본 논문에서는 희소 방선균, Pseudonocardia autotrophica(KCTC 9441) 유래 신규 Cytochrome P450 hydroxylase(CYP) 유전자들을 분리하여 염기서열 특성을 규명하였으며, 기존에 밝혀진 다른 방선균 유래 CYP 유전자들과의 연관성을 알아보았다. 이를 위하여 P. autotrophica의 cosmid DNA library를 제작하였고, 방선균에서 발견되는 CYP 유전자군의 보존된 서열로부터 제작된 degenerate primers를 이용한 PCR을 수행하여, P. autotrophica cosmid DNA library를 검색하였다. P. autotrophica cosmid DNA library검색 결과, P. autotrophica에는 염기서열이 서로 다른 4종의 신규 CYP유전자가 존재함이 확인되었으며 (CYP601-1, 601-2, 602, 605), 이들 신규 CYP유전자들은 방선균 유래 2차대사산물의 생합성에 관여하는 CYP유전자와 높은 유사성을 나타냈다. 특히, pESK601에서 확인된 CYP 유전자 및 주변 유전자의 염기서 열을 검색한 결과, polyene 계열의 항진균제, amphotericin과 nystatin의 생합성 유전자들과 매우 높은 유사성을 보임으로써, P. autotrophica에는 신규polyene계열의 항진균제 화합물의 생합성 유전자 군이 존재함도 규명되었다.
In an effort to understand the function of the eryBVII gene in the erythromycin biosynthetic gene cluster, we overexpressed the eryBVII gene in E. coli and TDP-6-deoxy-L-threo-D-glycero-4-hexulose was used as a substrate of the overexpressed EryBVII enzyme. The enzymatic reaction product was chemically modified by reduction and peracetylation. Structural analysis of the derivatized enzymatic products by GC-Mass Spectrophotometry indicated that TDP-6-deoxy-L-threo-D-glycero-4-hexulose could be converted into its epimer by EryBVII enzyme. Based on this result, TDP-6-deoxy-L-threo-D-glycero-4-hexulose was indeed the substrate of EryBVII enzyme and the function of the eryBVII gene was confirmed.
한국식물학회 1987년도 식물생명공학 심포지움 논문집 Proceedings of Symposia on Plant Biotechnology
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pp.323-347
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1987
The R locus of maize in one of several genes that regulate the anthocyanin pigments throughout the body of the plant and seed. The R gene product may regulate pigment deposition by controlling the expression of the flavonoid biosynthetic gene pathway in a tissue-specific manner. To understand the basis for tissue specific regulation and allelic variation at R, the molecular study has been done by cloning a portion of the R complex by transposon tagging with Ac. R specific probe were cloned from the R-nj mutant induced by Ac insertion mutagenesis. From southern analysis of R-r complex using the R-nj probe, the structure of R-r was proposed that R-r containes the three elements, (P)(Q)(S). These elements may organize as the inversion triplication model which (S) sequence was inverted in relation to (P) and (Q). The R-sc derivated from R-mb or R-nj was cloned with R-nj probe, and molecular genetical data showed that R-sc containes tissue specific and tissue nonspecific area, and the sequencing of R-sc are progressed now.
Rhizobium radiobacter T6102 was morphologically purified by the aniline blue agar plates to give two distinct colonies; white smooth mucoid colony (T6102W) and blue rough colony (T6102B). The coenzyme $Q_{10}$ ($CoQ_{10}$) was produced just by T6102W, showing 2.0 mg/g of $CoQ_{10}$ content, whereas the T6102B did not produce the $CoQ_{10}$. All of the used $CoQ_{10}$ biosynthetic precursors enhanced the $CoQ_{10}$ production by T6102W. Specifically, the supplementation of 0.75 mM isopentenyl alcohol improved the $CoQ_{10}$ concentration (19.9 mg/l) and content (2.4 mg/g) by 42% and 40%, respectively.
Atratoxin $B_1$ which was found to inhibit the growth of Candida albicans caused structural and morphological alteration of the cells. Increased accumulation of vesicles and membranous bodies in the cytoplasm, and alterations of the cell membrane and cell wall were most obvious. Sequential lytic events of the cells eventually resulted in complete disintegration of the cytoplasmic structures. These results suggested that atratoxin $B_1$ functioned by either blocking the biosynthetic step during cell wall synthesis, altering cell wall metabolism or dissolution of the cell organelles. These changes caused a progressive destruction of the cell wall leading to cell lysis.
The enzymatic characteristics of Alcaligenes latus were investigated by measuring the variations of various enzyme activities related to biosynthesis and degradation of poly-${\beta}$-hydroxybutyrate (PHB) during cultivation. All PHB biosynthetic enzymes, ${\beta}$-ketothiolase, acetoacetyl-CoA reductase, and PHB synthase, were activated gradually at the PHB accumulation stage, and the PHB synthase showed the highest value among three enzymes. This indicates that the rate of PHB biosynthesis is mainly controlled by either ${\beta}$-ketothiolase or acetoacetyl-CoA reductase rather than PHB synthase. The enzymatic activities related to the degradation of PHB were also measured, and the degradation of PHB was controlled by the activity of PHB depolymerase. The effect of supplements of metabolic regulators, citrate and tyrosine, was also investigated, and the activity of glucose-6-phosphate dehydrogenase was increased by metabolic regulators, especially by tyrosine. The activities of ${\beta}$-ketothiolase and acetoacetyl-CoA reductase were also activated by citrate and tyrosine, while the activity of PHB depolymerase was depressed. The increased rate and yield of PHB biosynthesis by metabolic regulators may be due to the increment of acetyl-CoA concentration either by the repression of the TCA cycle by citrate through product inhibition or by the activation of sucrose metabolism by the supplemented tyrosine.
dTDP-rhamnose is synthesized from dTTP and glucose-1-phosphate by four enzymatic steps in the gram-negative bacteria. By using a homologous PCR product, a gene cluster encoding four genes (rfbA, rfbB, rfbC, rfbD) involved in L-rhamnose biosynthesis by Acinetobacter calcoaceticus was isolated and sequenced. The four genes were clustered on the biosynthetic operon in the order of rfbB, D, A, C. A gene, rfbA, encoding glucose-l-phosphate thymidylyltransferase (RfbA), was cloned from A. calcoaceticus pathogenic and encapsulated in the gram-negative bacterium. This enzyme catalyzes the formation of dTDP-D-glucose From $\alpha$-D-glucose-1-phosphate and dTTP.RfbA was amplified by PCR and inserted into the $T_7$ expression system. The activity of RfbA was determined by the capillary electrophoresis. The $K_m$ values for dTTP and $\alpha$-D-glucose-1-phosphate were calculated to be 1.27 mM and 0.80 mM, respectively by using the Line-Weaver Burk plot. RfbA is inactivated by diethylpyrocarbonate.
Polyketides are an extensive class of secondary metabolites with diverse molecular structures and biological activities. A plasmid-based minimal polyketide synthase (PKS) expression cassette was constructed using a subset of actinorhodin (act) biosynthetic genes (actI-orfl, actI-orf2, actI-orf3, actIII, actⅦ, and actIV) from Streptomyces coelicolor, which specify the construction of an orange-fluorescent anthraquinone product aloesaponarin II, a type II polyketide compound derived from one acetyl coenzyme A and 7 malonyl coenzyme A extender units. This system was designed as an indicator pathway in S. parvulus to generate a hybrid type II polyketide compound via gene-specific replacement. The act ${\beta}-ketoacyl$ synthase unit (actI-orfl and actI-orf2) in the expression cassette was specifically replaced with oxytetracycline ${\beta}-ketoacyl$ synthase otcY-orfl and otcY-orf2). This plasmid-based hybrid PKS cassette generated a novel orange-fluorescent compound structurally different from aloesaponarin II in both S. lividans and S. parvulus. In addition, several additional distinctive blue-fluorescent compounds were detected, when this hybrid PKS cassette was expressed in S. coelicolor B78 (actI-orf2 mutant), implying that the expression of plasmid-based hybrid PKS cassette in Streptomyces species should be an efficient way of generating hybrid type II polyketide compounds.
Ha, Young Jun;Lee, Tae Hyun;Subedi, Lalita;Kim, Hye Ryeong;Moon, Gyuri;Kim, Sun Yeou;Kim, Chung Sub
Natural Product Sciences
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제28권1호
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pp.1-5
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2022
Two 2H-1-benzopyran derivatives, methyl 8-hydroxy-2,2-dimethyl-2H-1-benzopyran-5-carboxylate (1) and methyl 8-hydroxy-2,2-dimethyl-2H-1-benzopyran-6-carboxylate (2), including a new compound (1) were isolated from the twigs of Chaenomeles sinensis. Their chemical structures were characterized based on analysis of NMR data including 1H and 13C, COSY, HSQC, and HMBC and HRMS data. The isolated compounds (1 and 2) were assessed for their anti-neuroinflammatory activity by measuring inhibition levels of nitric oxide (NO) production in lipopolysaccharide (LPS)-activated BV-2 cells and for their neurotrophic activity by the secretion of nerve growth factor (NGF) in C6 cells. Compounds 1 and 2 exhibited powerful anti-neuroinflammatory effects with IC50 values of 17.14 and 19.30 μM, respectively, without cell toxicity, and also showed moderate effects on the stimulation of NGF secretion levels with 113.15 ± 3.54 and 130.20 ± 8.03%, respectively. The biosynthetic pathway of 1 and 2 was proposed that they would be derived from a protocatechuic acid and an isoprenyl unit.
In this study, we demonstrate the use of a PCR-based method for the detection of the specific genes involved in natural-product biosynthesis. This method was applied, using specifically designed PCR primers, to the amplification of a gene segment encoding for sedo-heptulose 7-phosphate cyclase, which appears to be involved in the biosynthetic pathways of $C_7N$ aminoacyclitol or its keto analogue-containing metabolites, in a variety of actinomycetes species. The sequences of DNA fragments (about 540 bp) obtained from three out of 39 actinomycete strains exhibited a high degree of homology with the sedo-heptulose 7-phosphate cyclase gene, which has been implicated in acarbose biosynthesis. The selective cultivation conditions of this experiment induced the expression of these loci, indicating that the range of $C_7N$ aminoacyclitol or its keto analogue-group natural products might be far greater than was previously imagined. Considering that a total of approximately 20 $C_7N$ aminoacyclitol metabolites, or its keto analogue-containing metabolites, have been described to date, it appears likely that some of the unknown loci described herein might constitute new classes of $C_7N$ aminoacyclitol, or of its keto analogue-containing metabolites. As these metabolites, some of which contain valienamine, are among the most potent antidiabetic agents thus far discovered, the molecular detection of specific metabolite-producing actinomycetes may prove a crucial step in current attempts to expand the scope and diversity of natural-product discovery.
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