The inulin fructotransferse (depolymerizing) (IFTase, EC 2.4.1.93) gene of Arthrobacter sp. A-6 was cloned and expressed in Escherichia coli and Bacillus subtilis. The IFTase gene consisted of an ORF of 1.311 nucleotides encoding a polypeptide of 436 amino acids containing a signal peptide of 31 amino acids in the N-terminus. The molecular mass of the IFTase based on the nucleotide sequence was calculated to be 46.116 Da. The recombinant E. coli $DH5{\alpha}$ cells expressing the Arthrobacter sp. A-6 IFTase gene produced most of the IFTase intracelularly. In contrast, the recombinant B. subtilis DB 104 carrying the IFTas gene on a B. subtilis-E. Coli expression vector secreted the IFTase into the culture fluid efficiently.
To isolate and identify histamine degrading bacteria from Kwamegi, bacteria were screened with restriction media containing histamine. Ten strains were selected through morphological and biochemical identification procedure followed by comparison with DNA sequence of 16 rRNA gene. And also, these strains were confirmed by the histamine degrading assay such as turbidity and enzymatic assay. The results of identification are as followings : Ewingella americana B791, Arthrobacter sp. R45S, Halomonas marisflava, Psychrobacter sp. 9B-7, Bacillus sp. LMC 21002, Psychrohacter cibarius BC-220, Bacillus megaterium KL-197 were identified showing homology of $99\%,\;95\%,\;98\%,\;99\%,\;99\%,\;99\%\;and\;98\%$, respectively. Three strains remain unidentified. Arthrobacter sp. R45S, H. marisflava, Bacillus sp. LMG 21002, B. megaterium KL-197 showed histamine degrading activity, whereas, Psychrobacter sp. 9B-7 only showed weak activity. Three unidentified strains also have histamine degrading activity. In contrast, E. american B791 and p. cibarius JG-220 did not show any significant activity of histamine degradation. The strains isolated from this study showed relatively fast growth rate and histamine degrading rate as compared to those from salted mackerel.
Park, Yun-Hee;Cho, Sung-Eun;Lee, Woo-Sang;Jo, Do-Hyun
Applied Biological Chemistry
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v.35
no.4
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pp.242-247
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1992
Twenty strains of pentachlorophnol (PCP) resistant bacteria were isolated from activated sludge of the sewage treatment plant of Jung Lang Chun, Seoul. The predominant strains were Bacillus spp. including B. sphaericus and E. schlegelii. The other strains were identified as Corynebacterium spp., Staphylococcus aureus, Arthrobacter spp. and Aeromonas spp. The resistant strains could be grouped into two categories; PCP-degrading and PCP-adsorbing/absorbing ones. PCP-degrading strains degraded $75{\sim}90%$ of PCP in the medium containing 100 ppm PCP during the first 24 hours of growth. At the initial period the PCP-adsorbing/absorbing strains removed PCP from the medium but started to release PCP after 24 or 72 hours of growth. PCP degradation products from the culture broth of PCP-degrading strains were identified by comparing their $R_f$ values with those of the reference compounds. 2-chlorophenol and 2.4-dichlorophenol were presumed to be the intermediate products of PCP degradation.
Inulin fructotransferase (depolymerizing) (EC 2.4.1.93) was purified 34-fold from the culture broth of Arthrobacter sp. A-6 by using a combination of ammonium sulfate fractionation, DEAE-Sepharose CL-6B chromatography and Sephacryl S-200 gel filtration. The purified enzyme converts inulin into di-D-fructofuranose dianhydride III(DFA III) and small quantities of fructo-oligosaccharides. The temperature and pH optima of the enzyme were $70^{\circ}C$ and 6.0, respectively. Molecular weight of the enzyme was determined to be 49 kDa by 12$%$ SDS-polyacrylamide gel electrophoresis, and 145 kDa by Sephacryl S-200gel filtration. This indicates that the functional inulin fructotransferase of Arthrobacter sp. A-6 has a homomeric trimer structure. The enzyme had an isoelectric point of pH 4.6. The N-terminal amino acid sequence of the purified enzyme subunit was Ala-Asp-Asn-Pro-Asp-Gly(\ulcorner)-Ser-Asn-Met(or Glu)-Tyr-Asp-Val.
The aim of this study was to examine how plant terpenoids, as natural growth substrates or inducers, would affect the biodegradation of PCB congeners. Various PCB degraders that could grow on biphenyl and several terpenoids were tested for their PCB degradation capabilities. Degradation activities of the PCB congeners, 4,4-dichlorobiphenyl (4,4-DCBp) and 2,2-dichlorobiphenyl (2,2-DCBp), were initially monitored through a resting cell assay technique that could detect their degradation products. The PCB degraders, Pseudomonas ((S)-(-) limonene, p-cymene and $\alpha$-terpinene) whereas Arthrobacter sp. B1B could not grow on the terpenoids as a sole carbon source. The B1B strain grown on biphenyl exhibited good degradation activity for 4,4-DCBp and 2,2-DCBp, while the activity of strains P166 and T104 was about 25% that of the B1B strain, respectively. Concomitant GC analysis, however, demonstrated that strain T104, grown on (S)-(-) limonene, p-cymene and $\alpha$-terpinene, could degrade 4,4-DCBp up to 30%, equivalent to 50% of the biphenyl induction level. Moreover, strain T104 grown on (S)-(-) limonene, could also degrade 2,2-DCBp up to 30%. This indicates that terpenoids, widely distributed in nature, could be utilized as both growth and/or inducer substrate(s) for PCB biodegradation in the environment.
The textile remains have been affected largely by environmental factors including microorganisms because they were composed of organic compounds to be easy to damage. So, we selected 8 strains of the 131 isolated strains from museum environments and textile remains by high pretense activity, and identified them for measuring the antibacterial activity of Gingko biloba extracts. They were identified Genus Arthrobacter spp. 3 strains (Arthrobacter nicotiannae A12, Arthrobacter sp B12, Arthrobacter oxidans B13), Cenus Bacillus spp. 2 strains (Bacillus licheniformis D9, Bacillus cereus D33), Genus Pseudomonas spp. 2 strains (Pseudomonas putida A24, Pseufomonas fluorescene C21) and a Genus Staphylococcus sp. 1 strain (Staphylococcus pasteuri D3) as closest strains through the blast search of NCBI. Though antibacterial activity of the extracts of Gingko biloba leaves as MIC was lower than that of other pharmaceutical antibiotics. However the extracts was crude extracts, the extracts might have good antibacterial against most of the isolates from museum. Especially, the antifungal activity of Gingko biloba is known previously, the extracts of Gingko biloba leaves has possibility of usage as a good natural material for conservation of remains.
There is a possibility that carvone, a monoterpene from spearmint (Mentha spicata), could induce the bph degradative pathway and genes in Alcaligenes eutrophus H850, which is a known Gram-negative PCB degrader with a broad substrate specificity that was thoroughly investigated with Arthrobacter sp. BIB, a Gram-positive PCB degrader. The strains BIB and H850 were unable to utilize and grow on the plant terpene [(R)-(-)-carvone] (50ppm) to be recognized as a sole carbon source. Nevertheless, the carvone did induce 2,3-dihydroxybiphenyl 1,2-dioxygenase (encoded by bphC) in the strain B lB, as observed by a resting cell assay that monitors accumulation of a yellow meta ring fission product from 4,4'-dichlorobiphenyl (DCBp). The monoterpene, however, did not appear to induce the meta cleavage pathway in the strain H850. Instead, an assumption was made that the strain might be using an alternative pathway, probably the ortho-cleavage pathway. A reverse transcription (RT)-PCR system, utilizing primers designed from a conserved region of the bphC gene of Arthrobacter sp. M5, was employed to verify the occurrence of the alternative pathway. A successful amplification (182bp) of mRNA transcribed from the N-terminal region of the bphC gene was accomplished in H850 cells induced by carvone (50ppm) as well as in biphenyl-growth cells. It is, therefore, likely that H850 possesses a specific PCB degradation pathway and hence a different substrate specificity compared with B1B. This study will contribute to an elucidation of the dynamic aspects of PCB bioremediation in terms of roles played by PCB degraders and plant terpenes as natural inducer substrates that are ubiquitous and environmentally compatible.
Journal of Korean Society of Environmental Engineers
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v.35
no.7
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pp.503-508
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2013
The aim of this study was to investigate the microbial communities in animal carcass disposal soils to examine the possible threat of pathogens from leachate. DNA extraction was performed for the soils in three carcass disposal sites located in Gyeonggi-do, Korea, and then 16S rRNA pyrosequencing was conducted to identify the microbial communities. Results indicate that, according to phylum classification, Proteobacteria (100%) was identified in soil A, Actinobacteria (66.4%) > Proteobacteria (31.1%) > Bacteriodetes (2.1%) > Acidobacteria (0.3%) in soil B, and Actinobacteria (63.1%) > Proteobacteria (36.9%) in soil C. According to genus classification, Pseudomonas was dominant in soil A (98%), Arthrobacter in soil B (68%) and C (61%). There were no detections of pathogens such as Salmonella, Campylobacter and Clostridium perfringens. However, high concentration of Ralstonia pickettii causing bacteremia was observed. Although carcass disposal soils examined in this study were not highly contaminated with pathogens, further monitoring is still needed to examine the potential threat of pathogens in leachate derived from carcass disposal sites.
To isolate antagonistic bacteria against sclerotinia rot of lettuce, caused by Sclerotinia sclerotiorum, soil samples were collected from the diseased greenhouse field in Namyangju city, Gyeong-gi province from 2007 to 2008. A total of 196 bacterial isolates were isolated using serial dilution method. In dual culture assay in vitro, 26 isolates showed more than 80% of inhibition rates of mycelial growth of S. sclerotiorum. Based on 16S rDNA sequence analysis, the 26 isolates were identified as Bacillus megaterium, B. cereus, B. subtilis, Arthrobacter nicotianae, A. ramosus, Pseudomonas filiscindens, Stenotrophomonas maltophilia, Brevibacterium frigoritolerans and Sphingobacterium faecium. The 26 isolates inhibited the mycelial growth of S. sclerotiorum up to 80% and the sclerotial germination 0-100%. In the greenhouse pot test of ten isolates conducted in summer, 2 isolates B. megaterium (DK6) and B. cereus (C210) showed control efficacy on sclerotia viability of S. sclerotiorum, 20% and 35%, respectively. In the greenhouse pot test in winter, the disease incidence of the control group was 80%, whereas those of 9 isolates among 26 were approximately 20%. From the result, the 9 isolates are expected as potentially antagonistic bacteria for biological control of sclerotinia rot of lettuce caused by S. sclerotiorum.
Kang Cheol-Hee;Lee Sang-Mhan;Lee Kyoung;Lee Dong-Hun;Kim Chi-Kyung
Korean Journal of Microbiology
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v.41
no.3
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pp.195-200
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2005
Comamonas sp. strain DJ-12 is a bacterial isolate capable of degrading of 4-chlorobiphenyl (4CB) as a carbon and energy source. The degradation pathway was characterized as being conducted by consecutive reactions of the meta-degradation of 4CB, hydrolytic dechlorination of 4-chlorobenzoate (4CBA), hydroxylation of 4-hydroxybenzoate, and meta-degradation of protocatechuate to product TCA metabolites. The 6.8 kb fragment from the chromosomal DNA of Comamonas sp. strain DJ-12 included the genes encoding for the meta-degradation of PCA; the genes of protocatechuate 4,5-dioxygenase alpha and beta subunits (pmcA and pmcB), 4-carboxy-2-hydroxymuconate-6-semialdehyde dehydrogenase (pmcC), 2-pyrone-4,6-dicarboxylate hydrolase (pmcD), 4-oxalomesaconate (OMA) hydratase(pmcE), 4-oxalocitramalate (OCM) aldolase (pmcF), and transporter gene (pmcT). They were organized in the order of pmcT-pmcE-pmcF-pmcD-pmcA-pmcB-pmcC. The amino acid sequences deduced from the nucleotide sequences of pmcABCDEFT genes from Comamonas sp. strain DJ-12 exhibited 94 to $98\%$ homologies with those of Comamonas testosteroni BR6020 and Pseudomonas ochraceae NGJ1, but only 52 to $74\%$ with homologies Sphingomonas paucimobilis SYK-6, Sphingomonas sp. LB126, and Arthrobacter keyseri 12B.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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