Zygotic embryo culture was performed to propagate evergreen oak, Quercus myrsinifolia, which has recalcitrant seeds and is difficult to propagate by cuttings. Zygotic embryos appeared in WPM medium after 14 days, and after 56 days, they developed into complete plants with cotyledons and roots. The medium suitable for zygotic embryo culture was 1/4 WPM medium, showing a shoot growth of 2.43 cm and root growth of 8.7 cm after 8 weeks of culture. As a result of investigating the effect of GA3 on the growth of plants germinated from zygotic embryos through GA3 treatment, the best growth was shown in 0.5 mg/l GA3 treatment. The in vitro rooting and growth of IBA-treated zygotic embryo-derived plants were good in the 0.5 mg/l IBA treatment and rooting and shoot growth were not observed at higher concentrations. And the callus induction rate also increased as the concentration of IBA increased. Plants grown in vitro were transferred to a plastic pot containing artificial soil and acclimatized in a greenhouse for about 4 weeks, resulting in more than 90% survival. As a result of this study, the zygotic embryo culture method was confirmed to be effective for mass propagation of Q. myrsinifolia. The results of this study are expected to contribute significantly to the mass propagation of elite Q. myrsinifolia.
Eighty two soil samples were nation widely collected from nine places in Korea. Each soils were used as the inocula for the pot culture of arbuscular mycorrhizal fungi. The twenty two species of arbuscular mycorrhizal fungi were successfully cultured by using the small pots under the conditions of green house and identified under light microscopes. Out of them, the five species were first isolated and decribed in Korea; Acaulospora morrowiae, A. rugosa, A. longula, Glomus fecundisporum, Gl. deserticolar. Three species of genus Glomus were not identified and Glomus clarum reporeted by Eom and Lee (1989) was redescribed.
Different kinds of cytokinins and auxins were tested for both shoot induction and rooting in a rare species, Abeliophyllum distichum Nakai. BA in WPM medium was the most effective in shoot induction, whereas zeatin seemed to be the most suitable for shoot elongation. Kinetin, at the concentration of 2.0~5.0 mg/L showed an effect in shoot induction, but the effect was inferior to BA and zeatin. Rapid shoot elongation could be achieved when the cultures were maintained on the diffuse light condition (below 500 lux) regardless of cytokinin treatments. For in vitro rooting, IBA was investigated as the best type of auxin tested when half strength GD medium was incorporated. The frequency of rooting using the plant growth regulator and medium just mentioned above was revealed as approximately 90%. In addition, the survival rate of rooted plantlets was almost 100% in an artificial soil mixture.
Ectomycorrhizal fungi are associated with plants roots and acquire significant amounts of nitrogen sources from the soil. For artificial cultivation, mass production of ectomycorrhizal fungi in liquid media is required. We studied the edible ectomycorrhizal mushrooms Hygrophorus russula, Ramaria fumigata, Sarcodon aspratus, and Tricholoma matsutake. All strains except S. aspratus NIFoS 2031 grew generally well on modified Melin-Norkran's (MMN) medium compared to on other media. All strains analyzed in this study showed significantly higher growth on organic nitrogen. Specifically, two strains of H. russula significantly responded to both tryptone and neopeptone media. Among different species and strains, there were clear differences in the capacity to grow on animal-based organic nitrogen sources.
Effects of plant growth regulators and condition on shoot induction from internode explants of Actinidia arguta were investigated. Optimal condition for shoot induction was obtained when internode explants were cultured on MS medium containing 3.0 mg/L zeatin. The frequency showed about 62.5% under darks condition at 27$^{\circ}C$ after 6 weeks of culture. Regenerated shoots were rooted on WPM medium supplemented with 0.5 mg/L NAA and the regenerants were acclimated to an artificial soil with mixture (perlite : vermiculite = 1:1, v/v) for further growth and successfully transplanted to the soil in a highly humidified greenhouse. Histological observations revealed that meristemoids were formed from small and isodiametric cells, and then developed to shoot primordia.
Two isolates of Tricholoma matsutake T-008 and T-034, preserved in Entomopathogenic Fungal Culture Collection (EFCC) of Korea, were used in the present study. The isolates had 100% Bootstrap homology with Tricholoma matsutake U62964 and T. matsutake AB188557 and AF309538 preserved in Gene Bank of NCBI. Mycelial growth of T. matsutake was highest in TMM and MYA at $25^{\circ}C$. The highest dry wt. of mycelium was obtained after 65 days of culture, when 6 mycelial discs were inoculated in 100 ml of broth in 250 ml shaking flask. Mycelial mats were observed in clumped condition at the inoculation sites of pine forest after two weeks of inoculation. After 5 months of inoculation, mycelia mats were observed growing inside soil and walls of a few inoculation sites, while mycelial mats growth up to $5{\sim}8$ cm were observed in the roots of pine tree after 6 months. The survival rate of the inoculum was about 40% of the total inoculation sites. The survival rate was found below 20% when the mycelium was inoculated in the summer. The reasons for low survival rates of the mycelium were mainly due to dry season and the soil-borne small animals such as earthworm and mole. After one year of inoculation, no external difference was observed between the artificially inoculated mycelia and the naturally existing mycelia of T. matsutake. The present study showed that fruiting bodies of T. matsutake could be produced by artificial inoculation under the appropriate environmental conditions.
This study was undertaken to develop an efficient propagation technique for mature Betula davurica. Using aseptic materials taken from in vitro culture, the effects of media and plant growth regulators on shoot proliferation and rooting were investigated. DKW medium turned out to be the best in shoot proliferation among the media tested. Whereas axillary buds were better culture material than apical buds in proliferation of shoots, apical buds were slightly better than axillary buds on shoot elongation. Neither 1 /2 MS nor WPM medium seemed to be suitable for shoot multiplication or elongation. When the explants were cultured on 1/2 MS medium, shoot elongation was retarded by forming big callus at the base. In the case of WPM, shoots could be formed normally, but they exhibited slow growing. NAA was so effective on in vitro rooting that more than 80% rooting could be achieved on half-strength DKW medium supplemented with 1.0 mg/L NAA after 4 weeks in cultures. Ex vitro rooting using elongated shoot was also applicable to rooting and acclimatization. Rooted plantlets were successfully acclimatized in an artificial soil mixture and grew normally. The results demonstrate that efficient mass propagation of mature B. davurica can be done through tissue culture.
In order to develop an efficient micropropagation technique for an endangered species, Stellera rosea N., stem node cultures were conducted on MS medium supplemented with cytokinins. Generally, BA was better than zeatin on shoot proliferation from stem nodes, whereas zeatin showed more effective on shoot elongation. In vitro rooting of shoots was achieved by application of an auxin pre-culturing method. Overall rooting rate was relatively low and differed depending on the culture period. Pre-culturing of shoots for 15 days at 1.0mg/L IBA revealed a slightly better rooting efficiency reaching 30% rooting rate than NAA. Root induction rate by NAA also varied with concentration of NAA and culture periods. Total 51% of the rooted plantlets survived on artificial soil mixture and grew normally without any distinct morphological variation. The results suggest that the endangered Stetllera plants are propagated via in vitro culture system, but still need to more study for the improvement of rooting and acclimatization of the plantlets in soil.
BACKGROUND: Plant growth under smart greenhouse (that is plant factory system) conditions of an artificial light type is significantly depending on the artificial light sources such as a fluorescent lamps or Light-Emitting Diodes (LEDs) with specific spectral wavelengths regardless of the outside environmental changes. In this experiment, characteristics on the growth and compound synthesis of kale seedlings affected by light qualities and intensities provided by LEDs were mentioned. METHODS AND RESULTS: The kale seedlings which developed 3~4 true leaves were exposed by fluorescent lamps or LEDs lights of red (R), blue+white (BW), blue+red (BR) with 50 (L) or $100(H){\mu}mol/m^2/s^1$ photosynthetic photon flux (PPF) under hydroponic culture system of deep flow technique for 50 days. Shoot fresh weight increased under the RH, BWH, and BRH treatments with higher PPF. Shoot elongation of the seedlings decreased, and polyphenol synthesis promoted by the higher light intensity conditions. Sugar synthesis in the leaves was above 2 times greater under the RH treatment of monochromic red light quality with $100{\mu}mol/m^2/s^1\;PPF$ than $50{\mu}mol/m^2/s^1\;PPF$. CONCLUSION: The results show that the control of light quality and intensity in the smart greenhouse conditions with artificial lights significantly affects the growth and compound synthesis in the fresh kale leaves with higher culture efficiency compared to the conventional soil culture under greenhouse or field conditions. Researches on the optimum light intensities of the LEDs with special spectral wavelengths are necessary for maximum growth and metabolism in the seedlings.
Kim, Tae-Dong;Choi, Yong-Eui;Lee, Byoung-Sil;Kim, Young-Joung;Kim, Tae-Su;Kim, In-Sik
Journal of Plant Biotechnology
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v.33
no.4
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pp.243-248
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2006
A optimal procedure for plant production via repetitive secondary somatic embryogenesis in Tilia amurensis is described. Somatic embryos were induced directly from the culture of zygotic embryos on medium with 1.0 mg/l 2,4.-D. Repetitive secondary somatic embryos formed on the surface of the cotyledons and hypocotyls except for the radicles when explants of somatic embryos were cultured on medium with 4.0 mg/l 2,4-D. The highest frequency of secondary embryo-genesis was obtained in the cotyledons (90%) and hypocotyls(83.33%) on MS medium with 1.0 mg/L 2,4-D. The average number of secondary embryos per explant was 25.74 in cotyledon and 24.92 in hypocotyl. When the cotyledon and hypocotyl segments from somatic embryos at different developmental stages were cultured on MS medium with 1.0 mg/L 2,4-D, the highest frequency of secondary embryogenesis was obtained from late cotyledonary secondary embryos. Somatic embryos were transferred to MS basal medium and then they germinated within 2 to 4 weeks of culture. Germinated somatic embryos grew normally into plantlets on WPM medium, producing new shoots. The converted plantlets were acclimatized on artificial soil mixture. These results indicate that the repetitive secondary somatic embryogenesis in T amurensis can offer the possibility to use in vitro culture system for the micropropagation.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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