The isolate HL-15 of Bacillus thuringiensis had common biochemical characteristics of the 23 serovarieties of B. thuringiensis. The isolates formed round endotoxin crystals which killed insect larvae, showed independent serological H antigen to the 23 serotypes, and contained two defferect DNA elements with over 100 Mdaltons of molecular weights.
Kim, Hye Soo;Kim, Chul Hwan;Kwon, Hyun Sook;Cho, Soo Jeong
Journal of Mushroom
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v.14
no.1
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pp.21-26
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2016
The mannanase-producing bacteria, designated YJ17, was isolated from spent mushroom (Flammulina velutipes) substrates. The isolate YJ17 was a facultative anaerobic and was grown at temperatures ranging from $20^{\circ}C$ to $50^{\circ}C$ with an optimal temperature of $40^{\circ}C$. The DNA G+C content of the YJ17 was 44 mol%. The major fatty acids were anteiso-15:0 (38.9%), 17:0 (7.6%), and iso-15:0 (36.5%). The 16S rRNA gene sequence similarity between the isolate YJ17 and other Bacillus strains was from 98% to 99%. In the phylogenetic analysis based on these sequences, the isolate YJ17 and Bacillus amyloliquefaciens clustered within a group together and separated from other species of Bacillus. Based on the physiological and molecular properties, the isolate YJ17 was classified within the genus Bacillus as B. amyloliquefaciens YJ17. The optimal pH and temperature for mannanase activity of B. amyloliquefaciens YJ17 were pH 7.0 and $50^{\circ}C$, respectively.
A microorganism producing carboxymethyl-cellulase (CMCase) was isolated from 300 soil and compost samples. The isolate was identified as Bacillus sp. by $Biolog^{TM}$ test and fatty acid analysis, and named as Bacillus sp. KD1014. The isolate could degrade, in addition to CMC, various kinds of polysaccharides such as levan, xylan, starch, and filter paper but hardly degrade microcrystalline Avicel. The optimum growth and CMCase production of the isolate was observed between 16-and 25 hr-culture at 45$^{\circ}C$ and pH 5.0. The maximum CMCase activity was observed at pH 4.5 and 6$0^{\circ}C$. The CMCase was found to bind to Avicel. The CMCase was internally cleaved as growth continued. When crude supernatant was used for activity staining, three major bands were detected on a native gel, however, only one major band was detected on a denaturating gel after removal of the detergent.
A new rod-shaped endospore-forming bacterium isolated from the hindgut flora of the termite, Reticulitermes speratus kyushuenesis Morimoto is described. The isolate stained Gram positive, but the KOH test and the test for L-alanine aminopeptidase were negative. The length of a single cell varies from 2.5-9.0 $\mu $m, and the cell is about 0.5-0.7$\mu $m thick. The isolate had a high cellulolytic ability and was identified as Bacillus amyloliquefaciens.
In order to isolate thermophilic bacteria with high activity of CMCase and xylanase, spent mushroom substrates was collected from an oyster mushroom cultivation farm in Jinju, Gyeongnam, Korea. Among the isolates, one strain designated as YJ09 was selected by agar diffusion method. The isolate YJ09 was identified as a member of Bacillus licheniformis based on biochemical characteristics using Bacillus ID kit and MicroLog system. Comparative 16S rDNA sequence analysis showed that isolate YJ09 formed a distinct phylogenetic tree within the genus Bacillus and was most closely related to Bacillus licheniformis with sequence similarity of 98.9%. Based on its physiological properties, biochemical characteristics and phylogenetic distinctiveness, the isolate YJ09 was classified as Bacillus licheniformis. The CMCase and xylanase activity of B. licheniformis YJ09 was slightly increased corresponding to the bacterial population from exponential phase to stationary phase in the growth curve of B. licheniformis YJ09.
The mannanase-producing bacteria, designated CS47, was isolated from the fresh feces of three horses (from a farm in Jinju National University). The isolate CS47 was facultatively anaerobic and grew at temperatures ranging from $20^{\circ}C$ to $50^{\circ}C$ with an optimal temperature of $38^{\circ}C$. The DNA G+C content of the isolate CS47 was 44 mlo%. The major fatty acids were anteiso-15:0 (39.6%), 17:0 (7.6%), and iso-15:0 (37.8%). The 16S rRNA gene sequence similarity between the isolate CS47 and other Bacillus strains varied from 93% to 98%. In the phylogenetic analysis based on these sequences, the isolate CS47 and Bacillus amyloliquefaciens clustered within a group and separated from other species of Bacillus. Based on the physiological and molecular properties, the isolate CS47 was classified within the genus Bacillus as Bacillus amyloliquefaciens CS47. The optimal pH and temperature for mannanase activity of B. amyloliquefaciens CS47 were pH 6.0 and $50^{\circ}C$, respectively. The thermal stability of mannanase from B. amyloliquefaciens CS47 is valuable when using this enzyme in industrial application.
This study was conducted to estimate the cultural characteristics, the production of antibiotic, and the selection of optimal media for mass culture of Bacillus licheniformis N1 isolate which was previously reported as an antagonistic bacterium to Botrytis cinerea. We investigated initial pH, temperatures and shaking speed for good cultural conditions and antibiotics production by N1 isolate. According to the results, the optimal conditions of initial pH, temperatures, and shaking speed were determined to be pH 5.0~5.5, 30~35$^{\circ}C$ and 250 rpm, respectively. Also, the optimal conditions for the antagonism by N1 isolate highly appeared in the initial pH as 5.0, and the mycelial growth inhibition was high when the substances used such as glucose or corn starch as carbon sources, and biji(soybean curd residue) flour as a nitrogen source. Furthermore, inhibitory area was significantly expanded, when 3% or 5% of corn starch was added into 5% of Biji flour as nitrogen source, were respectivley selected for mass culture of N1 isolate. Among them, 5% Biji flour medium showed higher cell density more than 10 times that in NB medium after 48 hour incubation. Therefore, the optimal medium was determined as 5% biji flour added 3~5% of corn starch for high density of cells.
A continuous enrichment culture procedure was used to isolate bacteria from various soil sources capable of suppressing large patch disease of turfgrass. Six isolates consistently suppressed large patch in turfgrass, and ranged in the spectrum of extracellular enzymes that they expressed. The best disease- suppressing isolate, TBM912, expressed protease, CMCase, and pectinase activity and inhibited the growth of Rhizectonin solani and Betrytis cinerea in vitro. Here we show that this strain also produces an antibiotic that was identified by TLC, SDS-PACE and HPLC analysis as lipopeptide.
Antifungal bacterium against Colletotrichum coccodes causing black dot disease of potatoes and anthracnose of tomatoes was isolated from sewage sludge. The isolate showed a 99% sequence homology of partial 16S rRNA of Bacillus methylotrophicus CBMB205 and Bacillus amyloliquefaciens subsp. plantarum FZB42. The isolate was identified as Bacillus sp. SW29-2, using the neighbor-joining phylogenetic tree, BlastN sequence analysis, and morphological and cultural characteristics. Bacillus sp. SW29-2 is an aerobic, Gram-positive, endospore-forming bacterium, of which the morphological and physiological characteristics were the same as those of type strain B. lichniformis CBMB205, except for the cell growth of over 4% NaCl. The cell growth of the temperature and the initial pH of the medium was shown at $18-47^{\circ}C$ (opt. ca. $38^{\circ}C$) and 3-9 (opt. ca. 6.0), respectively. The inhibition size (diameter) of Bacillus sp. SW29-2 against four strains of C. coccodes ranged from 23 to 29 mm. Also, the isolate showed antifungal activity against penicillium rot-causing Penicillium expansum in apples. Thus far, any report on the antifungal activity of Baciilus spp. against C. coccodes has not been found. These results suggest that the Bacillus sp. SW29-2 isolate could be used as a possible biocontrol agent against C. coccodes, and further applied to other plant pathogenic fungi.
The characteristics of parasporal inclusion body from Bacillus thuringiensis subsp. kurstaki KB099 isolate which is high bioactive to the tobacco cutworm, Spodoptera litura, were examined. Parasporal inclusion of B. thuringiensis subsp. kurstaki KB099 isolate showed only 1 band at 130 kDa compared with B. thuringiensis subsp. kurstaki HD-l isolate producing 2 protein bands at 130 kDa and 60 kDa from by SDS-PAGE analysis without any enzyme treatment. Also, we confirmed that gut extract of sensitive S. litura KB099 isolate had digested only 60 kDa ${\delta}$-endotoxin protein. When the digestive enzyme of sensitive insect responsible for parasporal inclusion from KB099 and HD-l isolate was treated to each of them, protein band 60 KDa of KB099 was maintained up to 12 hours but all bands of HD-l were disappeared within 6 hours. In KB099 isolate, 6 genes (Cry1Aa, Cry1Ab, Cry1Ac, Cry1C, Cry1D and Cry1I) were identified by PCR analysis. Also, $Cry^-$ mutant of KB099 isolate was investigated by phase- contrast microscope, SDS-PAGE and PCR.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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