. But in Gram negative strains which possess CAT activity, some showed considerably strong resistances to Cm and some did weakly.
Function-driven metagenomic analysis is a powerful approach to screening for novel biocatalysts. In this study, we investigated lipolytic enzymes selected from an alluvial soil metagenomic library, and identified two novel esterases, EstDL26 and EstDL136. EstDL26 and EstDL136 reactivated chloramphenicol from its acetyl derivates by counteracting the chloramphenicol acetyltransferase (CAT) activity in Escherichia coli. These two enzymes showed only 27% identity in amino acid sequence to each other; however both preferentially hydrolyzed short-chain p-nitrophenyl esters (${\leq}C_5$) and showed mesophilic properties. In vitro, EstDL136 catalyzed the deacetylation of 1- and 3-acetyl and 1,3-diacetyl derivates; in contrast, EstDL26 was not capable of the deacetylation at $C_1$, indicating a potential regioselectivity. EstDL26 and EstDL136 were similar to microbial hormone-sensitive lipase (HSL), and since chloramphenicol acetate esterase (CAE) activity was detected from two other soil esterases in the HSL family, this suggests a distribution of CAE among the soil microorganisms. The isolation and characterization of EstDL26 and EstDL136 in this study may be helpful in understanding the diversity of CAE enzymes and their potential role in releasing active chloramphenicol in the producing bacteria.
Acorenone, a diterpene isolated from Acorus gramineus, showed strong resistance inhibitory activity against multi-drug resistant microorganisms such as Staphylococcus aureus SA2, which has resistance to 10 usual antibiotics including chloramphenicol (Cm). At the level of $5\;{\mu}g/ml$ when combined with $50\;{\mu}g/ml$ of Cm. Bacterial resistance to Cm is due to the presence in resistant bacteria of an enzyme, chloramphenicol acetyltransferase (CAT), which catalyses the acetyl-CoA dependent acetylation of the antibiotic at C-3 hydroxyl group. To elucidate the mechanism of resistant inhibitory effect, the acorenone which had the strongest resistant inhibitory activity, was investigated on the CAT assay. As the result, the combination of Cm and acorenone showed the strongest inhibitory activity on CAT as noncompetitive and dose dependent manner.
Chloramphenicol acetyltransferase (CAT) was purified to homogeneity from Morganella morganii starting with ammonium sulphate fractionation, followed by separation on DEAE-Sephadex A50, and G-100 Sephadex gel filtration. The enzyme was purified 133.3 fold and showed a final specific activity of 60 units/mg protein with a yield of 37%. Sodium dodecyl sulphate-polyacrylamide gel electrophoresis (SDS-PAGE) of the purified enzyme revealed it as a heterotetramer that consists of four subunits with close molecular weights (19.5, 19, 18, and 17.5 kDa). The molecular weight of the native enzyme was calculated to be 78 kDa, as determined by gel filtration, which approximated to that of the four subunits (74 kDa). The enzyme showed a maximum activity at pH 7.8 when incubated at $35^{\circ}C$. A Lineweaver-Burk analysis gave a Km of 5.0 uM and Vmax of 153.8 U/ml. The amino acid composition of the purified enzyme was also determined.
Kim, Ok-Soo;Choi, Jung-Hye;Soung, Young-Hwa;Lee, Seon-Hee;Lee, Jae-Hwa;Ha, Jong-Myung;Ha, Bae-Jin;Heo, Moon-Soo;Lee, Sang-Hyeon
Archives of Pharmacal Research
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v.27
no.9
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pp.906-911
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2004
In order to evaluate estrogenic compounds in natural products, an in vitro detection system was established. For this system, the human breast cancer cell line MCF7 was stably trans-fected using an estrogen responsive chloramphenicol acetyltransferase (CAT) reporter plas-mid yielding MCF7/pDsCAT-ERE119-Ad2MLP cells. To test the estrogenic responsiveness of this in vitro assay system, MCF7/pDsCAT-ERE119-Ad2MLP cells were treated with various concentrations of 17f3-estradiol. Treatments of 10$^{-8}$ to 10$^{-12}$ M 17$\beta$-estradiol revealed significant concentration dependent estrogenic activities compared with ethanol. We used in vitro assay system to detect estrogenic effects in Puerariae radix and Ginseng radix Rubra extracts. Treat-ment of 500 and 50 $\mu\textrm{g}$/ml of Puerariae radix extracts increased the transcriptional activity approximately 4- and 1.5-fold, respectively, compared with the ethanol treatment. Treatment of 500, 50, and 5 $\mu\textrm{g}$/ml of Ginseng radix Rubra extracts increased the transcriptional activity approximately 3.2-,2.7, and 1.4-fold, respectively, compared with the ethanol treatment. These observations suggest that Puerariae radix and Ginseng radix Rubra extracts have effective estrogenic actions and that they could be developed as estrogenic supplements.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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