Son, Nguyen Thai;Huong, Vu Thi Thu;Lien, Vu Thi Kim;Nga, Do Thi Quynh;Au, Tran Thi Hai;Nga, Tang Thi;Hoa, Le Nguyen Minh;Binh, Tran Quang
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.29
no.9
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pp.1460-1469
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2019
The extensive distribution of multidrug-resistant (MDR) methicillin-resistant Staphylococcus aureus (MRSA) poses a threat to healthcare worldwide. This study aimed to investigate the MDR and molecular patterns of MRSA isolates in children admitted to the two biggest tertiary care pediatric hospitals in northern and southern Vietnam. A total of 168 MRSA strains were collected to determine antibiotic susceptibility by minimum inhibitory concentration tests. Antibiotic-resistant genes, pulsed-field gel electrophoresis, staphylococcal cassette chromosome mec (SCCmec) typing, and multilocus sequence typing were used for the molecular characterization of MRSA. Among the total strains, the MDR rate (51.8%) was significantly higher in the northern hospital than in the southern hospital (73% vs. 39%, p < 0.0001). The MDR-MRSA with the highest rates were "ciprofloxacin-erythromycin-gentamicintetracyclines" (35.6%), followed by "erythromycin-tetracycline-chloramphenicol" (24.1%), and "ciprofloxacin-erythromycin-gentamicin" (19.5%), showing an accumulative total of 79.3%. The most susceptible antibiotics were rifampicin (100%) and vancomycin (100%), followed by doxycycline (94.0%), meropenem (78.0%), and cefotaxime (75.0%). The SCCmecII strains showed greater resistance to gentamicin, ciprofloxacin, tetracycline, meropenem and cephalosporins compared with the other strains. The SCCmecII strains exhibited the highest rate in the tested genes (aacA/aphD: 55.2%, ermA/B/C: 89.7%, and tetK/M: 82.8%). ST5-SCCmecII was the predominant clone in the northern hospital, whereas SCCmecIVa was more pronounced in the southern hospital. In conclusion, our results raised concerns about the predominant MDR-MRSA strains in the pediatric hospitals in Vietnam. The north-south difference in the antibiotic resistance patterns and genetic structure of MRSA suggests different MRSA origins and various uses of antimicrobial agents between the two regions.
Woo, Jang-Bin;Han, Ji Yoon;Seo, Eunsol;Seo, MinYeong;Kim, Byung-Yong
Journal of Food Hygiene and Safety
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v.37
no.5
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pp.306-309
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2022
Probiotics are live microorganisms that confer health benefits onto the host when administered at adequate doses. Most widely used probiotics, such as lactobacilli and bifidobacteria, are known to be elements of healthy gut microflora and hence are not considered a threat to the host. However, probiotics may pose a risk in certain populations with compromised immune systems or defects in gut barrier functions. Herein, we evaluated the safety of Bifidobacterium breve BB077, according to the safety evaluation guidelines for probiotics produced by the National Institute of Food and Drug Safety Evaluation (NIFDS). The results show that B. breve BB077 is both non-hemolytic and non-cytolytic. In contrast, B. breve BB077 exhibited higher streptomycin and tetracycline resistance than the suggested NIFDS standard cut-off values. Hence, a genetic analysis of the streptomycin and tetracycline resistance genes was performed to determine the origin of antimicrobial resistance. Streptomycin and tetracycline resistance was shown have arisen from chromosomal mutations and considered intrinsic to the taxonomic group. In conclusion, the B. breve BB077 strain might be safe for human consumption.
Carbapenem resistance, mediated by the major acquired metallo-β-lactamase (MBL) genes, has been increasingly reported, particularly for clinical isolates of Acinetobacter spp. Of the 191 nonduplicate clinical isolates of the carbapenem-nonsusceptible Acinetobacter spp. evaluated, 125 isolates (65.4%) were positive for the modified imipenem or meropenem-Hodge test, and 49 isolates (25.7%) were positive for the imipenem-EDTA+SMA double disk synergy test (DDS). PCR and sequencing of the blaVIM-2-allele and blaIMP-1-allele showed that 29 A. baumannii isolates and 1 A. calcoaceticus isolate had blaVIM-2, whereas 16 A. baumannii isolates and 2 A. calcoaceticus isolates had blaIMP-6; 1 isolate of the A. genomospecies 3 had blaVIM-2 and blaAIM-1. All the above MBL genes belong to class 1 integron. The size of class 1 integron encompassing blaVIM-2 or blaIMP-6 ranges from 2.8 kb to 3.2 kb in clinical isolates of A. baumannii, and 3.2 kb to 3.5 kb in clinical isolates of A. genomospecies 3. blaVIM-2 was most often located first or second in the class 1 integron, and these integrons often included aacA4. Due to dispersion of the MBL-producing Acinetobacter spp. as well as integron, which may encompass various resistance genes, there is an expectation for the increase of multidrug resistant Gram-negative bacteria, including resistance of carbapenems such as imipenem or meropenem. Hence, the development of new antimicrobial agents for treating severe Acinetobacter spp. infections is needed.
Yujin Jeong;Sunwoo Lee;Jung Sik Yoo;Dong-Hun Lee; Tatsuya Unno
Korean Journal of Environmental Agriculture
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v.42
no.4
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pp.269-278
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2023
Antibiotics either kill or inhibit the growth of bacteria. However, antibiotic-resistant bacteria are difficult to treat with antibiotics. Infections caused by such bacteria often lead to severe diseases. Antibiotic resistance genes (ARG) can be horizontally transmitted across different bacterial species, necessitating a comprehensive understanding of how ARGs spread across various environments. In this study, we analyzed the plasmid sequences of 33 extended-spectrum beta-lactamases (ESBL) producing Escherichia coli isolated from pigs, farms, and their owners. We conducted an antibiotic susceptibility test (AST) with aztreonam and seven other antibiotics, as well as whole genome sequencing (WGS) of the strains using MinION. Our results demonstrated that the plasmids that did not harbor ARGs were mostly non-conjugative, whereas the plasmids that harbored ARGs were conjugative. The arrangement of these ARGs exhibited a pattern of organization featuring a series of ARG cassettes, some of which were identical across the isolates collected from different sources. Therefore, this study suggests that the sets of ARG cassettes on plasmids were mostly shared between pigs and their owners. Hence, enhanced surveillance of ARG should be implemented in farm environments to proactively mitigate the risk of antibiotic-resistant bacterial infections.
Cho, Eun-Jung;Hwang, Yu Yean;Koo, Bon-Kyeong;Park, Jesoep;Kim, Young Kwon;Kim, Sunghyun
Korean Journal of Clinical Laboratory Science
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v.48
no.2
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pp.74-81
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2016
Ureaplasma species can normally colonize in the bodies of healthy individuals. Their colonization is associated with various diseases including non-gonococcal urethritis, chorioamnionitis, neonatal meningitis, and prematurity. In 2012, the sum of the resistant and intermediate resistant rates of Ureaplasma spp. to ofloxacin and ciprofloxacin was 66.08% and 92.69%, respectively. DNA point mutations in the genes encoding DNA gyrase (topoisomerase II) and topoisomerase IV are commonly responsible for fluoroquinolone resistance. Each enzyme is composed of two subunits encoded by gyrA and gyrB genes for DNA gyrase and parC and parE genes for topoisomerase IV. In the current study, these genes were sequenced in order to determine the role of amino acid substitutions in Ureaplasma spp. clinical isolates. From December 2012 to May 2013, we examined mutation patterns of the quinolone resistance-determining region (QRDR) in Ureaplasma spp. DNA sequences in the QRDR region of Ureaplasma clinical isolates were compared with those of reference strains including U. urealyticum serovar 8 (ATCC 27618) and U. parvum serovar 3 (ATCC 27815). Mutations were detected in all ofloxacin- and ciprofloxacin-resistant isolates, however no mutations were detected in drug-susceptible isolates. Most of the mutations related to fluoroquinolone resistance occurred in the parC gene, causing amino acid substitutions. Newly found amino acid substitutions in this study were Asn481Ser in GyrB; Phe149Leu, Asp150Met, Asp151Ile, and Ser152Val in ParC; and Pro446Ser and Arg448Lys in ParE. Continuous monitoring and accumulation of mutation data in fluoroquinolone-resistant Ureaplasma clinical isolates are essential to determining the tendency and to understanding the mechanisms underlying antimicrobial resistance.
Helicobacter pylori as the second most common cause of gastric cancer in the world infects approximately half of the developed countries population and 80% of the population living in developing countries. Integrons as genetic reservoirs play major roles in dissemination of antimicrobial resistance genes. To the best of our knowledge, this is the first study to report carriage of class 1 and 2 integrons and associated gene cassettes in H. pylori isolates from Iran. This cross-sectional study was conducted in Tehran among 110 patients with H. pylori infection. Antimicrobial susceptibility testing (AST) for H. pylori strains were assessed by the micro broth dilution method. Class 1 and 2 integrons were detected using PCR. In order to determine gene cassettes, amplified fragments were subjected to DNA sequencing of both amplicon strands. The prevalence of resistance to clarithromycin, metronidazole, clarithromycin, tetracycline, amoxicillin, rifampin, and levofloxacin were 68.2% (n=75), 25.5% (n=28), 24.5% (n=27), 19.1% (n=21), 18.2% (n=20) and 16.4% (n=18), respectively. Frequency of multidrug resistance among H. pylori isolates was 12.7%. Class 2 integron was detected in 50 (45.5%) and class 1 integron in 10 (9.1%) H. pylori isolates. The most predominant gene cassette arrays in class 2 integron-bearing H. pylori were included sat-era-aadA1, dfrA1-sat2-aadA1, blaoxa2 and, aadB whereas common gene cassette arrays in class 1 integron were aadB-aadA1-cmlA6, aacA4, blaoxa2, and catB3. The high frequency of class 2 integron and multidrug resistance in the present study should be considered as a warning for clinicians that continuous surveillance is necessary to prevent the further spread of resistant isolates.
Carbapenem-resistant Klebsiella pneumoniae (CRKP) is emerging as a worldwide public health threat. Recently, Klebsiella pneumoniae carbapenemase-2 (KPC-2)-producing sequence type (ST) 307 was identified main clone of CRKP, and dissemination of ST307 was reported in South Korea. This study examined the molecular characteristic and antimicrobial resistance pattern of 50 CRKP isolated from a tertiary hospital in Daejeon, from March 2020 to December 2021. Epidemiological relationship was analyzed by Multilocus sequence typing (MLST) and antimicrobial susceptibility test was determined using disk-diffusion method. PCR and DNA sequence analysis were performed to identify carbapenemase genes. CRKP infections were significantly more frequent in males and the patients aged ≥ 60 years. Among the 50 CRKP isolates, 46 isolates (92.0%) were multidrug-resistant (MDR), and 44 isolates (88.0%) were carbapenemase-producing K. pneumoniae (CPKP). The major carbapenemase type was KPC-2 (36 isolates, 72.0%) and New Delhi metalloenzyme-1 (NDM-1) and NDM-5 were identified in 7 isolates (14.0%) and 1 isolate (2.0%), respectively. In particular, 88.9% (32/36) of KPC-2-producing K. pneumoniae belonged to ST307, whereas 87.5% (7/8) of NDM-1,-5-producing K. pneumoniae belonged to non-ST307. These results suggest that proper infection control and effective surveillance network need to prevent not olny the spread of ST307, but also the development of non-ST307.
Purpose : In the treatment of MRSA infection, rapid detection of MRSA is extremely important. The mecA gene codes the new drug resistant polypeptides called PBP2' which mediates the clinically relevant resistance to all beta-lactam antibiotics. The identical mecA gene has been found in coagulase-negative staphylococcus with the methicillin-resistant phenotype. On the other hand, the femA gene was absent from coagulase negative staphylococcus strains with the methicillin resistant phenotype. This study is aimed at early detection and definite diagnosis of MRSA. Methods : A total of 24 MRSA strains were studied. All strains were tested for antimicrobial susceptibility and purified DNA. We amplified both mecA and femA genes by PCR in 24 strains. Results : In MRSA all the 16 strains (100%) carried femA gene and 11 strains (68.7%) carried mecA gene. In contrast, in methicillin sensitive staphylococcus all the 8 strains (100%) carried femA and only 3 strains (37.5%) were detected mecA. Conclusions : As results, there are difference in the phenotype and genotype of methicillin resistance by PCR of mecA and femA. Such disparities between methicillin resistance and the presence of mecA gene suggest the presence of control gene of the mecA.
We developed the multiplex LAMP assay using 16S rRNA, femA and mecA genes for direct detection of the methicillin resistance in Staphylococci from positive blood culture. To simultaneously recognize Staphylococci genus, S. aureus and methicillin resistance, three sets of six primers for 16S rRNA, femA and mecA were designed, respectively. The performance of LAMP assay was affirmed using VITEK system for the phenotypic methods of identification and for oxacillin and cefoxitin antimicrobial susceptibility. The optimal condition for LAMP assay was obtained under $64^{\circ}C$ for 50 min. The detection limit was determined to be of 20 copies and CFU/reaction ($10^4CFU/mL$). For clinical application of comparison with phenotypic methods, the sensitivity and specificity of the LAMP with femA gene for detecting S. aureus was 95.31% and 100%, respectively. The sensitivity and specificity of the LAMP with mecA gene for detecting methicillin resistance was 98.46% and 100%, respectively. The multiplex LAMP assay with femA and mecA gene successfully detected all of MRSA (38 isolates) isolates from 103 Staphylococci in blood cultures. The LAMP assay developed in this study is sensitive, specific, and of excellent agreement with the phenotypic methods.
Recently, the rapid increase and global spread of extended-spectrum $\beta-lactamase$ producing clinical isolates has become a serious problem. The incidence of extended-spectrum $\beta-lactamase$ producing clinical isolates of Escherichia coli in Korea and susceptibility to antimicrobial agents were investigated. Total 233 isolates of E. coli were obtained from urine from hospitalized patients in Guro hospital, Korea University in 2001. One hundred and eighty four isolates $(78.9\%)$ were resistant to ampicillin, 80 isolates $(34.3\%)$ were resistant to cephalothin, 93 isolates $(39.9\%)$ were resistant to gentamicin, and 64 isolates $(27.5\%)$ were resistant to norfloxacin. Among 233 isolates, 17 isolates $(7.3\%)$ were positive as determined by the double disk synergy test. When minimal inhibitory concentrations were assayed with additional 6 antimicrobial agents, 13 isolates $(76.5\%)$ were multi-drug resistant to at least four different class antimicrobial agents. Extended-spectrum $\beta-lactamase$ were characterized with isoelectric focusing gel electrophoresis and DNA sequencing. They were TEM-1 in 5 isolates, TEM-15 in 1 isolate, TEM-20 in 1 isolate, TEM-52 in 4 isolates, TEM-1 and AmpC in 2 isolates, TEM-1 and OXA-30 in 1 isolate, TEM-1 and OXA-33 in 1 isolate, TEM-1, CTX-M-3, and AmpC in 1 isolate, but SHV was not detected. Antimicrobial resistance genes were transferred to animal isolate of E. coli (CCARM No. 1203) by the filter mating method. Extended spectrum $\beta-lactamase$ producers studied in the current study have low correlation to each other as determined by random amplified polymorphic DNA and pulsed field gel electrophoresis. This is a contradictory result from the general hypothesis that extended-spectrum $\beta-lactamase$ producers in one hospital is a result from a clonal spread.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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