Cdc25B is a mitotic regulator that might act as a starter phosphatase to initiate the positive feedback loop at the entry into mitotic (M) phase. In the present study, distribution of Cdc25B mRNA in duodenal mucosa of the chicken was demonstrated by means of in situ hybridization histochemistry (ISHH) using sense and antisense digoxigenin (DIG)-labeled RNA probes. The results showed that there were many labeled cells distributing in the duodenal mucosa of the adult chicken. Of these labeled cells, 81.60${\pm}$9.63% of Cdc25B mRNA positive cells was distributed in the basilar part and mid-portion of the intestinal gland and 36.21${\pm}$8.81% in the middle and basilar portion of villi of the small intestine of the chicken, respectively. Most of these labeled cells were positive in the regions of the stem cell and proliferation. The signals of ISHH decreased from basilar to upper part in the crypt of Lieberkuhn and weakened in the inferior villi of the duodenum. Moreover, the positive signals were both in the cytoplasm and cell nucleus. However, the labeled cells were negative in both the lamina muscularis mucosae and muscular layer. The results of ISHH suggested the existence of Cdc25B mRNA and vigorous proliferation activities in the duodenal mucosa of adult chicken, replenishing the cells which had sloughed off from the superior part of the villus. Our results provide some molecular evidence for a regular pattern of avian intestinal epitheliosis and functional partition and provide an approach to further study of the locations of Cdc25B in the chicken.
Cdc25 phosphatases are important regulators of the cell cycle. Their abnormal expression detected in a number of tumors implies that their dysregulation is involved in malignant transformation. However, the role of Cdc25B in renal cell carcinomas remains unknown. To shed light on influence on renal cell carcinogenesis and subsequent progression, Cdc25B expression was examined by real-time RT-PCR and western blotting in renal cell carcinoma and normal tissues. 65 kDa Cdc25B expression was higher in carcinomas than in the adjacent normal tissues (P<0.05), positive correlations being noted with clinical stage and histopathologic grade (P<0.05). To additionally investigate the role of Cdc25B alteration in the development of renal cell carcinoma, Cdc25B siRNA was used to knockdown the expression of Cdc25B. Down-regulation resulted in slower growth, more G2/M cells, weaker capacity for migration and invasion, and induction of apoptosis in 769-P transfectants. Reduction of 14-3-3 protein expression appeared related to Cdc25B knockdown. These findings suggest an important role of Cdc25B in renal cell carcinoma development and provide a rationale for investigation of Cdc2B-based gene therapy.
Wee1 is a kinase regulator of the M-phase promoting factor (MPF; a complex of cdc2 and cyclin B1). The present study was undertaken to determine the role(s) of wee1 in the early stages of mouse ovarian follicles. The expression of wee1 and the correlated cell-cycle components, namely cdc2, cyclin B1, and cdc25C, were evaluated by immunohistochemistry. In addition, the expression of Tyr15-phosphorylated cdc2 (cdc2-p) was also examined to determine whether wee1 kinase phosphorylates cdc2 existed. Each component except cdc25C was found cytoplasmic in the oocytes at all stages of follicles, while cdc25C was not detected in primordial follicles. It was found primarily in ovarian somatic cells and to a small extent in granulosa cells of the growing follicles. To further confirm the expression of cell-cycle components in the primordial follicular oocytes, day1 ovaries were enzymatically and mechanically dissociated, then oocytes were isolated from somatic including pre-granulosa cells, and we confirmed that cdc2-p was expressed in oocytes of primordial follicles. From the results of the present study, we concluded wee1, without the counteracting cdc25C, would cause meiotic arrest of oocytes by the inhibitory phosphorylation of cdc2. The expression of all these proteins in the granulosa cells of growing follicles may regulate their mitosis concurrently with the growth of oocytes and follicles.
The sense and antisense digoxigenin-labeled RNA probes of four genes, Cdc25A, Cdc25B, Sox2 and Mnb, were produced by using SP6 and T7 RNA polymerases, respectively, and in vitro transcription. Expression patterns of the four genes were detected by in situ hybridization in HH (Hamburger and Hamilton) stage 10 chick embryos. In general, expression patterns of the four genes were similar. mRNA of the four genes was mostly restricted to the entire CNS (central nervous system). All were confined to an identical region, neural tube, neural groove and caudal neural plate, corresponding to the notochord or spinal cord, but there was some distinction in specific region or in concentration, for example in somites. The overlap in expression at the same developmental stage in the CNS suggests that the four genes may be functional similar or related in CNS development. Expression patterns of the four genes support specific roles of these regulators in the developing CNS.
The zebrafish is an emerging vertebrate model organism in reproductive biology. The oocyte maturation of zebrafish is triggered by maturation inducing hormone (MIH, 17α,20β-Dihydroxy-4-pregnen-3-one). In almost all animals, the oocyte maturation is governed by activation of pre-MPF which consists of cyclinB and inactive Cdk1. In the oocyte of Xenopus and mice, the activity of Cdk1 is regulated in two ways, one is the interaction with cyclinB and the other is phosphorylation/dephosphorylation of T14/Y15 residues on the Cdk1 by Wee1 and Cdc25. Unlike Xenopus and mice that have a sufficient amount of pre-MPF, pre-MPF is absent in GV oocyte of most teleost including zebrafish. Therefore, the activation of MPF during zebrafish oocyte maturation might totally depend on de novo synthesis of cyclinB proteins. It is reported that the translation of maternal mRNA is regulated by combination of several RNA binding proteins such as CPEB, Dazl, Pum1/Pum2, and insulin-like growth factor2 mRNA-binding protein 3 in the zebrafish oocytes. However, the definitive mechanism of these proteins to regulate the translation of stored maternal mRNAs remains to be elucidated. Therefore, the investigation of the maturation process of the zebrafish oocyte will provide new information that can help identify the role of translational control in early vertebrate oocyte maturation.
The meiotic process from the primordial stage to zygote in female germ cells is mainly adjusted by post-transcriptional regulation of pre-existing maternal mRNA and post-translational modification of proteins. Several key proteins such as the cell cycle regulator, Cdk1/cyclin B, are post-translationally modified for precise control of meiotic progression. The second messenger (cAMP), kinases (PKA, Akt, MAPK, Aurora A, CaMK II, etc), phosphatases (Cdc25, Cdc14), and other proteins (G-protein coupled receptor, phosphodiesterase) are directly or indirectly involved in this process. Many proteins, such as CPEB, maskin, eIF4E, eIF4G, 4E-BP, and 4E-T, post-transcriptionally regulate mRNA via binding to the cap structure at the 5' end of mRNA or its 3' untranslated region (UTR) to generate a closed-loop structure. The 3' UTR of the transcript is also implicated in post-transcriptional regulation through an association with proteins such as CPEB, CPSF, GLD-2, PARN, and Dazl to modulate poly(A) tail length. RNA interfering is a new regulatory mechanism of the amount of mRNA in the mouse oocyte. This review summarizes information about post-transcriptional and post-translational regulation during mouse oocyte meiotic maturation.
Park, Chang-Eun;Kim, Young-Hoon;Jeon, Eun-Hyun;Lee, Suman;Lee, Sook-Hwan;Lee, Kyung-Ah
Proceedings of the Korean Society of Developmental Biology Conference
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2003.02a
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pp.21-23
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2003
Mechanisms regulate the arrest and growth of the resting primordial follicles are very poorly understood. To elucidate genes involved in the early folliculogenesis, we conducted suppression subtractive hybridization using mRNA from day1 and day5 ovaries and selected weel for further analysis, since it was most frequent gene in the day1-subtracted cDNA library (1). Expression of weel and correlated components of the cell cycle machinery, such as cdc2, cyclin B1, cdc25C, and phosphorylated cdc2 was evaluated by immunohistochemistry. In primordial follicles, expression of weel, cdcw, and cyclin B1 was cytoplasmic in oocytes, but phosphorylated cdc2 was weakly expressed in oocytes. While cdc25C expression was in ovarian somatic and in some theca cells. None of components was expressed in the pre-granulosa cells of the primordial follicles, while weel weakly, and cdc2 and cyclin B1 was strongly expressed in the granulosa cells of the growing follicles. Results from the present study suggest that 1) the mejotic arrest of the oocytes may not due to of cell cycle machinery, and 2) the weel may arrest meiosis by sequestering cdc2 and cyclin B1 in the cytoplasm by protein-protein interactions and/or by inhibitory phosphorylation.
HnRNPK is a multifunctional protein that participates in chromatin remodeling, transcription, RNA splicing, mRNA stability and translation. Here, we uncovered the function of hnRNPK in regulating the proliferation and differentiation of myoblasts. hnRNPK was mutated in the C2C12 myoblast cell line using the CRISPR/Cas9 system. A decreased proliferation rate was observed in hnRNPK-mutated cells, suggesting an impaired proliferation phenotype. Furthermore, increased G2/M phase, decreased S phase and increased sub-G1 phase cells were detected in the hnRNPK-mutated cell lines. The expression analysis of key cell cycle regulators indicated mRNA of Cyclin A2 was significantly increased in the mutant myoblasts compared to the control cells, while Cyclin B1, Cdc25b and Cdc25c were decreased sharply. In addition to the myoblast proliferation defect, the mutant cells exhibited defect in myotube formation. The myotube formation marker, myosin heavy chain (MHC), was decreased sharply in hnRNPK-mutated cells compared to control myoblasts during differentiation. The deficiency in hnRNPK also resulted in the repression of Myog expression, a key myogenic regulator during differentiation. Together, our data demonstrate that hnRNPK is required for myoblast proliferation and differentiation and may be an essential regulator of myoblast function.
Journal of the Korean Society of Food Science and Nutrition
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v.33
no.8
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pp.1237-1245
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2004
Agaricus blazei Murill is a medicinal mushroom native to Brazil. It used to be a source of antitumor and immunoactive compounds and considered a health food in many countries. In the present study, it was examined the effects of water extract of A. blazei (WEAB) on the growth of human lung carcinoma cell line A549 in order to investigate the anti-proliferative mechanism by WEAB. Treatment of A549 cells to WEAB resulted in the growth inhibition, morphological change and induction of apoptotic cell death in a dose-dependent manner as measured by MTT assay and flow cytometric analysis. Flow cytometric analysis revealed that WEAB caused G2/M phase arrest of the cell cycle, which was associated with a down-regulation of cyclin A in both transcriptional and translational levels. WEAB treatment induced a marked up-regulation of cyclin-dependent kinase (Cdk) inhibitor p21, however, the levels of Cdk2, Cdc2, Wee1, Cdc25C and p53 expression were remained unchanged in WEAB treated cells. In addition, WEAB treatment inhibited the levels of cyclooxygenase (COX)-2 mRNA and protein without alteration of COX-l expression. Taken together, these findings suggest that WEAB may be a potential chemotherapeutic agent for the control of human lung carcinorma cells and further studies will be needed to identify the active compounds that confer the anti-cancer activity of WEAB. Once such compounds are identified, the mechanisms by which they exert their effects can begin to be characterized.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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