Baculovirus 발현 시스템은 박테리아 발현 시스템, 특히 복잡한 번역 후 변형을 필요로 하는 것과 비교하여 다량의 재조합 단백질을 생성하는 빠르고 비용 효율적인 방법을 포함하는 많은 알려진 장점을 갖는다. 특히 재조합 baculovirus는 광범위한 포유류 세포 유형에서 벡터를 전달하고 재조합 단백질을 발현 할 수 있다. 본 연구에서는 pcDNA3.1로부터 재구성된 baculovirus 벡터를 사용하였는데 이 벡터는 cytomegalovirus (CMV) 프로모터, uroplakin II promoter, polyhedron promoter, 수포 구내염 바이러스 G (VSVG), 녹색 형광 단백질 (EGFP), 단백질 전달 도메인 (PTD) 유전자 등 다양한 유전자들로 재조합 되어 개발되었다. 이러한 재구성 된 벡터를 다양한 세포 및 세포주에 감염시켰다. 이렇게 개발된 baculovirus 벡터는 재조합된 유전자들의 전이성 및 발현성을 기존의 일반적인 벡터와 비교하여 분석하였다. 본 연구결과로 이렇게 개발된 baculovirus 벡터는 기존의 대조군 벡터보다 전이성 및 발현성면에서 더 높은 효율을 갖는다는 것을 확인하였다.
Objective: To generate recombinant Bacillus subtilis (B. subtilis) engineered for expression of porcine ${\beta}-defensin-2$ (pBD-2) and cecropin P1 (CP1) fusion antimicrobial peptide and investigate their anti-bacterial activity in vitro and their growth-promoting and disease resisting activity in vivo. Methods: The pBD-2 and CP1 fused gene was synthesized using the main codons of B. subtilis and inserted into plasmid pMK4 vector to construct their expression vector. The fusion peptide-expressing B. subtilis was constructed by transformation with the vector. The expressed fusion peptide was detected with Western blot. The antimicrobial activity of the expressed fusion peptide and the recovered pBD-2 and CP1 by enterokinase digestion in vitro was analyzed by the bacterial growth-inhibitory activity assay. To analyze the engineered B. subtilis on growth promotion and disease resistance, the weaned piglets were fed with basic diet supplemented with the recombinant B. subtilis. Then the piglets were challenged by enteropathogenic Escherichia coli (E. coli). The weight gain and diarrhea incidence of piglets were measured after challenge. Results: The recombinant B. subtilis engineered for expression of pBD-2/CP1 fusion peptide was successfully constructed using the main codons of the B. subtilis. Both expressed pBD-2/CP1 fusion peptide and their individual peptides recovered from parental fusion peptide by enterokinase digestion possessed the antimicrobial activities to a variety of the bacteria, including gram-negative bacteria (E. coli, Salmonella typhimurium, and Haemophilus parasuis) and grampositive bacteria (Staphylococcus aureus). Supplementing the engineered B. subtilis to the pig feed could significantly promote the piglet growth and reduced diarrhea incidence of the piglets. Conclusion: The generated B. subtilis strain can efficiently express pBD-2/CP1 fusion antimicrobial peptide, the recovered pBD-2 and CP1 peptides possess potent antimicrobial activities to a variety of bacterial species in vitro. Supplementation of the engineered B. subtilis in pig feed obviously promote piglet growth and resistance to the colibacillosis.
Mergulhao;Filipe J.M.;Gabriel A. Monteiro;Joaquim M.S. Cabral;M. Angela Taipa
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제14권1호
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pp.1-14
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2004
More than twenty years have passed since the approval of the first recombinant DNA product for therapeutic use (recombinant human insulin, 1982). However, the biotechnology industry is still facing a shortage of manufacturing capacity due to the increasing demand of therapeutic proteins. This demand has prompted the search for a growing number of biological production systems but, nevertheless, the Gram-negative bacterium Escherichia coli remains one of the most attractive production hosts. This review highlights the most important features and developments of plasmid vector design, emphasizing the different reported strategies for improving the expression and secretion of heterologous proteins using the cellular machinery of E. coli.
느타리버섯은 가장 중요한 식용버섯 중 하나이다. 느타리버섯은 Pseudomonas tolaasii에 의한 세균성 갈변병에 매우 감수성이므로, 저항성 품종을 만들기 위한 노력의 하나로 누에에서 분리된 항 세균성 단백질인 누에신을 느타리버섯에서 과발현시키고자 하였다. 누에신 cDNA는 여름 느타리버섯의 ${\beta}$-tubulin 프로모터에 결합되어 pTRura3-2 vector와 함께 우라실 영양요구성 돌연변이 균주에 형질전환되었다. 누에신 cDNA가 형질전환된 느타리버섯을 genomic PCR과 Southern blot을 통하여 분리할 수가 있었으며, 이들 중 3개의 형질전환체가 누에신 유전자를 발현시킴을 확인하였다. 그러나 이들 형질전환체들에서 누에신 단백질을 검출할 수 없었으며, 또한 항 세균 효과도 확인할 수 없었다. 이들 결과는 형질전환기술을 이용한 병 저항성 개발 가능성을 보여주고 있다.
Expression of human Cu.Zn-superoxide dismutase (SOD) with activity comparable to human erythrocyte enzyme was achieved in E. coli B21(DE3) by using the pET-17b expression vector containing a T7 promoter. Recombinant human SOD was found in the cytosol of disrupted bacterial cells and represented > 25% of the total bacterial proteins. The protein produced by the E. coli cells was purified using a combination of ammonium sulfate precipitation, Sephacryl S-100 gel filtration and DEAE-Sephacel ion exchange chromatography. The recombinant Cu,Zn-SOD and human erythrocyte enzyme were compared using dismutation activity, SDS-PAGE and immunoblotting analysis. The mass of the subunits was determined to be 15,809 by using a electrospray mass spectrometer. The copper specific chelator. diethyldithiocarbamate (DOC) reacted with the recombinant Cu,Zn-SOD. At $50{\mu}M$ and $100{\mu}M$ concentrations of DOC, the dismutation activity was not inhibited for one hour but gradually reduced after one hour. This result suggests that the reaction of DOC with the enzyme occurred in two distinct phases (phase I and phase II). During phase I of this reaction, one DOC reacted with the copper center, with retention of the dismutation activity while the second DOC displaced the copper, with a loss of activity in phase II.
항생물질 내성유전자를 유전자 조작기법으로 재조합시켜 만든 세균에서 그 유전자들이 전이되는 특성을 하폐수의 자연환경에서 연구하기 위하여, 자연계로부터 분리한 Gram 음성세균 중에서 kanamycin (Km), chloramphenicol (Cm), streptomycin (Sm), sulfadiazine(Su)에 내성을 띄는 균주로 DK1을 선발하였다. DK1 균주는 4개의 plasmid를 가지고 있으나 그 중 크기가 약 68kb인 pDK101 plasmid에 Km$^{${\gamma}$}$ Cm$^{${\gamma}$}$ 유전자를 가지고 있었다. 이 pDK101 plasmid에는 EcoRI site가 16개, PstI site가 32개, SalI site가 6개씩 있었다. pDK101 plasmid 와 vector로 사용한 pKT230을 E. coli으로 처리하여 얻은 절편들로부터 Km$^{${\gamma}$}$Cm$^{${\gamma}$}$ 유전자를 가지는 pDT309와 pDTS29 등의 chimeric piasmid를 제조하였다. 이들을 다시 E. coli C600과 E. coli HB101 에 형질전환 시킴으로써, DKC601, DKC602, DKH 102 그리고 DKH103 등의 재조합 균주를 얻었다. 이들 재조합 균주에서는 모두 Km$^{${\gamma}$}$Cm$^{${\gamma}$}$유전자가 잘 발현되었으며, 그 중 DKC601과 DKH103에서는 각각 pDT529와 pDT309의 chimeric plasmid가 포함되어 있는 것이 전기영동 방법으로 명확히 확인되었다.
Papaya ringspot virus (PRSV) causes the most widespread and devastating disease in papaya. Isolates of PRSV originating from different geographical regions in south India were collected and maintained on natural host papaya. The entire coat protein (CP) gene of Papaya ringspot virus-P biotype (PRSV-P) was amplified by RTPCR. The amplicon was inserted into pGEM-T vector, sequenced and sub cloned into a bacterial expression vector pRSET-A using a directional cloning strategy. The PRSV coat protein was over-expressed as a fusion protein in Escherichia coli. SDS-PAGE gel revealed that CP expressed as a ~40 kDa protein. The recombinant coat protein (rCP) fused with 6x His-tag was purified from E.coli using Ni-NTA resin. The antigenicity of the fusion protein was determined by western blot analysis using antibodies raised against purified PRSV. The purified rCP was used as an antigen to produce high titer PRSV specific polyclonal antiserum. The resulting antiserum was used to develop an immunocapture reverse transcription-polymerase chain reaction (IC-RT-PCR) assay and compared its sensitivity levels with ELISA based assays for detection of PRSV isolates. IC-RT-PCR was shown to be the most sensitive test followed by dot-blot immunobinding assay (DBIA) and plate trapped ELISA.
Arabidopsis AHL gene encodes a 3'(2')-phosphoadenosine 5'-phosphate (PAP)-specific phosphatase that plays a role in the sulfate activation pathway. We complemented E. coli cysQ mutant defective in cysteine biosynthesis with the AHL gene. AHL cDNA was cloned into the prokaryotic expression vector pKK388-1 and transformed into the bacterial mutant. Since cysQ mutant is a leaky cysteine auxotroph only under aerobic conditions, the bacteria were grown in liquid media with vigorous shaking to provide more aeration. In cysteine-free medium, cysQ mutant and the mutant harboring empty vector did not grow well, whereas cells harboring AHL cDNA exhibited significantly improved growth with doubling time of approximately 3 h. cysQ is known to encode a 3'(2'),5'-diphosphonucleoside 3'(2')-phosphohydrolase (DPNPase). However, our data suggest that cysQ protein has PAP-specific phosphatase activity in addition to DPNPase activity. Microbial complementation procedure described in this paper is useful for structure-activity studies of PAP-specific phosphatases identified from microbes and plants.
Kim Hwa Young;Sohn Jung Hoon;Kim Chul Ho;Rao K. Jagannadha;Choi Eui Sung;Kim Myung Kuk;Rhee Sang Ki
Biotechnology and Bioprocess Engineering:BBE
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제5권1호
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pp.1-6
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2000
For the rapid selection of higher recombinant hirudin producing strain in a methylotrophic yeast Hansenula polymorpha, a multiple gene integration and dose-dependent selection vector, based on a telomere-associated ARS and a bacterial aminoglycoside 3-phosphotransferase (aph) gene, was adopted. Two hirudin expression cassettes (HV1 and HV2) were constructed using the MOX promoter of H. polymorpha and the mating factor $\alpha$ secretion signal of S. cerevisiae. Multiple integrants of a transforming vector containing hirudin expression cassettes were easily selected by using an antibiotic, G418. Hirudin expression level and integrated plasmid copy number of the tested transformants increased with increasing the concentration of G418 used for selection. The expression level of HV1 was consistently higher than that of HV2 under the similar conditions, suggesting that the gene context might be quite important for the high-level gene expression in H. polymorpha. The highest hirudin producing strain selected in this study produced over 96 mg/L of biologically active hirudin in a 500-mL flask and 165 mg/L in a 5-L fermentor.
한국환경독성학회 1996년도 제19회정기학술대회(The 19th Symposium of the Korean Society of Environmental Toxicology)
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pp.64-64
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1996
Transgenic animal and cell line models which are recently developed in toxicology field combined with molecular biological technique, are powerful tools for studying of mutation in vivo and in vitro, respectively. The Big Blue mutagenesis assay system is one of the most widely used transgenic systems. Especially, for the study of direct acting mutagens, Big Blue cell line is very useful and powerful to evaluate mutagenicity because the mutation frequency and mutationspectrlun showed no distinct differences between cell line and animal. The Big Blue cell lines carry stably integrated copies of lambda shuttle vector containing lac I gene as a mutational target. These lambda shuttle vectors are useful for various mutagenesis related studies in eukaryotic system due to their ability to be exposed mutagen and then transfer a suitable target DNA sequence to it convenient organism for analysis. We tried to assess the mutagenic effect of 4-NQO with Big Blue cell line. After the treatment of 4-NQO, genomic DNA was isolated and lambda shuttle vector was packaged by in Vitro packaging and then these were plated on bacterial host in the presence of X-gal to screen mutation in the lac I. We determined MF as a ratio of blue plaques versus colorless plaques and now undergoing the mutation spectrum of 4-NQO in lac J gene sequence.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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