본 연구의 목적은 가축의 조직에서 유래한 동물세포를 재생산하기 위하여 세포를 동결하는 방법으로 초자화 동결법을 간단하게 이용하는 조건을 확립하고자 하였다. 소난관상피세포를 초자화 동결법에 적용하기 위하여 소 난관상피세포를 0.25ml 스트로에 밀봉하여 액체질소에 직접 노출하였다. 발정 3.5일자의 난관에서 추출된 소 난관상피세포는 polyampholyte가 주성분인 StemCell KeepTM을 구매하여 초자화 동결을 유도하였고 5, 10, 25, 50, 75 및 100% 농도에서 생존율을 조사하였다. 세포의 생존성은 트립판 블루염색기법과 SYTO-13/PI 핵 염색시약을 이용하여 차별적 생사염색기법을 이용하여 분석하였다. Trypan blue 염색법에서는 각각 5.6±11.8, 12.5±7.2, 53.0±2.7, 85.1±6.9, 79.8±0.6 및 60.7±6.7%의 생존율이 관찰되었고, SYTO-13/PI 염색시약에서는 각각 4.6±2.5, 30.8±12.1, 58.4±2.5, 85.5±1.2, 79.8±0.6 및 71.2±1.2%의 생존율이 관찰되었다. 이러한 결과는 소 난관상피세포는 50% StemCell KeepTM 농도의 동결배양액을 이용하여 동결 보존하는 것이 가장 우수한 생존율을 얻을 수 있었고 세포 유전자원 은행을 위한 영구보존에 적절할 것으로 판단된다.
The objective of this study was to produce calves derived from in vitro fertilization of in vitro matured follicular oocytes. Oocytes aspirated from small antral folicles of ovaries obtained at a local slaughter house were matured and fertilized in vitro. At l8hrs after insemination with Korean native cattle semen, oocytes were co-cultured for 6~7 days by utilizing co-culture system with bovine oviduct epithelial cell. After co-culture, good or excellent quality late morulae or early blastocysts were selected by morphological criteria under stereo microscope. Selected embryos were transferred to recipients on day 6 or 7 (estrus = day 0). Recipients were monitored by observation for estrus and rectal palpation after 60 days from embryo transfer. One of them went to term with the birth of a calf. This case is the first production of calf derived from in vitro fertilization in Korea.
This study was carried out to investigate the effect of co-culture system(bovine oviduct epithelial cells; BOEC) and defined culture system(modified TALP ; mTALP) on the development of IVM-IVF embryos, and survival of in vitro produced blastocysts after freezing and thawing. Occytes from the slaugheterhous ovaries were matured and fertilized using general protocol. The results obtained were as the following: 1. Survival rates of frozen-thawed blastocysts using 10% glycerol as cryoprotectant was higher in day 7 blastocysts than in Day 8 and 9 blastocysts from co-cultrue system, but survival rate of frozen-thawed blastocysts was higher in Day 10 blastocysts than in day 8 and 9 blastocysts from defined culture system. Regardless of their age, survival rate of frozen-thawed blastocysts was significantly higher (p<0.05) in co-culture system than in defined culture system. 2. The cell number of blastocysts was significanlty higher (p<0.05) in Day 7 blasotcysts than in Day 8 and 9 blastocysts from co-cultures, but the cell number of blsstocysts was significantly higher (p<0.05) in Day 10 blastocysts than in Day 8 and 9 blastocysts from defined culture system. Regardless of the culture system, blastocysts with higher cell number showed higher survival rates after freezing and thawing.
This study was conducted to improve the in vitro maturation(JVM), in vitro fertilization (IVF) and in vitro developmental capacity of oocytes derived from slaughtered Korean native cattle. The recoverd oocytes, obtained from a local slaughter house, were used completely surrounded by at least 3 layers of cumulus cells in combination with a homogeneous cytoplasmic pigmentation. In vitro maturation was induced in TCM-199 or Ham's F-10 supplemented with LH(1O $\mu$g/rnl), FSH(35 $\mu$g/ml), estradiol-17$\beta$(1 $\mu$g/ml) at 39$^{\circ}C$ under 5% $CO_2$ in air for 24 hours. Sperm from caudal epididyrnis and previously matured cumulus-oocytes complexes were cultured for 24 hours in 100 $\mu$l droplets of fertilization media under paraffin oil. The zygotes were cultured with media(TCM-199 with bovine oviductal epithelial cells or CRlaa) for 7 to 10 days. The cleavage rate of IVM-IVF oocytes was significantly (P<0.05) higher following maturation using Ham's F-10 (59.9%) than TCM-199 (51.6%). Development to the blastocysts among cleaved embryos was not signficantly different between maturation media: Ham's F-10 (16.0%) and TCM-199(11.9%). However, the hatching rate was affected significantly (P<0.05) on rnaturation media as 62.9% in Ham's F-10, compared with 41.2% in TCM-199. The cleavage rate of IVM-IVF oocytes was significantly (P<0.05) higher following IVF using m-TALP medium (80.1%) than BO medium (51.6%). The percentage of in vitro developed blastocysts among cleaved embryos was not signficantly different between fertimization media: BO (11.7%) and m-TALP (17.6%). The cleavage and the developmental rate to the blastocysts after IVF in m-TALP or condition medium(CM) with or without oviduct epithelial cell monolayer(OECM) was similar(80.1% and 17.6% in m-TALP, 83.8% and 19.4% in M-TALP with OECM. 82.9% and 18.9% in CM, 87.6% and 16.0% in CM with OECM, respectively). The percentage of in vitro developed blastocysts among cleaved embryos was significantly (P<0.05) higher in TCM-199 medium co-cul tured with bovine oviduatal epithelial cell monolayers(35.2%) than CRlaa medium(1.9%). These results stggest that the most transferable IVF embryos could be produced from Ham's F-10, m-TALP and TCM-199 medium with bovine oviductal epithelial cell monolayers for IVM, IVF and IVC, respectively.
K. S. Chung;Yoon, B. S;S. J. Song;Park, Y. J.;S. B. Hong;Lee, H. T.
한국가축번식학회지
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제26권4호
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pp.329-338
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2002
This study was carried out to investigate the developmental rates of embryo reconstructed with different cell type and to estimate correlation of transcriptional level of octamer-binding transcription factor 4 (Oct4) and fibroblast growth factor 4 (FCF4) gene on peri-implantation stage embryos. Donor cells were transferred into perivitelline space of enucleated oocytes. The karyoplast-cytoplast couplets were accom- plished by cell to cell fusion and activated with ionomycin and 6-dimethylaminopurine. Reconstructed embryos were co-cultured with bovine oviduct epithelial cells in CR 1 aa medium. There is no difference in blastocyst formation rate following nuclear transfer UT) with fetal fibroblast cell (16/50; 32.0%), cumulus cell (16/49; 32.6%) and ear cell (17/52; 32.6%). The expression level of Oct4 and FCF4 in peri-implantation bovine embryo derived from in vitro fertilization (IVF) and NT were determined by reverse-transcription polymerase chain reaction (RT-PCR) technique. In peri-implantation of IVF result in a transient increased of FCF4 paralleled by an increased expression of Oct4. However, Oct4 gene was highly expressed in hatching blastocysts derived from NT compared to IVF. Also, FGF4 expression level in hatching blastocysts and outgrowth stage derived from NT was lower than that of IVF. In conclusion, it is suggested that the different transcription patterns observed in nuclear transfer embryos may lead to a lower rate of embryo development, implantation and pregnancy.
This study was conducted to examine the condition of activation of the nuclear transplant bovine embryos. In vitro fertilized(IVF) and nuclear transplant embryos(NTs) were co-cultured with bovine oviduct epithelial tissue(BOET). NTs were treated with cycloheximide(CHXM) for 0 to 6 h after electrofusion to investigate the activation conditin of recipient ooplast. Then, the infljence of the CHXM treatment timing on the cleavage and development of NTs were investigated in relation to the nuclear transplant time. The cleavage rates of NTs were increased with the increasing time of the CHXM treatment from 0 to 6 h (54.7 to 91.3%, P<0.01). Similar trend was shown in the development into the morula or blastocyst stage, but very limitted. Activation of enucleated oocytes prior to fusion enhanced development of NTs compared with that post fustion. This result suggests that the frequency of activation of NTs can be greatly enhanced by treating with CHXM for 6 h. The result also suggests that if blastomeres of unknown cell cycle stage are used, activation of enucleated oocytes prior to fusion enhances development of NTs.
The objectives of the present study were improvements in the efficiency of developmental rates to morula and blastocyst stages to produce a large number of genetically identical nuclear transplanted embryos. The oocytes collected from slaughterhouse ovaries were matured 24h in TCM199+10% FBS and exposed to $39^{\circ}C$ or room temperature to allow cytoplasmic maturation and gain activation competence. Donor embryos were treated for 12h with $10{\mu}g/ml$ nocodazole or $0.05{\mu}g/ml$ demicolcine to synchronize the cell cycle stage at 26h after the onset of culture. The blastomeres and recipient oocytes were fused by electrofusion. The cloned embryos were then cultured in various conditions to allow further development. In the treatment of oocyte activation and cell cycle regulation of donor nuclei, the room temperature exposure and nocodazole treatment group had significant effect on the developmental rates to morula/blastocyst(21.7% vs 12.1~16.7%), but had no significant effect on the fusion rates between donor blastomeres and recipient oocytes. The developmental rates of bovine nuclear transplanted embryos appeared to be higher significantly in mTALP medium under 5% $O_2$ condition and in TCM199 with bovine oviduct epithelial cell under 20% $O_2$ condition(22.2%) than other groups. In embryo transfer of nuclear transplanted embryos, there were no significant differences in calving rates between the use of excellent and good grade donor embryos.
본 연구는 소 난관 상피 세포를 채취 체외 배양을 실시하고, 이에 착상과 관련이 있은 IL-4를 첨가하여 배양액내의 임신에 관련된 호르몬들(P4, E2, TGF-$\beta$)의 변화를 관찰함으로써, 소 난관 상피 세포와 착상과의 관계를 구명하고자 실시하였으며, 그에 따른 결과는 다음과 같다. 소 난관 상피 세포의 체외 배양시 IL-4 첨가에 의한 배양액내의 P4의 생산은 0.001 ng/ml의 IL-4를 첨가한 배양액의 P4의 농도는 배양 시간이 경과할수록 증가하는 경향을 보였으며, 24시간보다 120시간에서는 약 2배의 생산을 보여 유의적인 차이를 나타냈다(P<0.05). 0.01 ng/ml의 경우에도 0.001의 경우와 유사한 경향을 보였으나, 0.001 ng/ml의 경우보다는 다소 생산량이 낮았다. 0.1이나 1 ng/ml의 경우는 배양 시간에 따른 생산량은 다른 두 가지의 농도와 같이 배양시간 96시간까지는 증가하였으나, 배양 시간 120시간에서는 감소하였다. 소 난관 상피 세포의 체외 배양시 IL-4 첨가에 의한 배양액내의 E2의 생산은 0.001, 0.01 ng/ml 첨가시는 P4의 경우와 같이 배양 시간 72시간까지 배양 시간에 따라 생산량이 증가하여 유의적인 차이를 나타내었으며(P<0.05), 0.1 및 1 ng/ml의 경우는 배양 시간 96시간까지 증가하는 경향을 보였다. 그러나 배양 시간 120 시간에는 IL-4의 첨가 농도에 관계없이 배양 시간 24시간째의 생산량과 유사한 경향을 나타냈다. 소 난관 상피 세포의 체외 배양시 IL-4 첨가에 의한 배양액 내 TGF-$\beta$의 생산은 IL-4의 첨가 농도 및 배양 시간에 대하여 차이를 나타내지 않았으며, 유의성도 나타나지 않았다. 배양 초기에 비하여 배양시간 120시간에는 약간 생산이 낮아지는 것으로 나타나 IL-4에 의한 TGF-$\beta$의 생산은 배양 시간 96이후에는 활성이 저하하는 것으로 나타났다. 이상의 결과로 소 난관 상피 세포의 체외 배양시 IL-4 첨가는 P4 및 E2의 생산에 영향을 미치는 것으로 나타났으며, TGF-$\beta$의 생산에는 영향을 미치지 않는 것으로 나타나, IL-4는 소의 임신의 성립에 중요한 역할을 하며, 난관 상피 세포 이외의 자성 생식 기도 내에 있어서 IL-4와 관련된 기전에 대하여 더 많은 연구가 요구된다.
To overcome the difficulties of collecting and culture of primary cell from genital tract on embryonic development, the present study was carried out to investigate the critical effect of cell lines, such as BRL and Vero cell and its conditioned medium on the development of early Korean native cattle embryos in vitro. Oocytes collected from slaughterhouse ovaries were matured in TCM199 containing FSH, estradiol-$17{\beta}$ and FBS with granulosa cell monolayer for 24 hours and then fertilized in vitro using frozen-thawed, heparin-treated spermatozoa in TALP for 30 hours. And then early embryos (1-2cell) were cultured in TCM199 containing 10% FBS with BOEC, Granulosa, BRL, Vera cell monolayers and conditioned medium for 2~3 days. Development to morulae and blastocysts were recorded, also examined the number of blastomeres presented a valuable parameter for the evaluation of embryonic development. The early cleavage rates of in vitro fertilized embryos co-cultured, there was no differences between primary cell and cell lines(p<0.05). The rate of development to the later stage, coculture of BRL cell was significantly higher than that of the primary cell(p<0.05). The rates of development to morula and blastocyst were significantly higher in vero cell than BRL, Granulosa, Oviduct epithelial cell conditioned medium. In the result of effect of serum on development of early bovine embryos, the use of media containing serum were significantly higher than the use of not containing one on development of early and later stage of embryos. The result of number of blastomeres in blastocysts, there is no differences between primary cell and cell lines. The blastocysts from coculture were higher than from conditioned medium in blastomere cells. In summary, these experments have proved that the culture system in TCM199 with BRL, Vero cell monolayers is effective on in vitro development of early bovine embryos, In addition, it is effective to development of bovine embryos that containing serum in conditioned medium, or in co-culture rather than in conditioned medium alone. The use of cell lines opponent to primary cells is effective in bovine embryo culture.
This study was conducted to investigate the developmental ability of caprine embryos after somatic cell interspecies nuclear transfer. Donor cells were obtained from an ear-skin biopsy of a caprine, digested with 0.25% trypsin-EDTA in PBS, and primary fibroblast cultures were established in TCM-199 with 10% FBS. After maturation, expanded cumulus cells were removed by vigorous pipetting in the presence of 0.3% hyaluronidase. The matured oocytes were dipped in D-PBS plus 10% FBS+7.5 $\mu\textrm{g}$/ml cytochalasin B and 0.05 M sucrose. The reconstructed oocytes were electrically fused with donor cells in 0.3 M mannitol fusion medium. After the electofusion, embryos were activated by electric stimulation. Interspecies nuclear transfer embryos with bovine cytoplasts were cultured in TCM-199 medium supplemented with 10% FBS including bovine oviduct epithelial cells for 7∼9 day. On the other hand, the NT embryos with porcine cytoplasts were cultured in NCSU-23 medium supplemented with 10% FBS for 6∼8 day at $39^{\circ}C, 5% CO_2$ in air. In caprine-bovine NT embryos, the cleavage(2-cell) rate was 36.8% in confluence and 43.8% in serum starvation. The developmental rate of morula- and blastocyst-stage embryos was 0.0% in confluence and 18.8% in serum starvation. In caprine-porcine NT embryos, the cleavage(2-cell) rate was 76.7% in confluence and 66.7% in serum starvation. The developmental rate of morula and blastocyst stage embryos was 3.3% in confluence and 3.0% in serum starvation, and no significant difference was observed in synchronization treatment between donor cells. In caprine-bovine NT embryos, the cleavage(2-cell) rate of cultured donor cells was 30.8% and 17.6% in 5∼9 and 10∼14 passage(P<0.05). The developmental rate of morula and blastocyst stage embryos were significantly higher(P<0.05) in 5∼9 passage(23.1%) than in 10∼14 passage(0.0%) of cultured donor cells. In caprine-porcine NT embryos, the cleavage rate was significantly higher(P<0.05) in 5∼9 passage(86.7%) than in 10∼14 passage(50.0%) of cultured donor cells. The developmental rate of morula and blastocyst stage embryos were 3.3 and 0.0% in 5∼9 and 10∼14와 passage of cultured donor cells. In caprine-bovine NT embryos, the developmental rate of morula and blastocyst stage embryos were 22.6% in interspecies nuclear transfer, 33.9% in in vitro fertilization and 28.1% in parthenotes, which was no significant differed. The developmental rate of morula and blastocyst stage embryos with caprine-porcine NT embryos were lower(P<0.05) in interspecies nuclear transfer(5.1%) than in vitro fertiltzation(26.9%) and parthenotes(37.4%).
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[게시일 2004년 10월 1일]
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