A novel antifungal antibiotic for azole-resistant Candida albicans was purified from the culture broth of Bacillus subtilis LAM 97-44 by butanol extraction, Diaion HP-20 and Dowex-50 adsorption chromatography, silica gel flash chromatography followed by HPLC and designated LAM-44A. LAM-44A was stable for 60 min at $100^{\circ}C$, and pH range from 2 to 10. MIC values were observed at $0.5-3.5\;{\mu}g/ml$ against various Candida albicans strains. The antibiotic showed no cytotoxicity for S180, MKN-45, P388, HeLa and 373 at the concentration of 1 mg/ml. LAM-f4A was colorless powder soluble in water, methanol, ethanol, butanol and negative to ninhydrin reaction. The antibiotic had maximum absorption at 273 nm in methanol, and melting point was $202^{\circ}C$. The molecular weight and formula were determined to be 282 and $C_{14}H_{34}O_5$ by $^1H-NMR,\;^{13}C-NMR$, IR spectrum and elemental analysis.
In this study, we investigated the biological activity of antioxidant and antibacterial activity of citrus by-product ferment. Hot water extracts and 80% methanol extracts from citrus byproduct of ferment were screened for antibacterial activity pathogenic bacteria by paper disc method. Among the various hot water extracts and 80% methanol extracts the Bacillus subtilis showed relatively strong antibacterial activities in the order. The reducing activity on the 1,1-diphenyl-2-picrylhydrazyl(DPPH) radical and ${\cdot}OH$ radical scavenging potential were sequentially screened, in search for antioxidant activities of citrus by-product ferment.
Keratinase is widely used in certain industrial applications. The present study sought to improve the culture conditions of Bacillus subtilis SMMJ-2 to facilitate mass production of keratinase. Strain SMMJ-2 was irradiated by ultraviolet light and the resulting isolates were tested for keratinase activity. Isolates displaying elevated keratinase activity were selected and used to determine the optimum temperature (24, 30, 37, 45, $55^{\circ}C$) for bacterial keratinase production during a 4 day incubation period. The highest enzyme activity (55 units/mL/min), from a Bacillus subtilis SMMJ-2 mutant (mutant No. 2) was demonstrated following incubation at $30^{\circ}C$. The effects of carbon and nitrogen sources on keratinase production were confirmed by measuring the enzyme activity from the culture broth of the mutant strain cultured in various media containing different carbon source and nitrogen sources during a 4 day period. The optimal medium composition for producing keratinase consisted of 1% glucose, 0.7% $K_2HPO_4$, 0.2% $K_2HPO_4$, and 1.2% soybean meal. Optimal initial pH and temperature for producing keratinase were 7.0 and $30^{\circ}C$, respectively. Keratinases produced by B. subtilis SMMJ-2 and the mutant No. 2 were purified from the culture broth which used soybean meal as a nitrogen source. Membrane ultrafiltration, DEAE-sephacel ion exchange and Sephadex G-100 gel chromatography were used to purify the enzymes. The purified keratinases from both B. subtilis SMMJ-2 and the mutant No. 2 showed single bands and their molecular weights were estimated as 28 kDa and 42 kDa, respectively on SDS-polyacrylamide gel electrophoresis.
Journal of the Korea Academia-Industrial cooperation Society
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v.17
no.7
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pp.442-450
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2016
This study aims to determine the antimicrobial activity of fermented Cheonggukjang extract using the new Strain, Bacillus amyloliquefaciens NBF11-1, which was first found on the surface of the node part of bamboo stems, but has been studied very little so far. Bacillus subtilis NG24, which is the traditional fermented strain of Cheonggukjang, was selected as the control group and a comparative analysis was performed. The experimental method included measurements of the antimicrobial activity, minimum inhibitory concentration (MIC) and heat and pH stability. B. amyloliquefaciens NBF11-1 had stronger antimicrobial activity than B. subtilis NG24 against the gram-positive bacteria, C. perfringens and S. aureus and the gram-negative bacteria, A. faecalis and E. coli among the six species of pathogenic bacteria studied. When the minimum inhibitory concentration was measured, B. amyloliquefaciens NBF11-1 in C. perfringens, S. aureus, A. faecalis, and E. coli had an inhibitory effect at concentrations of 0.01 %, 0.21 %, 0.45 % and 0.29 %, respectively, compared to B. subtilis NG24. When the heat and pH stability was measured, B. subtilis NG24 and B. amyloliquefaciens NBF11-1 Cheonggukjang extract did not show any decrease in activity when held at a temperature of $121^{\circ}C$ for 15 minutes and at pH values ranging from 2 to 10 and were therefore considered to be relatively stable against heat and pH changes.
Lee Young-Hoon;Lee Sung-Ho;Park Ki-Hoon;Choi Young-Ju;Jeong Yong-Kee;Gal Sang-Wan
Journal of Life Science
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v.16
no.2
s.75
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pp.274-281
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2006
A fibrinolytic enzyme gene was isolated from Bacillus subtilis BB-1 by PCR method. Primers for PCR cloning were designed according to pre-identified gene for fibrinolytic enzymes from B. subtilis. The primer sequences were 5'-CGG ATC CGT GAG AGG CAA AAA GGT G-3' and 5'-TGA ATT CTT AAT GTG CTG CTG CTT GTC C-3' as concensus sequences of the fibrinolytic genes of Bacillus species. The PCR product was 1,145 bp and the sequence homology was 99% with nattokinase gene isolated from Japanese natto. The cloned fibrinolytic gene was reconstructed in Bacillus-E. coli shuttle vector, pEB for bulk-production. The fibrinolytic enzyme was purified by FPLC from the cloned B. subtilis 168. The optimum pH and temperature of the enzyme were 7.0 and $35^{\circ}C$, respectively. The fibrinolytic enzyme did not show any activity toward to skim milk, gelatin, casein and blood agar plate. The enzyme specific polyclonal antibody was prepared in rabbit for further assays such as detection of the gene expression in plant cells. This means that the enzyme may be used for health-care such as thrombosis without any hamful effects in the blood vessel.
Abdelmoteleb, Ali;Troncoso-Rojas, Rosalba;Gonzalez-Soto, Tania;Gonzalez-Mendoza, Daniel
Mycobiology
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v.45
no.4
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pp.385-391
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2017
The ability of Bacillus subtilis, strain ALICA to produce three mycolytic enzymes (chitinase, ${\beta}$-1,3-glucanase, and protease), was carried out by the chemical standard methods. Bacillus subtilis ALICA was screened based on their antifungal activity in dual plate assay and cell-free culture filtrate (25%) against five different phytopathogenic fungi Alternaria alternata, Macrophomina sp., Colletotrichum gloeosporioides, Botrytis cinerea, and Sclerotium rolfesii. The B. subtilis ALICA detected positive for chitinase, ${\beta}$-1,3-glucanase and protease enzymes. Fungal growth inhibition by both strain ALICA and its cell-free culture filtrate ranged from 51.36% to 86.3% and 38.43% to 68.6%, respectively. Moreover, hyphal morphological changes like damage, broken, swelling, distortions abnormal morphology were observed. Genes expression of protease, ${\beta}$-1,3-glucanase, and lipopeptides (subtilosin and subtilisin) were confirmed their presence in the supernatant of strain ALICA. Our findings indicated that strain ALICA provided a broad spectrum of antifungal activities against various phytopathogenic fungi and may be a potential effective alternative to chemical fungicides.
- To investigate the possibility of genetic development for a multi-purpose strain of Bacillus subtilis YBL-7 against Fusat-iurn solani causing root rot of many impotant corps, the plasmid pGU66 inserting urease gene of Bacillus pasteurii had been introduced into Bacillus subtilis YBL-7 by PEG-induced protoplast (PIP) transformation system. Protoplasts of B. subtilis YBL-7 were prepared by treating the cells with lysozyme (200 $\mu g$/ml) in hypertonic buffer (SMMP). The highest transformation frequency was achieved when cells of the strain with lysozyme at $42^{\circ}C$ for 90 minutes. Optimal transformation was obtained using polyethylene glycol (MW 4000) at final concentration of 30% (V/V). The transformation frequency was increased proportionally to 1.2 $\mu g$ of plasmid DNA. At best condition, the transformation frequency (transformants/ regenerants/$\mu g$ of DNA) for pGU66 was appoximately $4 \times 10^{-3}$. Also, the urease gene was strongly expressed in the transformants of B. subtilis YBL-7 and maintained steadily. The antifungal ability of transformant was very similar to that of B. ssubtilis YBL-7.
Protease production and its characteristics were investigated with Bacillus subtilis PCA20-3 which was isolated from Korean traditional meju. The optimum culture conditions of Bacillus subtilis PCA20-3 for the production of the protease were as follow: 0.2% soytone, 2% starch, 0.1% $(NH_4)_2SO_4,\;0.2%\;CaCl_2,\;0.01%\;yeast\;extract,\;0.1%\; K_2HPO_4,\;0.1%\;KH_2PO_4,\;pH\;7.0,\;30^{\circ}C$ and 20 hrs. The optimum pH and temperature for enzyme activity of protease producing Bacillus subtilis PCA20-3 were pH 8.0-10.0 and $55^{\circ}C$, respectively. The enzyme was relatively stable at pH $6.0{\sim}11.0$ and at temperature below $50^{\circ}C$. The activity of the enzyme was inhibited by $Fe^(2+)\;and\;Cu^(2+)$. 2 mM phenymethanesulfonyl fluoride inhibited 89.2% of enzyme activity. This indicates that the enzyme is serine protease. The $K_m$ value was $5\;{\times}\;10^{-4}\;M,\;V_{max}\;value\;was\;100\;{\mu}g/min$. This enzyme hydrolyzed casein more rapidly than bovine serum albumin.
Park, Kee-Choon;Lim, Jong-Hui;Kim, Sang-Dal;Yi, Young-Keun
Journal of Applied Biological Chemistry
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v.52
no.3
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pp.121-125
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2009
We measured the influence of antifungal antagonists Bacillus subtilis AH18 and Bacillus licheniformis K11 on soil microbial community in microcosms. Both antifungal antagonists were confirmed to suppress hot pepper phytophthora blight. Phospholipid fatty acids (PLFA) were analyzed to investigate the soil microbial community. B. subtilis AH18 changed the total PLFA composition and bio-indicators of PLFA, compared with other treatments. B. subtilis AH18 decreased the proportion of bacteria and gram negative/gram positive bacteria, and increased the fungi/bacteria and anaerobic/aerobic microorganisms. In addition cy19:0/18:$1{\omega}7c$, which means adaptation to unfavorable environmental conditions, was increased by the application of B. subtilis AH18. On the other hand the inoculation of B. licheniformis K11 or combined inoculation of both antifungal strains did not affect soil microbial community. The suppression of phytophthora blight and preservation of indigenous soil microbial community may be achieved by the combined application of B. subtilis AH18 and B. licheniformis K11.
An alkaline fibrinolytic protease-producing bacteria was isolated front Korean traditional soy sauce and identified as Bacillus subtilis K7 from the results of analyses of its morphological and physiological properties, $API^{\circledR}$, and Biolog system. The enzyme was purified by 75% ammonium sulfate fractionation, QAE-Sephadex anion and SP-Sephadex cation exchange column chromatography and Sephadex G-100 gel filtration. The specific activity of the purified enByme was 233.9 unit/mg protein and the yield of enzyme was 3.8%. The homogeneity of the purified enzyme was confirmed by polyacrylamide gel electrophoresis. Molecular mass of the enzyme was estimated about 21,500 Da by SDS-polyacrylamide get electrophoresis and gel chromatography. The optimum temperature and pH for the enzyme activity were $40^{\circ}C$ and 9.0, respectively. The enzyme was stable in a pH range of 5.0 to 12.0, and 60% of its activity was lost on heat treatment at $50^{\circ}C$ for 20 min. The activity of the purified enzyme was inhibited by the presence of $Fe^{2+},\;Ag^{2+},\;Cu6{2+}$, iodoacetate, ethylene diamine tetraacetic acid (EDTA), and trans-1,2-diaminocycloheane-N,N,N',N'-tetraacetic acid (CDTA). The results indicates that the enzyme requires a metal ion for its enzymatic activity.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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