An efficient, rapid and large-scale in vitro clonal propagation of agronomically important Indian cereal crop genotypes (NSH27 & K5) of Sorghum bicolor (L.) Moench. by enhanced shoot proliferation in shoot tip segments was designed. MS medium fortified with plant growth regulators and coconut water markedly influenced in vitro propagation of Sorghum bicolor. In vitro plantlet production system has been investigated on Murashige and Skoog (MS) medium with the synergistic combination of 6-benzyladenine ($22.2\;{\mu}M$), kinetin ($4.6\;{\mu}M$), adenine sulphate ($2.8\;{\mu}M$), 5% coconut water and 3% sucrose which promoted the maximum number of shoots as well as beneficial shoot length. Subculturing of shoot tip segments on a similar medium enabled continuous production of more than 100 healthy shoots with similar frequency. When the healthy shoot clumps were cultured on MS medium fortified with 6-benzyladenine ($22.2\;{\mu}M$), kinetin ($4.6\;{\mu}M$), adenine sulphate ($2.8\;{\mu}M$), ${\alpha}$-naphthaleneacetic acid ($2.7\;{\mu}M$), ascorbic acid ($30.0\;{\mu}M$) and 5% coconut water, a rapid production of axillary and adventitious buds was developed after 8 wk culture. More than 300 shoots were produced 10 wk after culture. Rooting was highest (100%) on half strength MS medium containing 22.8 mM IAA. Micropropagated plants established in garden soil, farmyard soil and sand (2:1:1) were uniform and identical to the donor plant with respect to growth characteristics. These plants grew normally without showing any traits.
This study was carried out to reveal optimum conditions for in vitro propagation of 3 Korean native azalea species, Rhododendron mucronulatum, R. yedonese var. poukhanense, and R. shlippenbachii, which are useful for landscape proposes. Seeds and meristems from three azalea species were cultured on 1/2MS, Hyponex, and Anderson media containing growth of regulators benzyladenine(BA) and 2-isopentenyadenosine(2ip). The results were as follows. 1. In the culture of R. schlippenbachii and R. mucronulatum seeds, in vitro seedlings germinated and grew well on he 1/2MS and Anderson media, while R. yedoense var. poukhanense on Hyponex media containing 6.0mg/$\ell$ 2ip. 2. When the meristems of R. mucronulatum were cultured on Andeson media containing 9.0mg/$\ell$ 2ip, the survival rate of meristems was 23.0% in 6 weeks after culture, and the survival rate of R. schlippenbachii was 46.0% o nthe same media containing 12.0mg/$\ell$ 2ip. The survial rate of R. yedoense var. poukhanense was 92.0% onHyponex media containing 0.5mg/$\ell$ BA and 9.0mg/$\ell$ 2ip. When the meristems of R. mucronulatum and R. yedoense var. poukhanense were cultured on Hyponex media containing 12.0mg/$\ell$ 2ip, they showed the most excellent growth. R. schlippenbachii grew well on Anderson media containing 9.0mg/$\ell$ 2ip. When in vitro shoots of R. yedoense var. poukhanense were subcultured to solid medium, they grew well in shoot growth on Hyponex media containing 6.0mg/$\ell$ 2ip.
To establish direct multipropagation through organogenesis from nodal explants of Anoectochilus formosanus Hayata, the nodes were cultured on LS medium containing various concentrations of 6-benzyladenine(BA). High plant regeneration and adventitious bud formation were obtained from supplemented with 4.0mg/l of BA. Plant height was promoted by adding 0.3% activated charcoal. Plantlet regeneration capacity from nodes was depended on nodal parts on the stem, upper position was the best comparing with intermediate and lower.
Sunflower (Helianthus annuus L.) protoplasts were isolated from seven-day-old etiolated hypocotyls of 10 A line and four-week-old fully expanded young leaves of PI 441983 line in vitro seedlings using an enzymatic method. Purified protoplasts were collected by filtration and floatation in sucrose solution. Semi-solid protoplast culture was performed using the L4 regeneration protocol with various culture media and plating densities to achieve the highest efficiencies for protoplast culture of hypocotyl and mesophyll protoplasts of 10 A and PI 441983 lines, respectively. The concentrations in liquid L'4M medium and different plating densities were evaluated in two types of cytokinins, the adenine-type 6-benzyladenine (BA) and the phenylurea-type thidiazuron (TDZ). The highest colony formation was achieved in both sunflower lines when 0.5 mgL-1 BA and 0.5 mgL-1 TDZ were applied with a high plating density (3 × 105 protoplasts mL-1). These conditions led to 38.45% and 39.40% colony formation for hypocotyl protoplasts of the 10 A line and mesophyll protoplasts of the PI 441983 line, respectively. Moreover, many hypocotyl protoplast-derived colonies developed into micro-calli. In addition, superior development of both sunflower protoplasts was observed with all plating densities when BA was used in combination with TDZ. This finding will be applicable to future sunflower hybrid production via somatic hybridization.
포인세티아식물체의 줄기조직을 이용한 재분화조건을 확립하였다. MS배지에 종류 및 농도별 식물성장 조절제를 첨가하여 포인세티아의 잎, 줄기, 엽병조직으로부터의 배구조의 발생을 조사하였다. 잎과 엽병조직에서는 callus의 형성은 실험조건에서 매우 활발하였으나 배구조로의 발달은 전혀 이루어지지 않았다. 줄기조직의 경우에서는 1.5 mg/L의 BA가 첨가되는 경우 6-8주 정도의 경과 후 엽초의 발생이 관찰되었다. 이들을 식물생장조절제를 무첨가한 MS고체배지로 이동시 뿌리의 발달이 관찰되었다.
A method for plant regeneration via organogenesis from Pelagonium inquinans leaf disc has been developed. Mature leaf explants were collected from field-grown plants and used for the induction of adventitious shoot regeneration on Murashige and Skoog (MS) medium supplemented with 3% (w/v) sucrose plus plant growth regulators. Maximum shoot organogenesis, with $11.8{\pm}1.5$ shoots (98.6%) per leaf disc, was obtained with $2\;mg/l$$N^6-benzyladenine$ (BA) and $0.5\;mg/l$${\alpha}-naphthyleneacetic$ acid (NAA) in 30 days. For rooting, the in vitro proliferated and elongated shoots were excised into 1.5-2 cm in length microcutting, which were plated individually on an half-strength MS (1/2MS) medium supplemented with 2% (w/v) sucrose plus various concentrations of indole-3-butyric acid (IBA). Shoots rooted with a frequency of 100% following culture on 1/2MS medium containing $0.5\;mg/l$ IBA.
Embryogenic callus (EC) was created from mature embryos of Larix kaempferi. With the mature embryos, keeping the culture in dark conditions throughout the experiment (38.2%) seemed to give better results than exposing them to 16 h light ($25{\mu}Em^{-2}s^{-1}$) for the first week (21.9%). EC was obtained most frequently from Quoirin and Lepoivre (LP) mediums with 1.0 mg/L 4-amino-3,5,6-trichloropicolinic acid (Picloram), plus 1.0 mg/L benzyladenine (BA) (62.8%) or Litvay's medium (LM) containing 1.0 mg/L p-chlorophenoxyacetic acid (pCPA) plus 1.0 mg/L BA (62.8%) treatment. In both cases, best results were obtained when zygotic embryos were cultured in darkness. As for the effective sucrose concentration on initiation of EC, 29.2 mM sucrose (38.6%) gave the best results.
Bae, Kee Hwa;Lee, Mi Hyun;Choi, Yong Eui;Yoon, Eui Soo
Journal of Plant Biotechnology
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제41권1호
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pp.33-37
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2014
Lychnis wilfordii (Regel) Maxim is a rare and valued ornamental plant. Germination rate reached 46.6% when seeds were treated with $100mg{\cdot}l^{-1}$ GA (Gibberellic acid). The highest callus induction was observed in the leaf explants of the seedlings on MS medium containing specific concentrations of $0.5mg{\cdot}l^{-1}$ BA ($N^6$-benzyladenine) and $3.0mg{\cdot}l^{-1}$ NAA (a-naphthalene acetic acid). The adventitious shoot was formed in 97.3% of calli on 1/2 WPM (Woody Plant Medium) medium. Shoot elongation of in vitro propagated plantlets was no difference among various medium. The plantlets grew well after transferring to the pot. This in vitro propagation protocol should be useful for conservation of this endangered plant.
The main objective of this study was to identify the most appropriate condition for root formation of in vitro micropropagated pear (Pyrus spp.) plants. In vitro propagation was induced on Murashige and Skoog (MS) medium with 2.0 mg/L of N6-benzyladenine (BA) and 0.2 mg/L of Indole-3-butyric acid (IBA) medium. The short pre-treatment of explants with a high concentration (1 mg/L) of NAA and IBA (R0 medium) in dark for three days, followed by transfer to five different media (R1 to R5) resulted in good rooting responses in the pear 'Oharabani (P. pyrifolia × P. communis)' genotype. For the rooting experiments, the highest rooting percentage (83.3 ± 8.3%), average root length (3.6 ± 1.9 mm), total root number (31 ± 4.0), and average root number per plant (2.6 ± 2.1) were obtained on half strength (1/2) of MS medium supplemented with 30 g/L sucrose without hormones and activated charcoal (AC) (R1 medium). The highest rooting percentage was obtained at 83.3% from explants on R1 and R3 media. The rooting procedure described in this study resulted in good root formation and significantly shorting the root induction time to within 14 days of culture. Further studies are underway to test the suitability of the protocol developed in this study for other pear genotypes.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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