Recombinant protein G has been utilized in the purification of antibodies from various mammalian species based on the interaction of antibodies with protein G. The interaction between immunoglobulin and protein G may not be restricted to the Fc protion of antibodies, as many different $F(ab)_2$ or Fab fragments can also bind to protein G. I found both FAb $F(ab)_2$ of 145-2C11, a hamster anti-mouse $CD3{\varepsilon}$ antibody, bound to the protein G-sepharose. Interestingly, Fab and $F(ab)_2$ of 145-2C11 did not bind to the protein A-sepharose. The binding of Fab and $F(ab)_2$ of 145-2C11 to protein G provided a useful method to remove proteases, chopped fragments of the Fc region, and other contaminating proteins. The remaining intact antibody in the protease reaction mixture can be removed by using a protein A-sepharose, because the Fab and $F(ab)_2$ portions of 145-2C11 did not bind to protein A-sepharose. The specific binding of Fab and $F(ab)_2$ portions of 145-sC11 to a protein G-sepharose (though not to a protein A-sepharose) and binding of intact 145-2C11 to both protein A- and G-sepharose will be useful in developing an effective purification protocol for Fab and $F(ab)_2$ portions of 145-2C11.
Monoclonal antibodies (Mabs) have been used as diagnostic and analytical reagents since hybridoma technology was invented in 1975. In recent years, antibodies have become increasingly accepted as therapeutics for human diseases, particularly for cancer, viral infection and autoimmune disorders. An indication of the emerging significance of antibody-based therapeutics is that over a third of the proteins currently undergoing clinical trials in the United States are antibodies. Until the late 1980's, antibody technology relied primarily on animal immunization and the expression of engineered antibodies. However, the development of methods for the expression of antibody fragments in bacteria and powerful techniques for screening combinatorial libraries, together with the accumulating structure-function data base of antibodies, have opened unlimited opportunities for the engineering of antibodies with tailor-made properties for specific applications. Antibodies of low immunogenicity, suitable for human therapy and in vivo diagnosis, can now be developed with relative ease. Here, antibody structure-function and antibody engineering technologies are described.
Therapeutic antibodies represent one of the fastest growing areas of the pharmaceutical industry. There are currently 19 monoclonal antibodies in the market that have been approved by the FDA and over 150 in clinical developments. Driven by innovation and technological developments, therapeutic antibodies are the second largest biopharmaceutical product category after vaccines. Antibodies have been engineered by a variety of methods to suit a particular therapeutic use. This review describes the structural and functional characteristics of antibody and the antibody engineering for the generation and optimization of therapeutic antibodies.
Na, Jung-Hyun;Joo, Man-Seok;Lee, Won-Kyu;Shim, Hyunbo;Lim, Si-Hyung;Jung, Sang Taek;Yu, Yeon Gyu
Bulletin of the Korean Chemical Society
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v.34
no.2
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pp.460-464
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2013
Single-chain variable fragments of antibodies (scFv) specific to 2,4-dinitrotoluene (DNT) were isolated from a phage library displaying synthetic human scFv fragments with 6 diversified complementary determining regions (CDRs). A DNT derivative that contained an extended amine group was synthesized and conjugated to the NHS-group that was linked to magnetic beads. Phages specific to the immobilized DNT derivatives were isolated from the library after 4 rounds of sequential binding and elution processes. The displayed scFv fragments from the isolated phages showed consensus CDR sequences. One DNT-specific scFv was expressed in E. coli and purified using Ni-affinity chromatography. The purified DNT-specific scFv binds specifically to the immobilized DNT-derivative with $K_D$ value of $6.0{\times}10^{-7}$ M. The scFv and DNT interaction was not disrupted by the addition of 4-nitrotoluene or benzoic acid. These data demonstrate that the screened scFv from the phage displayed library could be used for selective and sensitive detection of explosives such as TNT.
Moon, Yeajin;Lee, Ju Young;Ryoo, Woonseok;Seo, Seung-Yong
Journal of Radiopharmaceuticals and Molecular Probes
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v.6
no.1
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pp.39-45
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2020
Recently, single-domain antibodies (sdAb) are bioengineered for molecular imaging applications. Single-domain antibody, obtained from naturally occurring antibodies in camelid species and cartilaginous fish is the smallest fully functional antigen-binding antibody fragments of heavy-chain. Since their discovery, they have been investigated extensively in clinical therapeutics, monitoring and diagnostics. Their small size is important advantage for high solubility, high stability, fast blood clearance and rapid targeting. This review article summarizes the recent status of this new antibody to visualize, diagnose or inhibit specific targets of cancer.
The characteristics and stabilities of phosphatidylcholine liposomes covalently coupled with immunoglobulin fragments prepared by the REV method were investigated by the dynamic light scattering, absorbance and calcein release. Using a sulfhydryl-reactive phospholipid derivative of N-[4$({\rho}-maleimido-phenyl)$ butyl] phosphatidylethanolamine (MPB-PE), Fab' antibody fragments were covalently combined with preformed large unilamellar vesicles (LUV), Coupling ratio was $250\;{\mu}g$ of $Fab'/{\mu}mol$ of phospholipid in vesicles, From dynamic light scattering, it was found that the size of the vesicles increases as the ratio of cholesterol to lipid increases, but that apparently, the size of liposomes was not sensitive to the existence of Fab' fragments. Regardless of inserting Fab' fragments, the absorbance of liposomes decreased as the amounts of bile salt (BS) added. At very low BS concentrations, BS/lipid aggregates would be formed in the outer vesicles monolayer, while, at the high BS concentrations, mixed micelles would be preferred. The vesicles incorporated with Fab' fragments, however, are more resistant to the bile salts than the MPB-PE vesicle are. The absorbance of vacant liposomes and calcein release resulted in that the Fab' vesicles and MPB-PE vesicles by the REV method are very stable, but that those by the sonication method sufferred the significant change of turbidities.
Background: Monoclonal antibodies (mAb) of rodent origin are produced with ease by hybridoma fusion technique, and have been successfully used as therapeutic reagents for humans after humanization by genetic engineering. However, utilization of these antibodies for therapeutic purpose has been limited by the fact that they act as immunogens in human body causing undesired side effects. So far, there have been several attempts to produce human mAbs for effective in vivo diagnostic or therapeutic reagents including the use of humanized xenomouse that is generated by mating knockout mice which lost Ig heavy and light chain genes by homologous recombination and transgenic mice having both human Ig heavy and light gene loci in their genome. Methods: Genomic DNA fragments of mouse Ig heavy and light chain were obtained from a mouse brain ${\lambda}$ genomic library by PCR screening and cloned into a targeting vector with ultimate goal of generating Ig knockout mouse. Results: Through PCR screening of the genomic library, three heavy chain and three light chain Ig gene fragments were identified, and restriction map of one of the heavy chain gene fragments was determined. Then heavy chain Ig gene fragments were subcloned into a targeting vector. The resulting construct was introduced into embryonic stem cells. Antibiotic selection of transfected cells is under the progress. Conclusion: Generation of xenomouse is particularly important in medical biotechnology. However, this goal is not easily achieved due to the technical difficulties as well as huge financial expenses. Although we are in the early stage of a long-term project, our results, at least, partially contribute the successful generation of humanized xenomouse in Korea.
Background: Expression of recombinant antibodies and their derivatives fused with other functional molecules such as alkaline phosphatase in Escherichia coli is important in the development of molecular diagnostic reagents for biomedical research. Methods: We investigated the possibility of applying a well-known Fos-Jun zipper to dimerize $V_H$ and $V_L$ fragments originated from the Fab clone (SP 112) that recognizes pyruvate dehydrogenase complex-E2 (PDC-E2), and demonstrated that the functional zipFv-112 and its alkaline phosphatase fusion molecules (zipFv-AP) can be produced in the cytoplasm of Origami(DE3) trxB gor mutant E. coli strain. Results: The zipFv-AP fusion molecules exhibited higher antigen-binding signals than the zipFv up to a 10-fold under the same experimental conditions. However, conformation of the zipFv-AP seemed to be influenced by the location of an AP domain at the C-terminus of $V_H$ or $V_L$ domain [zipFv-112(H-AP) or zipFv-112(L-AP)], and inclusion of an AraC DNA binding domain at the C-terminus of VH of the zipFv-112(L-AP), termed zipFv-112(H-AD/L-AP), was also beneficial. Cytoplasmic co-expression of disulfide-binding isomerase C (DsbC) helped proper folding of the zipFv-112(H-AD/L-AP) but not significantly. Conclusion: We believe that our zipFv constructs may serve as an excellent antibody format bi-functional antibody fragments that can be produced stably in the cytoplasm of E. coli.
Kim, Keun-Sik;Park, Yong-Serk;Hong, Hyo-Jeong;Kim, Kwang-Pyo;Lee, Kwang-Hyun;Kim, Dong-Eun
Bulletin of the Korean Chemical Society
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v.33
no.2
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pp.651-656
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2012
Cationic immunoliposomes were prepared by conjugation of Fab' fragments of the recombinant humanized monoclonal antibody (HuCC49) against tumor-associated glycoprotein (TAG)-72 to sterically unilamella liposomes. The cationic immunoliposomes are composed of cationic lipid (O,O'-dimyristyl-N-lysyl aspartate, DMKD), cholesterol, and 1,2-dipalmitoyl-sn-glycero-3-phosphoethanolamine-N-[maleimide(polyethyleneglycol)$_{2000}$] (DPPE-PEG-maleimide) with a molar ratio of 0.5:0.47:0.03. Plasmid DNA was effectively condensed by addition of transferrin (Tf) during the formation of anti-TAG-72 PEG-immunolipoplexes (PILPs). These anti-TAG-72 PILPs were able to adhere to the surface of TAG-72-overexepressing LS174T human colon cancer cells more effectively than conventional liposomes, thereby facilitating gene delivery in vitro. Furthermore, intravenous administration of the anti-TAG-72 PILPs into the tumor-carrying mice exhibited efficient localization of the reporter gene in the tumor tissues.
Glucose oxidase (GOD) is an oxidoreductase catalyzing the reaction of glucose and oxygen to peroxide and gluconolacton (EC 1.1.3.4.). GOD is a widely used enzyme in biotechnology. Therefore the production of monoclonal antibodies and antibody fragments to GOD are of interest in bioanalytics and even tumor therapy. We describe here the generation of a panel of monoclonal antibodies to native and heat inactivated GOD. One of the hybridomas, E13BC8, was used for cloning of a single chain antibody(scFv). This scFv was expressed in Escherichia coli XL1-blue with the help of the vector system pOPE101. The scFv was isolated from the periplasmic fraction and detected by western blotting. It reacts specifically with soluble active GOD but does not recognize denatured GOD adsorbed to the solid phase. The same binding properties were also found for the monoclonal antibody E13BC8.
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