Bang, Minji;Kim, Do Gyeong;Gonzales, Edson Luck;Kwon, Kyoung Ja;Shin, Chan Young
Biomolecules & Therapeutics
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제27권6호
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pp.530-539
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2019
Brain aging is an inevitable process characterized by structural and functional changes and is a major risk factor for neurodegenerative diseases. Most brain aging studies are focused on neurons and less on astrocytes which are the most abundant cells in the brain known to be in charge of various functions including the maintenance of brain physical formation, ion homeostasis, and secretion of various extracellular matrix proteins. Altered mitochondrial dynamics, defective mitophagy or mitochondrial damages are causative factors of mitochondrial dysfunction, which is linked to age-related disorders. Etoposide is an anti-cancer reagent which can induce DNA stress and cellular senescence of cancer cell lines. In this study, we investigated whether etoposide induces senescence and functional alterations in cultured rat astrocytes. Senescence-associated ${\beta}$-galactosidase (SA-${\beta}$-gal) activity was used as a cellular senescence marker. The results indicated that etoposide-treated astrocytes showed cellular senescence phenotypes including increased SA-${\beta}$-gal-positive cells number, increased nuclear size and increased senescence-associated secretory phenotypes (SASP) such as IL-6. We also observed a decreased expression of cell cycle markers, including PhosphoHistone H3/Histone H3 and CDK2, and dysregulation of cellular functions based on wound-healing, neuronal protection, and phagocytosis assays. Finally, mitochondrial dysfunction was noted through the determination of mitochondrial membrane potential using tetramethylrhodamine methyl ester (TMRM) and the measurement of mitochondrial oxygen consumption rate (OCR). These data suggest that etoposide can induce cellular senescence and mitochondrial dysfunction in astrocytes which may have implications in brain aging and neurodegenerative conditions.
Background: Korean Red Ginseng extract (KRGE) has been used as a health supplement and herbal medicine. Astrocytes are one of the key cells in the central nervous system (CNS) and have bioenergetic potential as they stimulate mitochondrial biogenesis. They play a critical role in connecting the brain vasculature and nerves in the CNS. Methods: Brain samples from KRGE-administered mice were tested using immunohistochemistry. Treatment of human brain astrocytes with KRGE was subjected to assays such as proliferation, cytotoxicity, Mitotracker, ATP production, and O2 consumption rate as well as western blotting to demonstrate the expression of proteins related to mitochondria functions. The expression of hypoxia-inducible factor-1α (HIF-1α) was diminished utilizing siRNA transfection. Results: Brain samples from KRGE-administered mice harbored an increased number of GFAP-expressing astrocytes. KRGE triggered the proliferation of astrocytes in vitro. Enhanced mitochondrial biogenesis induced by KRGE was detected using Mitotracker staining, ATP production, and O2 consumption rate assays. The expression of proteins related to mitochondrial electron transport was increased in KRGE-treated astrocytes. These effects were blocked by HIF-1α knockdown. The factors secreted from KRGE-treated astrocytes were determined, revealing the expression of various cytokines and growth factors, especially those related to angiogenesis and neurogenesis. KRGE-treated astrocyte conditioned media enhanced the differentiation of adult neural stem cells into mature neurons, increasing the migration of endothelial cells, and these effects were reduced in the background of HIF-1α knockdown. Conclusion: Our findings suggest that KRGE exhibits prophylactic potential by stimulating astrocyte mitochondrial biogenesis through HIF-1α, resulting in improved neurovascular function.
Kim, Mi Jung;Hur, Jinyoung;Ham, In-Hye;Yang, Hye Jin;Kim, Younghoon;Park, Seungjoon;Cho, Young-Wuk
The Korean Journal of Physiology and Pharmacology
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제17권4호
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pp.275-281
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2013
Astrocytes are reported to have critical functions in ischemic brain injury including protective effects against ischemia-induced neuronal dysfunction. Na-K ATPase maintains ionic gradients in astrocytes and is suggested as an indicator of ischemic injury in glial cells. Here, we examined the role of the Na-K ATPase in the pathologic process of ischemic injury of primary cultured astrocytes. Chemical ischemia was induced by sodium azide and glucose deprivation. Lactate dehydrogenase assays showed that the cytotoxic effect of chemical ischemia on astrocytes began to appear at 2 h of ischemia. The expression of Na-K ATPase ${\alpha}1$ subunit protein was increased at 2 h of chemical ischemia and was decreased at 6 h of ischemia, whereas the expression of ${\alpha}1$ subunit mRNA was not changed by chemical ischemia. Na-K ATPase activity was time-dependently decreased at 1, 3, and 6 h of chemical ischemia, whereas the enzyme activity was temporarily recovered to the control value at 2 h of chemical ischemia. Cytotoxicity at 2 h of chemical ischemia was significantly blocked by reoxygenation for 24 h following ischemia. Reoxygenation following chemical ischemia for 1 h significantly increased the activity of the Na-K ATPase, while reoxygenation following ischemia for 2 h slightly decreased the enzyme activity. These results suggest that the critical time for ischemia-induced cytotoxicity of astrocytes might be 2 h after the initiation of ischemic insult and that the increase in the expression and activity of the Na-K ATPase might play a protective role during ischemic injury of astrocytes.
It has been shown that the accumulation of prion in the cytoplasm can result in neurodegenerative disorders. Synthetic prion peptide 106-126 (PrP) is a glycoprotein that is expressed predominantly by neurons and other cells, including glial cells. Prion-induced chronic neurodegeneration has a substantial inflammatory component, and an increase in the levels of matrix metalloproteinases (MMPs) may play an important role in neurodegenerative development and progression. However, the expression of MMPs in PrP induced rat astrocytes and microglia has not yet been compared. Thus, in this study, we examined the fluorescence intensity of CD11b positive microglia and Glial Fibrillary Acidic Protein (GFAP) positive astrocytes and found that the fluorescent intensity was increased following incubation with PrP at 24 hours in a dose-dependent manner. We also observed an increase in interleukin-1 beta (IL-$1{\beta}$) and tumor necrosis factor alpha (TNF-${\alpha}$) protein expression, which are initial inflammatory cytokines, in both PrP induced astrocytes and microglia. Furthermore, an increase MMP-1, 3 and 11 expressions in PrP induced astrocytes and microglia was observed by real time PCR. Our results demonstrated PrP induced activation of astrocytes and microglia respectively, which resulted in an increase in inflammatory cytokines and MMPs expression. These results provide the insight into the different sensitivities of glial cells to PrP.
Taurine (2-aminoethanesulfonic acid), one of bioactive amino acid in the mammalian brain, is known to exert inhibitory effects on neurons via GABA receptor. In the present study, we examined effects of taurine on glutamateinduced neurotoxicity on hippocampal neuron cell culture using cell counting method and lactate dehydrogenase (LDH) assay. After 10 d of culture, cells were stimulated with appropriate drugs. Only 43% of cultured neuronal cells survived at one day after stimulation with 500 uM L-glutamate for 10 min. Survival rate was enhanced by 82% in the presence of 10 mM taurine. LDH activity from the culture supernatant incubated with a combination of L-glutamate and taurine was less than half of that with L-glutamate alone. In the next series of experiments, interleukin-6 (IL-6) mRNA expression in cultured astrocytes was investigated using reverse tanscription-PCR (RT-PCR). IL-6 mRNA was detected in the astrocytes stimulated with L-glutamate in a dose-dependent manner, while not detected in the unstimulated control astrocytes. The expression of IL-6 mRNA caused by 10 mM glutamate was inhibited by taurine, but not by GABA. These findings demonstrated a neuroprotective action of taurine against glutamate-induced toxicity.
Park, Hyunju;Ahn, Keun Jae;Kang, Jihee Lee;Choi, Youn-Hee
BMB Reports
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제48권3호
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pp.184-189
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2015
Src homology 2-containing protein tyrosine phosphatase 2 (SHP-2) is known to protect neurons from neurodegeneration during ischemia/reperfusion injury. We recently reported that ROS-mediated oxidative stress promotes phosphorylation of endogenous SHP-2 in astrocytes and complex formation between caveolin-1 and SHP-2 in response to oxidative stress. To examine the region of SHP-2 participating in complex formation with caveolin-1, we generated three deletion mutant constructs and six point mutation constructs of SHP-2. Compared with wild-type SHP-2, binding of the N-SH2 domain deletion mutant of SHP-2 to p-caveolin-1 was reduced greatly, using flow cytometric competitive binding assays and surface plasmon resonance (SPR). Moreover, deletion of the N-SH2 domain of SHP-2 affected $H_2O_2$-mediated ERK phosphorylation and Src phosphorylation at Tyr 419 in primary astrocytes, suggesting that N-SH2 domain of SHP-2 is responsible for the binding of caveolin-1 and contributes to the regulation of Src phosphorylation and activation following ROS-induced oxidative stress in brain astrocytes.
Oxidative stress activates several intracellular signaling cascades that may have deleterious effects on neuronal cell survival. Thus, controlling oxidative stress has been suggested as an important strategy for prevention and/or treatment of neurodegenerative diseases. In this study, we found that ginsenoside Rh1 inhibited hydrogen peroxide-induced reactive oxygen species generation and subsequent cell death in rat primary astrocytes. Rh1 increased the expression of phase II antioxidant enzymes, such as heme oxygenase-1 (HO-1), NAD(P)H:quinone oxidoreductase 1, superoxide dismutase-2, and catalase, that are under the control of Nrf2/ARE signaling pathways. Further mechanistic studies showed that Rh1 increased the nuclear translocation and DNA binding of Nrf2 and c-Jun to the antioxidant response element (ARE), and increased the ARE-mediated transcription activities in rat primary astrocytes. Analysis of signaling pathways revealed that MAP kinases are important in HO-1 expression, and act by modulating ARE-mediated transcriptional activity. Therefore, the upregulation of antioxidant enzymes by Rh1 may provide preventive therapeutic potential for various neurodegenerative diseases that are associated with oxidative stress.
흰쥐 대뇌겉질로부터 별아교세포를 배양하여 흥분성아미노산인 L-glutamate에 의하여 유발되는 세포종창(astrocytic swelling)에 대한 ginsenosides의 억제효과를 검토하였다. Glutamate(0.5 mM)를 세포에 가하고 1시간동안 배양하면 swelling을 일으켜, 세포내의 물의 용적([$^3$H]OMG의 uptake량으로 측정)은 대조세포에 비하여 약 2배의 증가를 나타냈다. Glutamate와 함께 ginsenosides Rb$_2$와 Rc를 가하고 배양하면 glutamate에 의한 astrocytic swelling이 용량의존적으로 감소하였다. 세포는 Rb$_2$와 Rc(0.5 mg/ml)에 24시간까지 노출시켜도 MTT reduction이 감소하지 않는 것으로 보아 이 ginsenosides에 의한 swelling의 억제효과는 세포막의 손상에 의한 것이 아님을 알 수 있었다. Rb$_2$와 Rc는 glutamate에 의한 세포내 $Ca^{2+}$농도의 상승을 억제하였다. 따라서 Rb$_2$와 Rc는Ca$^{2+}$의 유입을 억제하므로서 glutamate에 의한 astrocytic swelling을 억제하는 것으로 생각된다.
N,N-dimethyl-D-erythro-sphingosine (DMS) is an N-methyl derivative of sphingosine and an inhibitor of protein kinase C (PKC) and sphingosine kinase (SK). In the present study, we examined the effects of DMS on intracellular $Ca^{2+}$ concentration, pH, and glutamate uptake in human 1321N1 astrocytes. DMS increased intracellular $Ca^{2+}$ concentration and cytosolic pH in a concentration-dependent manner. Pretreatment of the cells with the $G_{i/o}$ protein inhibitor PTX and the PLC inhibitor U73122 had no obvious effect. However, removal of extracellular $Ca^{2+}$ with the $Ca^{2+}$ chelator EGTA or depletion of intracellular $Ca^{2+}$ stores with thapsigargin impeded the DMS-induced increase of intracellular $Ca^{2+}$ concentration. Pretreatment of cells with $NH_4Cl$ or monensin reduced the DMS-induced $Ca^{2+}$ increase. However, inhibition of the DMS-induced $Ca^{2+}$ increase with BAPTA did not influence the DMS-induced pH increase. DMS also inhibited glutamate uptake by the 1321N1 astrocytes in a concentration-dependent manner. It also increased intracellular $Ca^{2+}$ and pH in PC12 neuronal cells. Our observations on the effects of DMS on 1321N1 astrocytes and PC12 neuronal cells point to a physiological role of DMS in the brain.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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