Pseudomonas sp. strain DJ-12 is a bacterial isolate capable of degrading 4-chlorobiphenyl (4CBP) as a carbon and energy source. The catabolic degradation of 4CBP by the strain DJ-12 was studied along with the genetic organization of the genes responsible for the crucial steps of the catabolic degradation. The catabolic pathway was characterized as being conducted by consecutive reactions of the meta-cleavage of 4CBP, hydrolytic dechlorination of 4-chlorobenzoate (4CBA), hydroxylation of 4-hydroxybenzoate, and meta-cleavage of protocatechuate. The pcbC gene responsible for the meta-cleavage of 4CBP only showed a 30 to 40% homology in its deduced amino acid sequence compared to those of the corresponding genes from other strains. The amino acid sequence of 4CBA-CoA dechlorinase showed an 86% homology with that of Pseudomonas sp. CBS3, yet only a 50% homology with that of Arthrobacter spp. However, the fcb genes for the hydrolytic dechlorination of 4CBA in Pseudomonas sp. DJ-12 showed an uniquely different organization from those of CBS3 and other reported strains. Accordingly, these results indicate that strain DJ-12 can degrade 4CBA completely via meta-cleavage and hydrolytic dechlorination using enzymes that are uniquely different in their amino acid sequences from those of other bacterial strains with the same degradation activities.
Kim, Seung-Ho;Park, Soo-Jeong;Lee, Jong-Woo;Jin, Jong-Youl
BMB Reports
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제35권5호
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pp.524-531
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2002
Thrombotic thrombocytopenic purpura (TTP) is characterized by widespread platelet thrombi in arterioles and capillaries. Unusually large or multimeric von Willebrand factor, as well as one or ore platelet-agglutinating factors, have been implicated in the pathogenesis of TTP. But, the actual mechanisms of platelet agglutination have not been satisfactorily explained. Recent studies suggested the 37-kDa platelet-agglutinating protein (PAP) p37 to be partially responsible for the formation of platelet thrombi in patients with TTP. We studied mobility in SDS-PAGE, the sequence of N-terminal amino acid residues, DNA and antigenic characteristics of PAP p37, which might be related to the pathogenesis of TTP. PAP p37 was purified from the plasma of a 31-year-old male Korean patient with acute TTP. The findings are as follows: (1) We compared PAP p37 with thrombin through the use of SDS-PAGE, either with or without $\beta$-mercaptoethanol. PAP p37 did not appear to be cleaved between the A- and B-chains of prethrombin 2. However, thrombin did cleave between those of prethrombin 2, but linked with disulfide bridge. (2) N-terminal 21 amino acid sequence of PAP p37 was T-F-G-S-G-E-A-D-X-G-L-R-P-L-F-E-K-K-S-L-E. It appeared to be identical to that of 285-305 amino acid residues of human prothrombin (prethrombin 2). (3) No prothrombin gene DNA mutation was revealed. (4). The antigenicity of PAP p37 was similar to thrombin, which was a result of the competitive binding against the anti-thrombin antibody. With these results, we conclude that PAP p37 has similar characteristics to prethrombin2.
The gene encoding Pyrobaculum arsenaticum DNA polymerase (Par DNA polymerase) was cloned and sequenced. The gene consists of 2,361 bp coding for a protein with 786 amino acid residues. The deduced amino acid sequence of Par DNA polymerase showed a high similarity to archaeal family B-type DNA polymerases (Group I), and contained all of the motifs conserved in the family B-type DNA polymerases for $3'{\rightarrow}5'$ exonuclease and polymerase activities. The Par DNA polymerase gene was expressed under the control of the T7lac promoter on the expression vector pET-22b(+) in Escherichia coli BL21-CodonPlus(DE3)-RP. The expressed enzyme was purified by heat treatment, and Cibacron blue 3GA and $Hirap^{TM}$ Heparin HP column chromatographies. The optimum pH of the purified enzyme was 7.5. The enzyme activity was activated by divalent cations, and was inhibited by EDTA and monovalent cations. The half-life of the enzyme at $95^{\circ}C$ was 6 h. Par DNA polymerase possessed associated $3'{\rightarrow}5'$ proofreading exonuclease activity, which is consistent with its deduced amino acid sequence. PCR experiment with Par DNA polymerase showed an amplified product, indicating that this enzyme might be useful in DNA amplification and PCR-based applications.
Park Nam Sook;Lee Kwang Sik;Lee Sang Mong;Je Yeon Ho;Park Eunju;Sohn Hung Dae;Jin Byung Rae
International Journal of Industrial Entomology and Biomaterials
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제10권1호
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pp.35-43
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2005
We describe here the complete nucleotide sequence and the exon-intron structure of the Cu,Zn superoxide dismutase (SOD1) gene of Paecilomyces tenuipes and Paecilomyces sp. The SOD1 gene of P. tenuipes spans 966 bp, and consisted of three introns and four exons coding for 154 amino acid residues. Three unambiguous introns in P. tenuipes separate exons of 13, 332, 97, and 20 bp, all exhibiting exon sizes identical to Cordyceps militaris SOD1 gene. The SOD1 gene of Paecilomyces sp. contains 946 bp and consisted of four introns and five exons coding for 154 amino acid residues. Five exons of Paecilomyces sp. SOD1 are composed of 13, 180, 152, 97, and 20 bp. Interestingly, this result showed that the total length of exons 2 (180 bp) and 3 (152 bp) of Paecilomyces sp. SOD1 is same to exon 2 length (332 bp) of C. militaris SOD1 and P. tenuipes SOD1. The deduced amino acid sequence of the P. tenuipes SOD1 showed $95\%$ identity to C. militaris SOD1 and $78\%$ to Paecilomyces sp. SOD1. Phylogenetic analysis confirmed that the C. militaris SOD1, P. tenuipes SOD1 and Paecilomyces sp. SOD1 are placed together within the ascomycetes group of fungal clade.
The first step of the branch pathway in tryptophan biosynthesis is catalyzed by anthranilate synthase, which is subjected to feedback inhibition by the end product of the pathway. The $trpE^{FBR}$ gene from a mutant Escherichia coli strain coding for anthranilate synthase that was insensitive to feedback inhibition by tryptophan has been cloned. To identify the amino acid changes involved in the feedback regulation of anthranilate synthase, the nucleotide sequence of the mutant $trpE^{FBR}$ gene was determined. Sequence analysis of the $trpE^{FBR}$ gene revealed that four bases were changed in the structural gene while alteration was not found in the 5' control region. Among these base changes, only two base substitutions caused the alterations in amino acid sequences. From the results of restriction fragment exchange mapping, the 61st nucleotide, C to A substitution, that changed $Pro^{21}{\rightarrow}Ser$ was identified as the cause of the desensitization to feedback inhibition by tryptophan. Additional feedback-resistant enzymes of the E. coli anthranilate synthases were constructed by site-directed mutagenesis to examine the effect of the $Ser^{40}\;{\rightarrow}\;Arg^{40}$ change found in the $trpE^{FBR}$ gene of Brevibacterium lactofermentum. From the feedback inhibition analysis, the $Pro^{21}{\rightarrow}Ser$ and $Ser^{40}{\rightarrow}Arg$ mutants maintained about 50% and 90% of their maximal activities, respectively, even at the extreme concentration of 10 mM tryptophan. From these results, we suggest that the $Pro^{21}$ and $Ser^{40}$ residues are involved in the tryptophan binding in the E. coli enzyme.
International Journal of Industrial Entomology and Biomaterials
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제7권2호
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pp.145-149
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2003
ApolipophorinIII (apoLp-III) is a protypical exchangeable apolipoprotein that is abundant in hemolymph of many insect species. Its function lies in the stabilization of low-density lipophorin particles (LDLp) crossing the hemocoel in phases of high energy consumption to deliver lipids from the fat body to the flight muscle cells. But, recent studies with naive Galleria mellonella-apoLp-III gave first indication of an unexpected role of that protein in insect immune activation. In this research, we cloned a cDNA encoding putative apoLp-III from the silkworm, Bombyx mori injected with E. coli and characterized its role. We constructed a cDNA library using whole bodies of B. mori larvae injected with E. coli, carried out the differential screening, and selected the up-regulated clones. Among these clones, we focused on a cDNA showing a high sequence similarity to the apolipophorinIII from other insects and analyzed the nucleotide and deduced amino acid sequences. The pupative B. mori Jam123 apoLp-III cDNA contained 1,131 bp encoding 186 amino acid residues. Phylogenetic analysis revealed that the nucleotide and amino acid sequences of the B. mori apoLp-III cDNA formed a highly inclusive subgroup with Bombycidae. But, it was interesting that B. mori Jam123 is closer to B. mandarina than B. mori P50 and B. mori N4. Northern blot analysis showed a signal in the fat body, posterior silkgland and midgut.
Spikelet proteins expressed at the young microspore stage in rice were separated and analysed by two-dimensional polyacrylamide gel electrophoresis (2DE). The separated proteins were electro blotted onto a polyvinylidene difluoride (PVDF) membrane, and 50 proteins were analyzed by a gas-phase protein sequencer. The N-terminal amino acid sequences of 20 out of 50 proteins were determined. N-terminal regions of the remaining proteins could not be sequenced because of blocking. The internal amino acid sequences of proteins were determined by sequence analysis of peptides obtained by the Cleveland peptide mapping method. Results revealed the presence of the photosynthetic apparatus at rice young microspore stage. Major proteins identified in this study could be used as a marker for various studies on physiological stresses.
Kim, Seong-Ryul;Yoon, Hyung-Joo;Park, Nam-Sook;Lee, Sang-Mong;Moon, Jae-Yu;Jin, Byung-Rae;Sohn, Hung-Dae
International Journal of Industrial Entomology and Biomaterials
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제3권2호
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pp.121-126
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2001
A cDNA encoding a cathepsin D homologue was cloned from a cDNA library of the mulberry longicorn beetle, Apriona germari. Sequence analysis of the cDNA encoding the cathepsin D homologue of A. germari revealed that the 1,158 bp cDNA has an open reading frame of 386 amino acid residues. The deduced protein sequence of the A. germari cathepsin D homologue shows high homology with cathepsin D in insects, Aedes aegypti (68.2% amino acid similarity) and Drosophila melanogaster (67.2% amino acid similarity). Two aspartic residues and six cystein residues in the A. germari cathepsin D homologue are present at identical locations in all of the other catepsins D. Unlike cathepsins D in two insect species, A. gemari cathepsin D homologue appears to have two putative glycosylation sites, rather than one. Phylogenetic analysis revealed the A. germari cathepsin D homologue is more closely related to insect cathepsins D than to the other animal cathepsins D. Northern blot analysis suggests that A. germari cathepsin D homologue gene is expressed in most if not all, body tissues.
더덕 뿌리에서 유래한 EST cDNA library로부터 cyclophilin 유전자와 높은 상동성을 나타내 는 full clone cDNA를 얻었다. 더덕의 cyclophilin, ClCyP1은 747 bp의 cDNA로 174개의 아미노산을 코딩하는 525 bp의 ORF를 가지고 있다. ClCyP1의 아미노산 서열을 분석한 결과, 기존에 보고된 식물들의 cytosolic cyclophilin들과 높은 상동성을 나타내었으며, 여러 식물의 cytosolic CyP의 공통적인 특징인 7개의 아미노산 잔기(KSGKPLH)를 가지고 있었다. RT-PCR분석 결과, 더덕의 ClCyP1은 식물의 조직 전체에서 발현되며, 저온, 고온, 그리고 염 스트레스에 대해 그 발현량이 증가하였다.
Lactrococcus sp. HY449균줄르 M17-glucose broth에 배양하여 배양 상등액으로부터 propanol-actone 침전 ion-exchange chromatography gel-filtration chromatography 및 reverse-phase chroamtography 등을 통하여 비활성 25,600,000 BU/mg 인 순수한 bacteriocin 을 정제하였다. 정제 과정 주에서 ion-exchange chromatography 단계에 서는 35.3%의회수율이 7.3%로 감소하였다. Reverse-Phase chromatography에선 3.3%의 회수율을 보였고 활성도는 413.5배로 증가하였다. Tricine-SDS 전기영도 결과 bacteriocin 은 단일 밴드로 나타났으며, N-말단 아미노산 서열 분석을 수행한 결과 $NH_2$-IIe-Leu-Pro-GIn로 확인되었다. 아미노산조정 분석결과를 바탕으로 분자량을 예측한 결과 본 bacteriocin은 32개의 아미노산으로 이루어져 있으며 분자량은 3.6kDa인 것으로 추정되었다.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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