Yoon, Young Mi;An, Gi Hong;Kim, Jung Kon;Ahn, Seung-Hyun;Cha, Young-Lok;Yang, Jungwoo;Yu, Kyeong-Dan;Moon, Youn-Ho;Ahn, Jong-Woong;Koo, Bon-Cheol;Choi, In-Hoo
KSBB Journal
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v.29
no.5
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pp.316-322
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2014
Xylanase have been used to convert the polymetric xylan into fermentable sugars from the production of ethanol and xylitol from plant biomass. The aim of this study was to isolate and identify xylanolytic bacterium from herbivore feces and was to used the xylanase for enzymatic hydrolysis of biomass. Xylanolytic strains were isolated from 59 different feces of herbivores from Seoul Grand Park located in Gwacheon Gyeonggi-do. The xylanolytic strains were selected by congo red staining and DNS method. Total 67 strains isolated from the herbivores feces were tested for xylanase activity. Among the strains, H10-1, which has the highest xylanase activity, was isolated from feces of Ceratotherium simum. The H10-1 strain was identified as Bacillus pumilus based on its morphological/biochemical characteristics and partial 16S rDNA gene sequences. Culture conditions of B. pumilus H10-1 such as initial medium pH, incubation temperature and incubation time were optimized for maximum xylanase production. And also xylanase produced by B. pumilus H10-1 was applied for the saccharification of Miscanthus sacchariflorus cv. 'Geodae 1', which was pretreated with 1.5M NaOH. The optimized culture conditions of B. pumilus H10-1 were pH 9, $30^{\circ}C$ incubation temperature, and 7 day incubation time, respectively. This xylanase activity under the optimized conditions was $20.4{\pm}3.3IU$. The crude xylanase produced by B. pumilus H10-1 was used for the saccharification of xylan derived from pretreated 'Geodae 1'. The saccharification conditions were $50^{\circ}C$, 200 rpm, and 5 days. Saccharification efficiency of pretreated 'Geodae 1' by B. pumilus H10-1 was 8.2%.
A Bacillus sp. A-6 strain that produced xylanase was isolated from rice bran. The optimal temperature and pH for xylanase activity of the culture supernatant of Bacillus sp. A-6 were 40$^{\circ}C$ and pH 7, respectively. The optimal temperature and pH for xylanase production in the xylan medium were 30$^{\circ}C$ and pH 9, respectively. The optimal concentrations of oat spelt xylan and peptone for xylanase production were 0.5% and 1.5%, respectively. The best nitrogen sources for xylanase production was beef extract, but xylanase production was also supported comparably by tryptone and peptone. The bacterial growth in the optimal xylan medium reached stationary growth phase after 12 h of incubation. The xylanase production in the culture supernatant increased dramatically during the initial 12 h exponential growth phase and then remained constant at 23.8-24.5 unit/ml during the stationary growth phase. The pH of the culture medium decreased from 8.8 to 6.7 during the exponential growth phase and subsequently increased to 8.1 during the stationary growth phase. Rice bran, sorghum bran, and wheat bran as well as oat spelt xylan induced xylanase production. The xylanase production was repressed when glucose was added to the xylan-containing medium.
Kim, Yong-Gyun;Lee, Sang-Mong;Park, Hyun-Chul;Kim, Keun-Ki;Son, Hong-Joo
Journal of Life Science
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v.17
no.4
s.84
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pp.568-574
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2007
Lignin degrading bacterium Pseudomonas sp. LG2 was able to degrade lignin substrate to a lot of APPL compound. APPL compound was detected in culture supernatants from Pseudomonas sp. LG2 grown with BSC(brewer's spent grain). FAE(ferulic acid esterase) and xylanase are induced from Pseudomonas sp. LG2 in the presence of carbon sources such as oat spelt xylan, HBSG I, II(hydrolyzed brewer's spent grain I, II) and AFBSG(autoclaved fraction from brewer's spent grain). However, xylanase and FAE are not induced by growth of Pseudomonas sp. LG2 on xylose and arabinose. Pseudomonas sp. LG2 is grown on medium containing oat spelt xylan, HBSG I, II and AFBSG and the induction of FAE and xylanase activities of extracellular proteins determined during 14 days. Maximum level of xylanase activity(5.3 U/mg) found at 6 days in culture contained oat spelt xylan as carbon source, whereas maximum level of FAE activity(15.4 mU/mg) was found at 8 days in culture contained AFBSG as carbon source. Most ferulic acid was released in culture supernatants when Pseudomonas sp. LG2 grown on oat spelt xylan, HBSG I, II and AFBSG. FAE of extracellular enzymes was also specific activity on methyl ferulic acid, methyl caffeic acid and methyl p-coumaric acid respectively, but not methyl sinapinic acid, methyl vanillic acid and methyl gallic acid.
A bacterium AB-55, isolated from waste mushroom bed of Agaricus bisporus in Sukseong-myeon, Buyeo-gun, Chungcheongnam-do, Korea, was screened onto xylan agar congo-red plate by the xylanolysis method and was used to produce an xylanase in shaker buffle flask cultures containing oat spelt xylans. The phylogenetic analysis using 16S rRNA gene sequence data showed that the strain AB-55 had the highest homology (99.0%) with Bacillus subtilis and it was named as Bacillus subtilis AB-55. A xylanase was purified by ammonium sulfate precipitation (50~80%), gel filtration on sephacryl S-300, and ion exchange chromatography on DEAE sepharose FF. The molecular weight of the xylanase was estimated as 44 kDa by SDS-PAGE. Optimal pH and temperature for the xylanase activity was pH 7 and $50^{\circ}C$, respectively. N-terminal amino acid sequence of the enzyme was identified as Ser-Ala-Val-Lys-His-Gly-Ala-Ile-Val-Phe. The substrate specificity of the enzyme exhibited that it hydrolyzed efficiently oat spelt xylan as well as beechwood xylan, but showed no activity against Avicel and carboxymethyl clellulose (CMC). The enzyme activity was enhanced by $Fe^{2+}$ and $Mn^{2+}$ whereas was entirely inhibited by $Hg^+$.
Xylanase from Bacillus sp. GS was purified through acetone precipitation, DEAE-Sephadex A-50 ion exchange chromatography and Sephadex G-100 gel filtration. The optimum reaction temperature of purified xylanase was 50t . Its optimum pH was between pH 6.0 and pH 6.5. This enzyme was stable below 5$0^{\circ}C$ for several hours and stable at between pH 5.5 and pH 8.0. The enzyme activity of xylanase was remarkably increased by Co++ and Cu++ ions. According to the study of hydrolysis mode of this enzyme, it was turned out to be ends type xylanase that can produce xylooligosaccharides, known as bifidogenic factor, from xylan.
A bacterial strain capable of hydrolyzing xylan and locust bean gum (LBG) was isolated from farm soil by enrichment culture using mixture of palm kernel meal (PKM) and wheat bran as carbon source. Nucleotide sequence of 16S rDNA amplified from the isolate YB-1107 showed high similarity with those of genus Cellulosimicrobium strains. Xylanase productivity was increased when the Cellulosimicrobium sp. YB-1107 was grown in the presence of wheat bran or oat spelt xylan, while mannanase productivity was increased drastically when grown in the presence of PKM or LBG. Particularly, maximum mannanase and xylanase activities were obtained in the culture filtrate of media containing 0.7% PKM or 1% wheat bran, respectively. Both enzyme activities were produced at stationary growth phase. Mannanase from the culture filtrate showed the highest activity at $55^{\circ}C$ and pH 6.5. Xylanase activity was optimal at $65^{\circ}C$ and pH 5.5. The predominant products resulting from the mannanase or xylanase hydrolysis were oligosaccharides for LBG or xylan, respectively. In addition, the enzymes could hydrolyze wheat bran and rice bran into oligosaccharides.
Xylanase plays important roles in a broad range of industrial production as a biocatalyst, and its applications commonly require immobilization on supports to enhance its stability. Aluminum hydroxide, a carrier material with high surface area, has the advantages of simple and low-cost preparation and resistance to biodegradation, and can be potentially used as a proper support for xylanase immobilization. In this work, xylanase from Thermomyces lanuginosus was immobilized on two types of aluminum hydroxide particles (gibbsite and amorphous Al(OH)3) through adsorption, and the properties of the adsorbed enzymes were studied. Both particles had considerable adsorptive capacity and affinity for xylanase. Xylanase retained 75% and 64% of the original catalytic activities after adsorption to gibbsite and amorphous Al(OH)3. Both the adsorptions improved pH and thermal stability, lowered activation energy, and extended lifespan of the immobilized enzyme, as compared with the free enzyme. Xylanase adsorbed on gibbsite and amorphous Al(OH)3 retained 71% and 64% of its initial activity, respectively, after being recycled five times. These results indicated that aluminum hydroxides served as good supports for xylanase immobilization. Therefore, the adsorption of xylanase on aluminum hydroxide particles has promising potential for practical production.
Xylanase(1, 4-beta-D-xylan xylanohydrolase` EC 3.2.1.8) II was purified from Penicillium verruculosum by using the techniques of two anion exchange chromatographies, and gel filtration. The molecular weight of this enzyme was about 22, 000 as determined by SDS-electrophoresis. The enzyme showed hydropytic activity toward xylan but did not catalyze hydrolysis of Rho-nitrophenyl-beta-D-xylopyranoside, Rho-nitrophenyl-beta-D-glucopyranoside, Rho-nitrophenyl-beta-D-cellobiopyranoside, and celluloses such as Avicel, cotton, filter paper, carboxymethylcellulose.
This study was conducted to isolate the cellulolytic bacteria able to grow on LB- Carboxymethyl cellulose (CMC) agar trypan blue medium from the mixed forest and Larix leptolepis stands. Three bacterial strains with high activity against both CMC and xylan were isolated. Both API kit test and 16S rRNA gene sequence analysis revealed that the three different isolates belong to the gene Bacillus. Therefore, the isolates named as Bacillus sp. EFL1, Bacillus sp. EFL2, and Bacillus sp. EFP3. The optimum growth temperature of Bacillus sp. EFL1, EFL2, and EFP3 were $37^{\circ}C$. The optimum temperature for CMCase and xylanase from Bacillus sp. EFL1 were $50^{\circ}C$. The optimum pH of Bacillus sp. EFL1 xylanase was pH 5.0 but the optimum pH of CMCase from Bacillus sp. EFL1 was pH 6.0. The optimum temperature of CMCase and xylanase from Bacillus sp. EFL2 was $60^{\circ}C$, respectively. The optimum pH of CMCase of Bacillus sp. EFL2 was 5.0, whereas xylanase showed high activity at pH 3.0-9.0. The optimum temperature for CMCase and xylanase of Bacillus sp. EFP3 was $50^{\circ}C$. The optimum pH for CMCase and xylanse was 5.0 and 4.0, respectively. CMCases from Bacillus sp. EFL1, EFL2, and EFP3 were thermally unstable. Although xylanase from Bacillus sp. EFL1 and EFP3 showed to be thermally unstable, xylanase from Bacillus sp. EFL2 showed to be thermally stable. Therefore, Bacillus sp. EFL2 has great potential for animal feed, biofuels, and food industry applications.
The annual decomposition of cellulose and hemicellulose by microorganism and distribution of soil microbial flora were investigated in the humus horizon of a Pinus rigida stand in Mt. Kwanak. The cellulase activity was the lowest, 142$\mu$g glucose/g/hr from Dec. 1985 to Mar. 1986 and the highest, 760~1, 072$\mu$g glucose/g/hr in Jul. and Aug. 1985. The xylanase activity was 47% higher than the cellulase activity and was the lowest, 211~275$\mu$g xylose /g/hr from Feb. to Mar. 1986 and the highest as 799~1, 322$\mu$g xylose/g/hr from Jun. to Aug. 1986. The vertical distribution of the enzyme activity was decreased with the order of F, H, L, and A1 in both enzymes and the activities were exponentially decreased below L horizon, which suggests that most decomposition be done in F and H horizons with lots of organic matters. The SEM study slowed that the main decomposers of litters were fungi and initial attack into litters was also made by them. The enzyme activities of soil had strong correlations with the temperature and the precipitation. The correlation coefficients were 0.813 and 0.886 in the cellulase, and 0.673 and 0.626 in the xylanase for the temperature and the precipitation, respectively.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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