The present study evaluated the effects of a mixture of Galla rhois and Cinnamomum cassia extracts (GCE) (1 : 1, w/w) on susceptibility to the colonization of Campylobacter (C.) jejuni in broilers. Eighty two-week-old broilers (n = 20 per group) were used to estimate the efficacy of GCE against C. jejuni infection via drinking water. Antibacterial activity testing revealed that the minimum bactericidal concentration of GCE against C. jejuni was 2.5 mg/mL. Broilers challenged with C. jejuni were administered 0.0 (Non-GCE), 2.5 (GCE-2.5), 5.0 (GCE-5.0) and 10.0 g/L (GCE-10) GCE for 7 days, and the cecal contents were collected from five broilers per group on the 1st, 3rd, 5th, and 7th day post-treatment. On day 3 post-administration, the number of C. jejuni in GCE-5.0 (p < 0.05) and GCE-10 (p < 0.01) was significantly decreased relative to Non-GCE, while on day 7 those in all GCE-treated groups were significantly decreased compared to the Non-GCE group (p < 0.001). Hematological and blood biochemical analysis revealed no significant differences in parameters between the Non-GCE and GCE-treated groups. Based on the results of the present study, GCE was identified as a safe and alternative candidate to suppress C. jejuni colonization in broilers.
Kim, Hyeong-Su;Seo, Deok-Jin;Seong, Min-Ho;Han, Kwon-Seek;Park, Jung-Yong;Jeong, Myeong-Ho;Park, Dong-Yeop;Park, Dong-Ju;Koh, Phil-Ok
Korean Journal of Veterinary Service
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v.40
no.2
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pp.101-105
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2017
The purpose of this study was to investigate prevalence and antimicrobial resistance patterns of Campylobacter spp. from duck feces in northern area of the Gyeongnam province, Korea. Samples of 121 duck feces were taken from April to December 2014 for this survey. Samples were examined by bacteria isolation and reverse transcriptase-polymerase chain reaction assay for detection of Campylobacter spp. Campylobacter were isolated in 37 samples (30.6%). Among these samples, C. jejuni and C. coli were isolated in 35 samples and 2 samples, respectively. Minimum inhibitory concentration (MIC) test is performed to investigate antimicrobial resistance patterns of Campylobacter spp. C. jejuni were resistant to ciprofloxacin (85.7%), nalidixic acid(82.9%), tetracycline (77.1%), gentamicin (57.1%), azithromycin (40.0%), clindamycin (34.3%), erythromycin (22.9%), and florfenicol (8.6%). These data support a database of pollution and antimicrobial resistance of Campylobacter spp. from duck feces and provide a basic information of reducing the secondary damage of antibiotic misuse.
A major cause of diarrhea in a dog is an infection with bacteria which include Salmonella spp., Campylobacter (C.) spp., and Clostridium (Cl.) spp.. It is fastidious to identify these bacteria by the culture. The purpose of this experiment is to devise the method for detecting Cl. perfringens, C. jejuni, C. coli, and Salmonella spp. with rapid and high sensitivity. The fecal samples collected from 71 normal and 66 diarrheic dog feces were used to compare the prevalence of the enteric pathogens and to develop a multiplex real-time polymerase chain reaction (PCR) assay for clinical use. Detection of Cl. perfringens, C. coli, and C. jejuni in diarrhea feces was higher than normal feces. A developed multiplex real-time PCR is useful for determining the presence and quantity of pathogen-specific or other unique sequences with in a fecal sample.
To investigate the epidemiological trait of intestinal diseases of animals caused by thermophilic Campyllobacter spp., isolation of etiological agent was carried out and the profiles of plasmids and the transfer of resistance plasmid in the isolated Campylobacter spp. were examined. The results were as follows. 1. A total of 110 isolates of C jejuni and C coli were subjected to the test for the presence of plasmid DNA. Of the isolates examined, 60% of the isolates were noted to harbor plasmid DNA. Plasmid occurrencer ate from pigs, chickens and cattle were 76.2%, 61.7% and 37.7%, respectively. The plasmids of a large molecular weight, ranging from 36 Md to 86Md, were identified with the strains of tetracycline resistant. 2. Transfer frequency of tetracycline resistant plasmids was higher in the case of the filter mating method than in the broth mating method by the factor of 10~1,000. 3. Tetracycline resistant plasmids of C jejuni were transferrable to C jejuni and C coli by conjugation. In a low frequency, the transfer of tetracycline plasmid was also possible to Vibrio parahemolyticus. However, it was impossible to transfer to Streptococcus fecalis, E coli and Vibrio cholerae. 4. Tetracycline resistant plasmids of C jejuni were impossible to transfer to Campylobacter spp. and related bacteria by transformation.
LEE , YOUNG-DUCK;CHOI, JUNG-PIL;MOK, CHUL-KYOON;JI, GEUN-EOK;KIM, HAE-YEONG;NOH, BONG-SOO;PARK, JONG-HYUN
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.14
no.6
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pp.1227-1231
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2004
Campylobacter, one of the emerging foodborne pathogens, is highly adaptable to the external environments by changing its morphology. In the present study, a question of whether the whole-cell antibody would still be effective for its detection even though the morphology of C. jejuni was changed was examined. When microaerophilic C. jejuni was exposed to aerobic conditions for 48 h, its morphological change was detected by confocal laser scanning microscope: Its morphology was confirmed as a spiral-bacilli form in microaerobic condition, however, as a coccoid form with a little spiral-bacilli form, when exposed to aerobic conditions. Also, the expressions of the whole-cell proteins of C. jejuni, and the suppression or induction of newly synthesized proteins in both aerobic and microaerobic conditions were analyzed by two dimensional gel electrophoresis. Additionally, immunoblotting assay with the whole cell antibody for the proteins expressed under the two conditions was performed. It was confirmed that the commercial whole-cell antibody of C. jejuni raised in rabbit was reactive. When analyzed with MALDI- TOF MS, the expressed proteins were confirmed as flagellins. Therefore, even though the morphology changed in aerobic condition, these flagellins were expressed and worked as the eitope proteins, thus making it possible to utilize for the development of an immunosensor for real-time detection of any kind of C. jejuni cell.
The adhesion of Campylobacter jejuni to chicken skin, along with the associated morphological changes under aerobic conditions at 4, 25, and $37^{\circ}C$ and microaerobic ($O_2\;5%,\;CO_2\;10%,\;N_2\;85%$) conditions, were investigated using confocal laser scanning microscopy (CLSM), flow cytometry, and plate counting. The morphological change of C. jejuni from a spiral shape to a coccoid form or VBNC form (viable but nonculturable form) progressed rapidly under aerobic conditions at 25, 37, and $4^{\circ}C$. As regards adhesion, the C. jejuni cells were mostly located in the crevices and feather follicles of the chicken skin, where the cells in the feather follicles floated freely in the entrapped water, even after the skin was rinsed quite thoroughly. CLSM also revealed the penetration of some spiral-shaped C. jejuni cells into the chicken skin. Even after changing their shape at various temperatures, coccoid-form C. jejuni cells were still found in the crevices and feather follicles of the chicken skin.
This study evaluated Campylobacter jejuni risk in ground meat products. The C. jejuni prevalence in ground meat products was investigated. To develop the predictive model, survival data of C. jejuni were collected at $4^{\circ}C-30^{\circ}C$ during storage, and the data were fitted using the Weibull model. In addition, the storage temperature and time of ground meat products were investigated during distribution. The consumption amount and frequency of ground meat products were investigated by interviewing 1,500 adults. The prevalence, temperature, time, and consumption data were analyzed by @RISK to generate probabilistic distributions. In 224 samples of ground meat products, there were no C. jejuni-contaminated samples. A scenario with a series of probabilistic distributions, a predictive model and a dose-response model was prepared to calculate the probability of illness, and it showed that the probability of foodborne illness caused by C. jejuni per person per day from ground meat products was $5.68{\times}10^{-10}$, which can be considered low risk.
Patchanee, Prapas;Chokboonmongkol, Chomporn;Zessin, Karl-Hans;Alter, Thomas;Pornaem, Sarinya;Chokesajjawatee, Nipa
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.22
no.11
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pp.1467-1470
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2012
We compared rapid fingerprinting using repetitive sequencebased PCR (rep-PCR) for subtyping Campylobacter jejuni isolates to the widely used multilocus sequence typing (MLST). Representative C. jejuni isolates (n = 16) from broilers were analyzed using MLST and rep-PCR. Both techniques demonstrated an equal discriminatory power of 0.8917, and 9 subgroups were identified. Clonal identification of all 16 isolates was identical for both techniques. The rep-PCR as described in this study may be used as a rapid and cost-effective alternative for subtyping of C. jejuni isolates, or as an effective screening tool in large epidemiological studies.
Kim, Yong-hwan;Mah, Jum-sul;Kang, Ho-jo;Cha, In-ho
Korean Journal of Veterinary Research
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v.27
no.2
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pp.245-251
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1987
A total of 145 strains of thermophilic Campylobacter spp. isolated from the fecal specimens of 108 cattle, 120 pigs and 104 chickens. The isolation rates of Campylobacter jejuni from cattle, pigs and chickens were 36.1%, 38.3% and 28.8%, respectively. In the biotyping of 115 strains of C. jejuni, 49.6% were belonged to biotype I, 33.9% biotype II, 10.4% biotype IV and 6.1 % biotype III. Twenty-eight strains of C. coli were 78.6% of biotype I, 21.4% biotype II. Two strains of C. laridis belonged to biotype I and II. One hundred of 105 C. jejuni cultures were typable serologically and represented 13 serogroups Serotype 4, 5, 26, 27 and 36 were encountered most frequently. Eighteen of 23 C. coli cultures were typable serologically and represented 6 serogroups. Serotype 8, 20, 21 and 31 were encountered most frequently. In the comparison of frequency of serotype between animal species, serotypes 4, 30, 5, 26 and 27 were encountered relatively common in the cattle source isolates, serotypes 26 and 36 in the pigs, and 36 and 17 in the chickens. The serotypes of C. coli encountered most frequently were serotype 8 and 31.
Seung-Hwan Hong;Kun-Ho Seo;Sung Ho Yoon;Soo-Ki Kim;Jungwhan Chon
Food Science of Animal Resources
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v.43
no.1
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pp.73-84
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2023
Campylobacteriosis is a common cause of gastrointestinal disease. In this study, we suggest a general strategy of applying gold nanoparticles (AuNPs) in colorimetric biosensors to detect Campylobacter in chicken carcass. Polymerase chain reaction (PCR) was utilized for the amplification of the target genes, and the thiolated PCR products were collected. Following the blending of colloid AuNPs with PCR products, the thiol bound to the surface of AuNPs, forming AuNP-PCR products. The PCR products had a sufficient negative charge, which enabled AuNPs to maintain a dispersed formation under electrostatic repulsion. This platform presented a color change as AuNPs aggregate. It did not need additional time and optimization of pH for PCR amplicons to adhere to the AuNPs. The specificity of AuNPs of modified primer pairs for mapA from Campylobacter jejuni and ceuE from Campylobacter coli was activated perfectly (C. jejuni, p-value: 0.0085; C. coli, p-value: 0.0239) when compared to Salmonella Enteritidis and Escherichia coli as non-Campylobacter species. Likewise, C. jejuni was successfully detected from artificially contaminated chicken carcass samples. According to the sensitivity test, at least 15 ng/μL of Campylobacter PCR products or 1×103 CFU/mL of cells in the broth was needed for the detection using the optical method.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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