Park, In-Cheol;Kim, Gwang-Su;Park, Myeong-Jin;Lee, Seung-Hun;Hong, Seok-Il;Choe, Tae-Bu
KSBB Journal
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v.14
no.4
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pp.460-464
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1999
Methicillin-resistant Staphyloccus aureus (MRSA) has been known to be resistant to many kinds of antibiotics and causes a problem of nosnocomial infection since the third generation of cephalosporines has been introduced in the 1980s. As antibiotic sensitivity tests which have been routinely used to detect MRSA in the laboratory depend on the culture conditions such as, pH, temperature, and time, etc., it is difficult to decide in the case of borderline- or low-level of MRSA. Therefore it would be necessary to develope a new method based on the molecular biological technique to overcome these problems. In this study, we extracted DNA from S. aureus and performed polymerase chain reaction (PCR) to amplify mec A gene, encoding penicillin-binding protein 2' (PBP-2'), which is known to confer bacteria resistance to the bacteriostatic action of methicillin. The results were compares with those of minimal inhibitory concentration (MIC) test. When MIC test with oxacillin was performed on the 120 isolates of S. aureus from each patient's specimens, 64 of them were MRSA and 56 of them were methicillin-sensitive Staphylococcus aureus (MSSA). In pus specimen, more precisely, 61.9% (26/42) of MRSA was detected, and 44.2% (19/43), 60% (9/15) and 50% (10/20) of MRSA were detected in sputum, body fluid, and other specimen respectively. When 40 isolates of MRSA and MSSA were tested by PCR method and compares with the results of MIC method, different results were obtained from 1 isolate of MRSA (2.5%) and in 2 isolates of MSSA (5%) suggesting that PCR method should be performed at the same time for more accurate clinical test of MRSA.
Recently, the rapid increase and global spread of extended-spectrum $\beta-lactamase$ producing clinical isolates has become a serious problem. The incidence of extended-spectrum $\beta-lactamase$ producing clinical isolates of Escherichia coli in Korea and susceptibility to antimicrobial agents were investigated. Total 233 isolates of E. coli were obtained from urine from hospitalized patients in Guro hospital, Korea University in 2001. One hundred and eighty four isolates $(78.9\%)$ were resistant to ampicillin, 80 isolates $(34.3\%)$ were resistant to cephalothin, 93 isolates $(39.9\%)$ were resistant to gentamicin, and 64 isolates $(27.5\%)$ were resistant to norfloxacin. Among 233 isolates, 17 isolates $(7.3\%)$ were positive as determined by the double disk synergy test. When minimal inhibitory concentrations were assayed with additional 6 antimicrobial agents, 13 isolates $(76.5\%)$ were multi-drug resistant to at least four different class antimicrobial agents. Extended-spectrum $\beta-lactamase$ were characterized with isoelectric focusing gel electrophoresis and DNA sequencing. They were TEM-1 in 5 isolates, TEM-15 in 1 isolate, TEM-20 in 1 isolate, TEM-52 in 4 isolates, TEM-1 and AmpC in 2 isolates, TEM-1 and OXA-30 in 1 isolate, TEM-1 and OXA-33 in 1 isolate, TEM-1, CTX-M-3, and AmpC in 1 isolate, but SHV was not detected. Antimicrobial resistance genes were transferred to animal isolate of E. coli (CCARM No. 1203) by the filter mating method. Extended spectrum $\beta-lactamase$ producers studied in the current study have low correlation to each other as determined by random amplified polymorphic DNA and pulsed field gel electrophoresis. This is a contradictory result from the general hypothesis that extended-spectrum $\beta-lactamase$ producers in one hospital is a result from a clonal spread.
ERM proteins transfer the methyl group to $A_{2058}$ in 23S rRNA to confer the resistance to MLS (macrolide-lincosamide-streptogramin B) antibiotics on microorganism ranging from antibiotic producers to pathogens. To define the functional role of peptide segment encompassing amino acid residues 1 to 25 in NTER (N-terminal end region) of ErmSF, one of the ERM proteins, DNA fragment encoding mutant protein deprived of that peptide was cloned and overexpressed in E. coli to obtain a purified soluble form protein to the apparent homogeneity in the yield of 12.65 mg per liter of culture. The in vitro activity of mutant protein was found to be 85% compared to wild type ErmSF, suggesting that this peptide interact with substrate to affect the enzyme activity. This diminished activity of mutant protein caused the delayed expression of antibiotic resistance in vivo, that at fIrst cells expressing mutant protein showed the retarded growth due to the antibiotic action but with time cells inhibited by antibiotic gradually recovered the viability to exert the resistance to the same extent as those with wild type protein.
Kim, Youngju;Ko, Seyoung;Yeon, Young Eun;Lim, Jaewon;Han, Beom Ku;Kim, Hyunil;Ahn, Jeong Keun;Kim, Donghyuk
Korean Journal of Microbiology
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v.54
no.1
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pp.79-80
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2018
Citrobacter freundii is a facultative anaerobic and a Gram-negative bacterium of Enterobacteriaceae family, and is an opportunistic pathogen. Bacteriophages infecting C. freundii can be an effective treatment for C. freundii infections. Here, the complete genomic sequence is announced for a lytic bacteriophage CF1 infecting C. freundii isolates.
ln order to develop yeast cells that produce a bacteriocin on their cell surfaces, the 114 bp Leucocin A gene with stop codon was ligated into pYDl, an yeast vector. The recombinant DNA, pYDl-LeucoA was used to transform yeast (Saccharomyces cerevisiae) cells. Yeast cells harboring pYDl-LeucoA showed antibacterial activity against Bacillus subtilis. To confirm these bacteriocidal yeast cells possess the Leucocin A gone, PCR was performed with plasmid prepared from transformed yeast cells as a template and two Leucocin A-specific primers. In this study, bacteriocidal yeast cells that can be used as an antibiotic or a food preservative were developed.
Streptococcus sp. strain NM belonging to Firmicutes was isolated from head and neck cancer patients. Here, we report the draft genome sequence of strain NM with a size of approximately 1.90 Mbp and a mean G+C content of 39.3%. The draft genome included 1,845 coding sequences, and 12 ribosomal RNA and 58 transfer RNA genes. In the draft genome, genes involved in the antimicrobial resistance, hemolysis and defense system have been identified.
The enterotoxin production and antimicrobial susceptibility on hemolytic strains from stools of diarrheal pigs was investigated in this study. Through morphological observation, gyrB nucleotide sequence, and API kit analysis, the selected potential pathogenic strain BY06 was identified as Bacillus cereus. Because the characteristic of enterotoxin symptoms were widely caused by Bacillus cereus strains, a PCR test was carried out in order to check the enterotoxin genes (hblA) in this strain. According to the results, this strain was an enterotoxin positive strain containing the hblA gene. The minimum inhibitory concentrations of 10 different antimicrobial agents were screened by the agar dilution test, indicating that this strain was resistant to penicillin G and intermediate to erythromycin; however, it susceptible to cephalothin, vancomycin, clindamycin, fusidic acid, gentamicin, ciprofloxacin, tetracycline and rifampin. These results suggest that the B. cereus BY06 isolated from pig feces has a potential risk of producing enterotoxin and is resistant to penicillin G, but susceptible to various antimicrobial agents.
Campylobacter jejuni is one of important food-borne pathogens causing human gastroenteritis. We isolated 42 strains of C. jejuni from diarrhea patients and 4 food-poisoning outbreaks in 2010, Gyeonggi-do. In this study, 42 strains were tested for genetic characteristics, the serotype distribution and antimicrobial resistant rate. The presence of hipO (100%), cdtB (100%), and mutated gyrA (95.2%) genes was detected in C. jejuni by polymerase chain reaction (PCR). Detection of mutated gyrA gene correlated with ciprofloxacin resistance. Forty isolates had mutated gyrA gene and were actually resistant to ciprofloxacin. Furthermore, comparing the gyrA DNA sequence data, ciprofloxacin-resistant isolates had a mutation of the DNA sequence from ACA (threonine) to ATA (isoleucine). But 41 strains (97.6%) of patient isolates were susceptible to erythromycin and azithromycin. A total of 35.7% among 42 C. jejuni isolates were identified into 4 different serotypes. The serotype distribution of C. jejuni strains were shown to be HS2(B), HS3(C), HS4(D), HS19(O). To investigate the genotypes of C. jejuni isolated in Gyeonggi province, repetitive sequence polymerase chain reaction (rep-PCR) analysis and SmaI-digested pulsed-filed gel electrophoresis (PFGE) profile analysis were performed. From the PFGE analysis of 42 C. jejuni strains, 12 clusters of PFGE profile were obtained. On the other hand, 11 clusters of rep-PCR profile were obtained from 42 strains of C. jejuni.
The aim of this study was to survey susceptibilities of Escherichia coli and Klebsiella pneumoniae isolates against cefotaxime and to determine the prevalences of CTX-M type extended-spectrum $\beta$-lactamases (ESBLs) producing E. coli and K. pneumoniae in Korea. During the period of February to July, 2005, 153 E. coli and 52 K. neumoniae isolates were collected from 2 hospitals in Busan. Antimicrobial susceptibilities to cefotaxime were tested by the disk diffusion method. ESBL production of E. coli and K. pneumoniae was determined by the double disk synergy test. MICs of $\beta$-lactam antibiotics were determined by the agar dilution method. Blac$_{CTX-M}$ genes of the organism were detected by PCR. Among 153 isolates of E. coli and 52 isolates of K. neumoniae, 27 (17.6%) and 25 (48.0%) were intermediate or resistant to cefotaxime, respectively. Twenty-three (15.0%) isolates out of 153 E. coli and 13 (25.0%) out of 52 K. neumoniae isolates showed positive results for ESBL by the double disk synergy test. Twenty isolates out of 23 ESBL producing E. coli and 12 out of 13 ESBL producing K. neumoniae isolates harbored biacTx-M gene,11 of ESBL producing E. coli and 12 of ESBL producing K. neuinoniae isolates harbored bla$_{CTX-M}$ gene, 11 of the ESBL producing E. coli and 2 of ESBL producing K. neumoniae isolates harbored bla$_{TEM}$ gene, and 1 of the ESBL producing E. coli and 12 of ESBL producing K. neumoniae isolates harbored bla$_{SHV}$ gene. E. coli and K. neumoniae isolates producing CTX-M-type ESBLs were not uncommon in Korea. It is thought that continuous survey are necessary for inspecting the spread and novel variants of CTX-M-type ESBL genes. Further me]'e investigation and research on ESBL producing strains are needed in order to prevent the spread of resistant bacteria.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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