The clinical isolate Staphylococcus aureus SA2 had four kinds of plasmids and was resistant to ampicillin, chloramphenicol, clindamycin, erythromycin, gentamicin, kanamycin, methicillin, streptomycin, tetracycline and tobramycin. Transformation experiment demonstrated that 4.44 kb plasmid(pKH6) encoded resistance to tetracycline. The cleavage map of pKH6 was determined by restriction enzyme mapping techniques. The cleavage map is given for EcoRV, HindIII, HpaI, HpaII, KpnI and Xbal. Restriction endonucleases BamHl, BglI, BGIII, BstEII, EcoRI, HaellI, PstI, PvuII, SalI, Smal, and Xhol have no site on this plasmid. The restriction map revealed extensive structural homology between pKH6 and pT181.
Ti plasmids were isolated from three strains of Agrobacterium tumefaciens in Korea and their types and molecular weights were determined. All of these are octopine-type and their molecular weights are 44Kb (pTi 12), 180Kb (pTi 14) and 172Kb (pti 49), respectively. In order to construct physical map of pTi 12, pTi 12 was digested with restriction endonucleases Sma I and Hind III. Sma I degestion of pTi 12 produce 8 fragments and Hind III produced 10 fragments. Physical arrangements of these fragments was determined by Southern hybridization techniques.
Five independent Actinomycetes harboring plasmids were isolated from soil. Molecular weight of these plasmids was 55kb, 6.2kb, 4.4kb, 55kb and 7.0kb, respectively. Among them small and apprent high copy number plasmids, pJY501 of 4.4kb and pHY711 of 7.0kb, were selected. The plasmids purified by CsCl-EtBr density gradient centrifugation preserved the conformation of supercoiled covalently closed circular molecule, and an apparent copy number was estivated about 150 and about 35 per chromosome. The isolates carrying plasmids were assigned to the genus Streptomyces. For the purpose of introducing selection markers into the isolated plasmids, the tsr fragmemt of pIJ702 was inserted into the BclI site of pJY 501 and pJY711. And the recombinant plasmids constructed designated as pJY502 and pJY712 respectively.
The over-expression in E. coli of the pHLN1-SO(+) and pHLN2-80(-) plasmids cloned an insecticidal crystal protein (ICP) gene (crylAal type) from Bacillus thuringiensis var. kurstaki HD 1 was investigated through in part, the deletion of -80 bp promoter and an alternative change of cloning vector system. Two recombinant plasmids were constructed in an attempt to analyze the over-expression of the ICP in relations to its gene structure possessing only -14 bp [Shine-Dalgarno (SD) sequence of -80 bp promoter]. Also, anther two recombinant plasmids similarly cloned the icp gene in a different vector system. The amounts of ICP produced from the recombinants were measured by SDS-PAGE and confirmed by Western blot analysis. One clone, pHLRBS1-14 clone in which only the SD sequence in the inverted orientation icp gene appeared, was more evident than the pHLRBS2-14 clone in which only the -14 bp SD sequence of the right orientated icp gene was shown to exist. The pHLN2-80(-) clone produced more ICP proteins than the pHLRBS1-14 clone. In the two clones, pHLNUC1-80 right-oriented icp gene and the pHLNUC2-80 clone inverted-orientation icp gene in a new different vector, the pHLNUC2-80 produced more ICP proteins in E. coli system. These results indicate that the P/ac promoter, the inverted icp gene insertion and -80 bp promoter (-66 bp part of the icp gene promoters), were concerned with the expression of the icp gene in the recombinant plasmids. In addition, the expression mechanism might result from the disruption of the transcription-suppressing regions in the promoter regions.
Purpose: Hydrodynamic-based procedure is a simple and effective gene delivery method to lead a high gene expression in liver tissue. Non-invasive imaging reporter gene system has been used widely with herpes simplex virus type 1 thymidine kinase (HSV1-tk) and its various substrates. In the present study, we investigated to image the expression of HSV1-tk gene with 5-(2-iodovinyD-2'-deoxyuridine (IVDU) in mouse liver by the hydrodynamicbased procedure. Materials and Methods: HSV1-tk or enhanced green fluorescence protein (EGFP) encoded plasmid DNA was transferred into the mouse liver by hydrodynaminc injection. At 24 h post-injection, RT-PCR, biodistribution, fluorescence imaging, nuclear imaging and digital wholebody autoradiography (DWBA) were performed to confirm transferred gene expression. Results: In RT-PCR assay using mRNA from the mouse liver, specific bands of HSV1-tk and EGFP gene were observed in HSV1-tk and EGFP expressing plasmid injected mouse, respectively. Higher uptake of radiolabeled IVDU was exhibited in liver of HSV1-tk gene transferred mouse by biodistribution study. In fluorescence imaging, the liver showed specific fluorescence signal in EGFP gene transferred mouse. Gamma-camera image and DWBA results showed that radiolabeled IVDU was accumulated in the liver of HSV1-tk gene transferred mouse. Conclusion: In this study, hydrodynamic-based procedure was effective in liver-specific gene delivery and it could be quantified with molecular imaging methods. Therefore, co-expression of HSV1-tk reporter gene and target gene by hydrodynamic-based procedure is expected to be a useful method for the evaluation of the target gene expression level with radiolabeled IVDU.
The induction by xylose and repression by glucose of xylose isomerase(XI) were investigated to elucidate the regulation for production of XI in Escherichia coli. Regulation for expression of xyIA gene which codes XI is under control of xylR which is a regulatory gene for xylose catabolism. When xyIR gene was resided in chromosome, the inductions of XI by the addition of 0.4% xylose were increased to 1.9 and 1.7-fold in case of locating on multicopy(pEX202/DH77) and low copy Plasmid(pEX102/DH77), respectively, as compared with that of xylA gene which was resided in chromosome(JM109). xyIR gene product derived from xyIR gene on chromosome might react to xylA gene on the plasmid as same as xylA gene on chromosome. In JM109 and xylA transformant; pEX202/DH77 and pEX102/DH77, the inductions of XI were completely repressed by the addition of 0.2% glucose and these catabolite repressions were derepressed by the addition of 1 mM cAMP In comparison with the addition of 0.4% xylose only for the induction XI was inductively produced 1.7 to 2-fold with the addition of xylose plus 1 mM cAMP in DM minimal media. pEX13/TP2010, xylA transformant of the deficient mutant($xyl^-,\;cya^-$; TP2010) of XI and cAMP production, did not induce XI by the addition of xylose only but induced in case of simultaneous addition of xylose and cAMP. These results show that cAMP and xylose are the indispensable effectors for the induction and derepression of Xl in E. coli.
A recombinant plasmid, pDH3, was obtained from the genomic library of Serattia marcescens KCTC 2172, and several recombinant subclones constructed from pDH3. The nucleotide sequence of a 5,137 bp segment, pPH4, was determined and three open reading frames were detected. The three ORFs encoded the phosphate specific transport (pst) operon, which was pstC, pstA, and pstB, with the same direction of transcription. Comparison of the pst operon of S. marcescens with that of other organisms revealed that the genes for pstS and phoU were missing. A potential CRP bonding site and pho box sequence was found in the upstream of the putative promoter at the regulatory region. Analysis of the nucleotide sequence showed that homology in amino acid sequences between the PstC protein and Yersinia sp., Vibrio sp., and Pseudomonas sp. were 49, 37 and 33%, respectively. The PstA protein and Yersinia sp., Vibrio sp., and Pseudomonas sp. showed homologies of 64, 51, and 47%, respectively. PstB protein and Methanocaldococcus sp., E. coli, and Mycoplasma sp. showed homologies of 60, 50, and 48%, respectively. The pst genes could be expressed in vivo and positively regulated by cAMP-CRP. The E. coli strain harboring plasmid pPH7, with pst genes, increased with the transport of phosphate.
The FBJ murine osteosarcoma viral oncogene homolog B (FosB) gene is located at chromosome 19, and encodes 43 Kda protein. Functionally, the FosB gene is important for differentiation, development, and pathogenesis. Furthermore, the FosB gene is suggested as possible biomarker for tracing disease prognosis. In this study, we constructed plasmid containing a FosB promoter region and evaluate its promoter activity. We analyzed the putative promoter region in FosB genomic DNA using bioinformatics program, and we found important regulatory elements in 1 Kb upstream from transcription start site (TSS). Therefore, we performed polymerase chain reaction (PCR) amplification on region from-1,555 upstream to +73 of the FosB genomic DNA, and PCR product was inserted into TA vector to create the $TA-1^{st}FosBp$ plasmid. We then prepared the primer sets, which contain a restriction enzyme site for Kpn1 and Nhe1, in order to reinsert into the TA vector to prepare $TA-2^{nd}FosBp$ plasmid. It was finally subcloned into pGL3-luc vector after enzyme cutting. To evaluate whether the cloned plasmid is useful in cell based experiment, we performed luciferase assay with pGL3-FosBp-luctransfection. FosB promoter activity was increased compared to empty vector, and this activity was significantly increased by treatment of doxorubicin and taxol. We obtained consistent data on regulation of FosB gene expression after anticancer drug treatment using Western blot analysis. The results suggest that promoter cloning of the human FosB gene is very useful for studying gene expression and analyzing biomarkers.
Kang Cheol-Hee;Lee Sang-Mhan;Lee Kyoung;Lee Dong-Hun;Kim Chi-Kyung
Korean Journal of Microbiology
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v.41
no.3
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pp.195-200
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2005
Comamonas sp. strain DJ-12 is a bacterial isolate capable of degrading of 4-chlorobiphenyl (4CB) as a carbon and energy source. The degradation pathway was characterized as being conducted by consecutive reactions of the meta-degradation of 4CB, hydrolytic dechlorination of 4-chlorobenzoate (4CBA), hydroxylation of 4-hydroxybenzoate, and meta-degradation of protocatechuate to product TCA metabolites. The 6.8 kb fragment from the chromosomal DNA of Comamonas sp. strain DJ-12 included the genes encoding for the meta-degradation of PCA; the genes of protocatechuate 4,5-dioxygenase alpha and beta subunits (pmcA and pmcB), 4-carboxy-2-hydroxymuconate-6-semialdehyde dehydrogenase (pmcC), 2-pyrone-4,6-dicarboxylate hydrolase (pmcD), 4-oxalomesaconate (OMA) hydratase(pmcE), 4-oxalocitramalate (OCM) aldolase (pmcF), and transporter gene (pmcT). They were organized in the order of pmcT-pmcE-pmcF-pmcD-pmcA-pmcB-pmcC. The amino acid sequences deduced from the nucleotide sequences of pmcABCDEFT genes from Comamonas sp. strain DJ-12 exhibited 94 to $98\%$ homologies with those of Comamonas testosteroni BR6020 and Pseudomonas ochraceae NGJ1, but only 52 to $74\%$ with homologies Sphingomonas paucimobilis SYK-6, Sphingomonas sp. LB126, and Arthrobacter keyseri 12B.
The Journal of the Korean bone and joint tumor society
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v.17
no.1
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pp.23-29
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2011
Purpose: We investigated the effects of phosphatase and tensin homologue deleted on chromosome 10 gene phosphatase and tensin homologue deleted on chromosome 10 gene (PTEN) expression on the cell proliferation and on the responsiveness of troglitazone in osteosarcoma cells. Materials and Methods: Western blotting alnalysis was performed to detect the expression of PTEN in U-2OS cells treated with troglitazone. WST (water-soluble tetrazolium) assay was used to evaluate cell proliferation. Flow cytometry was used to determine cell apoptosis. Further, transfection of wild-type PTEN plasmid DNA was used to upregulate PTEN expression. Results: Troglitazone treatment induced growth inhibition of U2-OS cells in a dose- and time-dependent manner. Troglitazone increased the expression of PTEN in a dose-dependent manner. PTEN upregulation induced by troglitazone treatment resulted in cell growth inhibition and apoptosis in U-2OS cells. PTEN over-expression by plasmid transfection enhanced these effects of troglitazone. Moreover, no changes were observed in the mutant type-PTEN group. Conclusion: Upregulation of PTEN is involved in the inhibition of cell growth and induction of cell apoptosis by troglitazone. Further, PTEN over-expression can cause cell growth inhibition in osteosarcoma cells and these cell growth inhibitions could be enhance by troglitazone treatment.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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