Environmental conditions during early mammalian embryo development are critical and some adaptational phenomena are observed. However, the mechanisms underlying them remain largely masked. Previously, we reported that AQP5 expression is modified by the environmental condition without losing the developmental potency. In this study, AQP11 was examined instead. To compare expression pattern between in vivo and in vitro, we conducted quantitative RT-PCR and analyzed localization of the AQP11 by whole mount immunofluorescence. When the fertilized embryos were developed in the maternal tracts, the level of Aqp11 transcripts was decreased dramatically until 2-cell stage. Its level increased after 2-cell stage and peaked at 4-cell stage, but decreased again dramatically until morula stage. Its transcript level increased again at blastocyst stage. In contrast, the levels of Aqp11 transcript in embryos cultured in vitro were as follows. The patterns of expression were similar but the overall levels were low compared with those of embryos grown in the maternal tracts. AQP11 proteins were localized in submembrane cytoplasm of embryos collected from maternal reproductive tracts. The immune-reactive signals were detected in both trophectoderm and inner cell mass. However, its localization was altered in in vitro culture condition. It was localized mainly in the plasma membrane of the blastocysts contacting with external environment. The present study suggests that early stage embryo can develop successfully by themselves adapting to their environmental condition through modulation of the expression level and localization of specific genes like AQP11.
Objective: In vitro culture of preimplantation embryos is improved by grouping embryos together in a drop of media. Individually cultured embryos are deprived of paracrine factors; with this in mind, we investigated whether the addition of a single embryo-secreted factor, interleukin-6 (IL-6), could improve the development of individually cultured embryos. Methods: Mouse embryos were cultured individually in $2{\mu}L$ of G1/G2 media in 5% oxygen and supplemented with a range of doses of recombinant mouse or human IL-6. Results: Mouse IL-6 increased hatching at doses of 0.01 and 10 ng/mL compared to the control (93% and 93% vs. 78%, p< 0.05) and increased the total number of cells at a dose of 0.1 ng/mL compared to the control ($101.95{\pm}3.36$ vs. $91.31{\pm}3.33$, p< 0.05). In contrast, the highest dose of 100 ng/mL reduced the total number of cells ($79.86{\pm}3.29$, p< 0.05). Supplementation with human IL-6 had a different effect, with no change in hatching or total cell numbers, but an increase in the percentage of inner cell mass per embryo at doses of 0.1, 1, and 100 ng/mL compared to the control ($22.9%{\pm}1.1%$, $23.3%{\pm}1.1%$, and $23.1%{\pm}1.1%$ vs. $19.5%{\pm}1.0%$, p< 0.05). Conclusion: These data show that IL-6 improved mouse embryo development when cultured individually in complex media; however, an excess of IL-6 may be detrimental. Additionally, these data indicate that there is some cross-species benefit of human IL-6 for mouse embryos, but possibly through a different mechanism than for mouse IL-6.
Successful embryonic development is dependant on temporal and stage-specific expression of appropriate genes. However, information on specific gene expression during early cleavage before zygotic gene activation (ZGA) is lacking. In the present study, we compared gene expression between porcine parthenotes 2-cell and blastocyst embryos to identify the genes that are specifically or prominently expressed by employing annealing control primers (ACP)-based Gene Fishing RCR. (omitted)
The development potential of bovine somatic cells was evaluated using nuclear transfer. A single donor cell derived from fetus of HanWoo(Korean Native Cattle) was selected and deposited into perivitelline space of each enucleated oocyte before electrical fusion and activation. Nuclei of donor cells starved for 7 days (37%) tended to support the development of reconstitute embryo the blastocyst stage better than those of donor cells starved 3, 14 and 30 days. The cleavage rate was significantly lower(P<0.05) in reconstitute embryos derived from large size donor cells(51.2%), than those from small medium size donor cells(76.6 and 73.5, respectively). The developmental rate to blastocyst of reconstructed embryos from medium size donor cells was higher than those from small and medium size donor cells. This study demonstrates that an appropriate culture period for induction into quiescent stage and the size of donor cells effect on the efficiency of nuclear transfer using cultured bovine cells.
Park, Bola;Lee, Joohyeong;Lee, Yongjin;Elahi, Fazle;Jeon, Yubyeol;Hyun, Sang-Hwan;Lee, Eunsong
Journal of Embryo Transfer
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v.28
no.2
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pp.133-139
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2013
The objective of this study was to determine the effect of post-activation treatment with cytoskeletal regulators in combination with or without 6-dimethylaminopurine (DMAP) on embryonic development of pig oocytes after parthenogenesis (PA) and somatic cell nuclear transfer (SCNT). PA and SCNT oocytes were produced by using in vitro-matured pig oocytes and treated for 4 h after electric activation with $0.5{\mu}M$ latrunculin A (LA), $10.4{\mu}M$ cytochalasins B (CB), and $4.9{\mu}M$ cytochalasins D (CD) together with none or 2 mM DMAP. Post-activation treatment of PA oocytes with LA, CB, and CD did not alter embryo cleavage (85.8~88.6%), blastocyst formation (30.7~ 32.4%), and mean cell number of blastocysts (33.5~33.8 cells/blastocyst). When PA oocytes were treated with LA, CB, and CD in combination with DMAP, blastocyst formation was significantly (P<0.05) improved by CB+DMAP (42.5%) compared to LA+DMAP (28.0%) and CD+DMAP (25.1%), but no significant differences were found in embryo cleavage (77.5~78.0%) and mean blastocyst cell number (33.6~35.0 cells) among the three groups. In SCNT, blastocyst formation was significantly (P<0.05) increased by post-activation treatment with LA+DMAP (32.9%) and CD+DMAP (35.0%) compared to CB+DMAP (22.0%) while embryo cleavage (85.5~85.7%) and blastocyst cell number (41.1~43.8 cells) were not influenced. All three treatments (LA, CB, and CD with DMAP) effectively inhibited pseudo-polar body extrusion in SCNT oocytes. The proportions of oocytes showing single pronucleus formation were 89.6%, 83.9%, and 93.3%, respectively with the increased tendency (P<0.1) by LA+DMAP and CD+ DMAP compared to CB+DMAP. Our results demonstrate that post-activation treatment with LA or CD in combination with DMAP improves pre-implantation development of SCNT embryos and the stimulating effect of cytoskeletal modifiers on embryonic development is differentially shown depending on the origin (PA or SCNT) of embryos in pigs.
Present studies were conducted to investigate the developmental stage and the location of embryos in the reproductive tract at various times after ovulation, the morphologically normal after thawing of embryos preserved in liquid nitrogen, and the survival after transferring frozen-thawed embryos. The results obtained were as follows: 1. Embryo stage and location in the reproductive tract after hCG administration. For the investigation of embryo stage and location in the reproductive tract after ovulation, rabbits were laparotomized at 24, 40, 48, 72 and 120 hrs post hCG injection, simultaneously with mating. the oviducts and uteri were flushed out with PBS medium containing 50% rabbit serum, respectively. 1) Most of embryos was remained in the oviduct within 48 hrs, with the lapse of time, embryos were started to move to uterus and shifted in uterus at 72 hrs after hCG injection. 2) The representatives of embryos stage collected at 24, 40, 48, 72 and 120 hrs were 1-cell(60.4%), 8-cell to early morula (52.3, 39.3%), late blastocyst (95.5%) stages, respectively. 2. Morphological normality and survival of the frozen-thawed embryos. For the evalution of the quality and viability on the frozen-thawed embryos, immediately after thawing, embryos were assessed by morphologically normal under a dissecting microscope, and a further test of frozen-thawed embryos was made by transferring the morphologically normal embryos to the uteri of recipient rabbit induced pseudopregnancy by the injection of hCG at the time of hCG injection in donor rabbits. 1) The propotions of embryos which a, pp.ared morphologically normal was higher when 8-cell (85.7%) and morula(90.5%) were used for freezing than when 4-cell (66.7%) and blastocyst (75.8%) were used. 2) Preganacies were observed at Day 15 after transfer of frozen-thawed 8-cell (7/13), morula (19/42) and blastocyst (3/19) but not after transfer of embryos at 4-cell stage.
Yang, Kwan-Cheal;Kang, Hee-Gyoo;Lee, Hoi-Chang;Lee, Hyang-Heun;Ko, Duck-Sung;Yang, Hyun-Won;Park, Won-Il;Park, Eun-Joo;Kim, S. Samuel
Clinical and Experimental Reproductive Medicine
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v.31
no.1
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pp.59-65
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2004
Objectives: The aim of this study was to assess toxicities of cryoprotectants. Methods: Toxicities of two cryoprotectants, dimethyl sulfoxide (DMSO) and 1, 2-propanediol (PROH), were investigated using a murine embryo model. Female F-1 mice were stimulated with gonadotropin, induced ovulation with hCG and mated. Two cell embryos were collected and cultured after exposure to either DMSO or PROH. Embryo development was evaluated up to the blastocyst stage. Blastocysts were stained with bis-benzimide to evaluate the cell count and with terminal deoxynucleotidyl transferase mediated dUTP nick labeling (TUNEL) to assess apoptosis. Results: The total cell count of blastocysts that were treated with DMSO at the 2-cell stage was significantly lower than that were treated with PROH ($75.9{\pm}27.0$) or the control ($99.0{\pm}18.3$) (p<0.001). On comparison of two cryoprotectant treated groups, the DMSO treated group showed a decreased cell count compared with the PROH treated group (p<0.05). Both DMSO ($14.2{\pm}1.5$) and PROH ($11.2{\pm}1.4$) treated groups showed higher apoptosis rates of cells in the blastocyst compared with the control ($6.2{\pm}0.9$, p<0.0001). In addition, the DMSO treated group showed more apoptotic cells than the PROH treated group (p<0.001). Conclusions: The potential toxicity of cryoprotectants was uncovered by prolonged exposure of murine embryos to either DMSO or PROH at room temperature. When comparing two cryoprotective agents, PROH appeared to be less toxic than DMSO at least in a murine embryo model.
This experiment was arried out to investigate the development of ea4y rabbit embryos in vivo. Twenty-six New Zealand White does were superovulated by treatment with PMSG(Intervet Co; I. M single injection, 150. U./rabbit) followed 3 day later by simultaneous I.V injection of 100 I.U HCG (Intervet Co, )and natural service with fertile male. All of does was killed at the specific times (24, 27, 30, 36, 42, 50 and 93 h post-hCG) to find out the early embryonic development in vivo respectively. Embryos at the specified stages of development were obtained at the following times after injection of hCG; one-ceH at 24 h, two-cell at 24~27h, four-cell at 27~36 h, morulae at 50 h and early blasto-cyst at 93 h and expanded or hatching blastocyst at 144 h. Number of embryos recovered per rabbit superovulated was 26.1 and average of recovery rate was 83.7%. The results suggest that superovulation was efficient for the increase of embryo number in rabbits, and as shown in results, asynchronous cleavage was prevalent among the recovered embryos.
Porcine follicular oocytes matured in culture were inseminated with frozen-thawed spermatozoa. When the oocytes were inseminated in the medium with oviductal epithelial cell monolayer, the penetration rates higher in those with (4.1, 31.7, 45.1, 54.5 and 69.4%) than without cells (0, 17.1, 34.8, 45.2 and 58.9%) at 4, 8, 12, 16 and 20 h after insemination. The proportions of polyspermy in penetrated oocytes in medium with or without cells increased with time of examine. In another experiment, the penetration rate was higher without (57.6%) than with (19.6~24.1%) preincubation of spermatozoa for 1~4 h in medium. However, when the oocytes were inseminated with spermatozoa preincubated for 1~2 h, the penetration rates significantly higher (P<0.05) in those with (65.6 and 55.9% for 1 and 2 h) than without (24.1 and 20.6% for 1 and 2 h) oviductal epithelial cell monolayer. On the other hand, the proportions of polyspermy decreased with time of spermatozoa preincubation. These results indicate the significant advantages of the spermatozoa preincubation with oviductal epithelial cell monolayer for 1 and 2 h to maintain penetration potential during in vitro fertilization in the porcine.
This study was performed to establish the condition and the methods for the techniques of insertion the isolated blastomere cells into cytoplasm, in order to research the develop-mental ability of bovine embryo blastomere cells in vitro produced. After 24h in vitro ovary maturation with the ovaries from a slaughter house, in vitro fertilization was performed to the vital sperms which their mobility were decided by percoll gradient method, with 2~8 cell stage embryos, the blastomeres were isolated in $Ca^2$+. $Mg^2$+-free PBS, and following that embedded into agar and alginate solution, respectively. The rates of in vitro develop-ment are as follows ; in agar embedded 11 among 120(9.2%) 1 /2~1 /3 blastomers cleaved and 6 among 93(6.5%) 1 /4~1 /8 blastomeres cleaved. In sodium alginate-embedded 14 among 84(16.7%) 1 /2~1 /3 blastomeres cleaved and 6 among 85(7.1%) 1 /4~1 /8 blastomeres cleaved. In case of Na-alginate, the rate of the cells were better than those of agar. The results suggest that the techniques for embeeding the isolated blastomeres into gel may help cloning of bovine early embryo without nuclear transplantation.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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