The tomato plant, Lycopersicon esculentum Mill, was inoculated with tumor inducing strain, $A_6K_1$, of Agrobacterium tumefaciens and its produced tumors were examined with the electron microscope. A number of bacteria are usually detected in the intercellular region of the host plant, and it is observed that the host cytoplasm is readily destroyed in the region where the bacterial invasion occurred. Some of the bacteria in the host tissues are enclosed with the single unit membranes, in other locations lots of bacteroids were examined and the bacterial lysis is generally observed in those bacteroids. The bacterial movement in the tumor tissue and some peculiar relationships between the pathogens and the host plant are discussed.
Crown gall on lower stem and root of chrysanthemum(Dendranthema grandiflorum Kitamura) was observed at Hwasung and Gumi in 2001 and 2004, respectively. Tumors were semi-round with rough surface texture of dark brown color. Nine isolates inducing gall formation on lower stem of chrysanthemum among twenty isolates from the tumor tissues were characterized. Their colonies were convex, glistening, circular with an entire edge and whitish or tannish cream in color on potato dextrose agar supplemented with 0.5% $CaCO_3$. The virulent isolates were rod-shaped with peritrichous flagellae, gram negative, aerobic and growing on D1M agar. Among nine virulent isolates, one isolate was identified as Agrobacterium rubi and eight isolates were A. tumefaciens based on biochemical and physiological characteristics, fatty acid profiles and substrate utilization patterns. A. tumefaciens had strong pathogenicity and broad host range compared with A. rubi. This is the first report on crown gall of chrysanthemum in Korea. To our knowledge, crown gall of chrysanthemum caused by A. rubi is first report in this study worldwide.
We have demonstrated expression of bacterial genes transferred into cells of Populus nigra ${\times}$ P. maximowiczii by A. tumefaciens strain 6044 (pGA 472). We determined the optimum concentration of kanamycin sulfate for effective selection of punctured leaf transformed using Agrobacterium binary vector pGA 472 containing a neomycine phosphotransferase gene (NPT-II) which confers kanamycin resistance. The combination of cefotaxime (200mg/l) and carbenicillin (300mg/l) showed good performance of discarding Agrobacterium from inoculated punctured leaf. A relatively low concentration (10mg/l) of kanamycin sulfate inhibited callus and shoots induction from punctured leaf. Number of shoots regenerated from co-cultured punctured leaf was 3.0 on MS basal medium supplemented with 10 mg/l kanamycin sulfate, while that of not co-cultured punctured leaf was none. The regeneration rate was 10% from the punctured leaf co-cultured on MS medium with 10 mg/l kanamycin. Regenerated shoots are developing from micropropagation for Southern blot analysis and inheritance of the kanamycin resistance trait (NPT-II).
In vitro-tested ribozyme against synthesized cucumber mosaic virus (CMV) RNA (Agric. Chem. & Biotech. 37:56-63(1994)) was expressed in tobacco plant to develop virus resistant plants. The ribozyme sequence was linked to cauliflower mosaic virus 35S promoter and nopaline synthase(nos) terminator and this chimeric 35S-ribozyme-nos gene was sequenced. The sequenced chimeric gene was transferred to Agrobacterium tumefaciens LBA4404 using tri-parental mating system. The E. coli HB101 containing chimeric gene was incubated with E. coli HB101(pRK2073) as a helper and Agrobacterium tumefaciens LBA4404. Then Agrobacterium cells containing the ribozyme construct was cocultivated with tobacco leaf pieces. Ten different plants were regenerated from kanamycin containing MS medium. The presence of the ribozyme construct in the transgenic tobacco plants was confirmed by polymerase chain reaction (PCR). Seven different transgenic plants in ten different kanamycin resistant plants showed the expected size (570 base pairs) of 35S-ribozyme-nos gene fragment. Total RNAs were isolated from four different transgenic plants and separated on a 1% agarose gel containing formamide. Northern hybridization with 35S-ribozyme-nos gene fragment as a probe indicated that ribozyme transcripts may be degraded tv nuclease. Therefore, nuclease-resistant ribozymes are needed for the development of virus-resistant transgenic plants using ribozymes.
This study was conducted to find optimum bacterial density for improving the efficiency of transformation mediated by Agrobacterium tumefaciens in apples. Regeneration(15%) and transformation frequency(10%) were increased in resuspension-culture density $A_{600}$ 1.3 from preculture density $A_{600}$ 0.7 of Agrobacterium tumefaciens in ′Fuji′. In ′Gala′, 20% regeneration and 16% transformation frequency were observed at optimum bacterial density $A_{600}$ 0.7 form preculture density $A_{600}$ 1.3. ′Mclntosh as well as "Gala" were 25%regeneration and 10% transformation frequency. Hence a frequency optimum condition of bacterial density for the efficient transformation of apple could be depend on apple genotypes.
A RAG25 gene regulating flowering time was introduced into Codonopsis lanceolata through high efficiencies (ca. 90%) of plant regeneration. The leaf explants were immersed in YEP media containing Agrobacterium tumefaciens (pGA 1209) harboring RAG25 gene, and cocultivated for 3 days. After cocultivation, they were cultured in shoot inducing media (SIM), N2B2 (NAA 2 mg/L, BA 2 mg/L and kanamycin 20 mg/L) and N2B4 (NAA 2 mg/L, BA 4 mg/L and kanamycin 20 mg/L), and the putative transformants were regenerated. The introduction of nptII and RAG25 gene into Codonopsis lanceolata was confirmed by 0.7 kb and 0.6 kb bands from polymerase chain reaction and reconfirmed by Southern hybridization using PCR product of RAG25 gene.
Cytokinin is one of major growth regulators in plants. In this study, the gene isopentenyl transferase (jpt) which encodes a key enzyme involved in the biosynthesis of the growth regulator cytokinin isolated from Agrobacterium tumefaciens was introduced ito tobacco plant via Agrobacterium-mediated transformation. The jpt gene was modulated using the proteinase inhibitor II (PI-IIK) promotor. In general, this promoterlipt gene fusion resulted in overproduction of cytokinins throughout the transgenic plants. The overproduction of cytokinin caused dramatic changes in morphology of the plant, including stem thickness and reduced root development. The studies reported in this paper were initiated to examine the consequences of overproduction of cytokinin in plant.
A new functional lipolytic enzyme (AT4) has recently been found from Agrobacterium tumefaciens C58 Cereon using a genome-wide approach. The enzyme has some sequence similarity to E. coli acetyl hydrolase, Emericella nidulans lipase, Moraxella sp. lipase, Acinetobacter lwoffii esterase, and Streptomyces hygroscopicus acetyl hydrolase. However, the sequence similarities are very low (less than $25\%$), suggesting that it is a new lipase/esterase enzyme. ill the present study, intact cell of the A. tumefaciens strain was shown to have lipolytic activity on a tributyrin-LB plate. The AT4 gene was then expressed at a high level in E. coli BL21 (DE3) cells and the enzyme was purified simply by Ni-NTA column chromatography. The purified enzyme showed hydrolytic activity toward p-nitrophenyl caproate, but not toward olive oil, suggesting that the AT4 enzyme was a typical esterase rather than lipase. AT4 esterase had a maximum hydrolytic activity at $45^{\circ}C$ and pH 8.0, when p-nitrophenyl caproate was used as a substrate. It was relatively stable up to $40^{\circ}C$ and at pH 5.0-9.0. Calcium ion and EDT A did not affect the activity and thermal stability of the enzyme. As for substrate specificity, AT4 enzyme could rapidly hydrolyze acetyl and butyl groups from p-nitrophenyl esters and 1-naphthyl esters. In addition, it also released acetyl residues from acetylated glucose and xylose substrates. Therefore, this new esterase enzyme might be used as a biocatalyst in acetylation and deacetylation reactions performed in the fine chemical industry.
Several strains of Agrobacterium tumefaciens were isolated from soil in the Taegu area and characterized to develop some useful vector systems for higher plant genetic engineering. The selected colonies had a unique form, and strains from the colonies were capable of tumor formation on the sunflower leaf surface. They had a large plasmid. The restriction analysis showed that they were another kinds of Ti plasmic compared with C58 and Ach5. The isolated strains were identified as the nopaline type and also as biovar 1 A. tumefaciens, according to their tumor morphology, blophyslcal and biochemical characteristics. One of the isolated strains, AK204 was transformed with binary vector (pGA642), having selectable marker (Kmr, Tcr). Furthermore, maize tissue cells were transformed by cocultivation with AK204/pGA642, and the transformants were selected on the selective medium and identified using PAGE patterns of their soluble proteins.
Agrobacterium tumefaciens MP90 harboring PAT (phosphinothricin acetyltransferase) and NPTII-GUS gene were used for the genetic transformation of lettuce (Lactuca Sativa L.). Shoot regeneration from cotyledon explants were obtained from the MS medium supplemented with 0.1 mg.L$^{-1}$ NAA, 1.0 mg.L$^{-1}$ 2ip, 50 mg.L$^{-1}$ kanamycin and 500 mg.L$^{-1}$ carbenicillin after cocultivation with A. tumefaciens for 2 days. Kanamycin resistance test of transgenic plants indicated that the NPTII gene was integrated into the lettuce genome and was stably expressed. PCR and northern blot analysis indicated that bialaphos resistance gene (PAT) was stably integrated into the lettuce genome. The transgenic plant sprayed with Basta (1500x) remained healthy with continuous growth, while the control group exhibited fatality.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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