Objective: This study was carried out to investigate the effects of 3-dimensional co-culture of human endometrial cells decidualized with progesterone and TGF-${\beta}1$ on the development of 2-cell mouse embryos. Methods: Stromal and epithelial cells isolated from human endometrial tissue were immunostained for cytokeratin and vimentin. Expression of TGF-${\beta}1$, its receptor-1, -2, integrin-${\beta}3$ and prolactin in mono or co-culture according to three different hormone conditions was investigated by RT-PCR. Differential staining was used to investigate the number of ICM and trophectoderm of hatched mouse blastocysts in different three conditions. Results: The immunohistochemical study was positive for cytokeratin or vimentin and confirmed that epithelial and stromal cells were isolated from endometrial tissue successfully. In co-culture, TGF-${\beta}1$, its receptor-1, integrin-${\beta}3$ and prolactin except TGF-${\beta}1$-r2 were expressed in progesterone dominant condition. The hatching and attaching rate were higher in the co-culture with decidualized cells (p<0.05). However, we observed that lots of the incomplete hatched blactocysts attached on non-decidualized cells. The ICM number of hatched mouse blastocysts was higher in co-culture with decidualized and non decidualized cells than media only culture (p<0.05). The trophectoderm number of hatched blastocyst was higher in the co-culture with decidualized cells than non-decidualized cells or media only culture (p<0.05). Conclusion: The administration of progesterone, estrogen and TGF-$\beta$ could induce decidualization of stromal and epithelial cells isolated from human endometrial tissue using 3-dimensional co-culture, and the decidualization of human endometrial cells could increase the hatching and attaching rate of 2-cell mouse embryos.
Endometriosis-related symptoms are believed to be alleviated during pregnancy. However, pregnancy complications, such as pseudoaneurysm of the uterine artery, rupture of ovarian or uterine vessels, and intraabdominal bleeding from decidualized deep infiltrating endometriosis (DIE) lesion have been rarely reported. Owing to the potential risk of rupture and resultant life-threatening complications, proper diagnosis and close monitoring of decidualized endometriotic lesion are very important despite its low relative risk. Till date, massive vaginal bleeding from decidualized rectovaginal DIE during pregnancy has not been in English literatures. Here, we present the first case of spontaneous massive vaginal bleeding due to decidualized rectovaginal DIE that occurred in the late third trimester of pregnancy.
Chang, Hye Jin;Lee, Jae Hoon;Kim, Mi Ran;Hwang, Kyung Joo;Park, Dong Wook;Min, Churl K.
Clinical and Experimental Reproductive Medicine
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v.33
no.2
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pp.105-113
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2006
Objective: To investigate the role of ERK and $PPAR{\gamma}$ on the $TGF-{\beta}1$ induced human endometrial stromal cell decidualization in vitro. Method: Endometrial stromal cells are cultured under the following condition: DMEM/F12 (10% FBS, 1 nM E2 and 100 nM P4). $TGF-{\beta}1$ (5 ng/ml), Rosiglitazone (50 nM), and PD98059 ($20{\mu}M$) were added according to experimental purposes. Trypan-Blue and hematocytometer were utilized to count cell number. Enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) and western blotting were utilized to detect proteins. Result: $TGF-{\beta}1$ inhibited proliferation of cultured human endometrial stromal cells and induced expression of PGE2 and prolactin. This effect was mediated by Smad and ERK activation. Administration of rosiglitazone, $PPAR{\gamma}$ agonist, prevented $TGF-{\beta}1$ effect on cell proliferation. Furthermore, Rosiglitazone inhibited $TGF-{\beta}1$ induced activation of ERK, consequently reduced PGE2 and prolactin production. Conclusion: $TGF-{\beta}1$ induced decidualization of endometrial stromal cell through Smad and ERK phosphorylation. $PPAR{\gamma}$ acts as a negative regulator of human ndometrial cell decidualization in vitro.
Objective: This study was performed to clarify the role of HomeoboxA (HOXA) and its related signaling molecules in the decidualization of primary cultured endometrial cells. Methods: Human endometrial tissues were obtained by curettage of hysterectomy specimens from patients with conditions other than endometrial diseases. Tissues were minced and digested with Trypsin-EDTA for 20 min, $37^{\circ}C$. Cells were cultured with DMEM/F12 medium in $37^{\circ}C$, 5% $CO_2$ incubator for 24 hrs. Cells were treated with HOXA10 siRNA and added transforming growth factor (TGF)-${\beta}1$ (10 ng/mL) for 48 hrs to induces decidualization in vitro. Reverse transcription polymerase chain reaction analysis was accomplished to observe the expression of HOXA10, prolactin, cyclooxygenase (COX)-2, peroxisome proliferatoractivated receptor (PPAR)-$\gamma$, and wingless-type MMTV integration site family (Wnt). Results: HOXA10 expression was increased (1.8 fold vs. non-treated control) in TGF-${\beta}1$ treated cells. Decidualization marker, prolactin, was significantly increased in TGF-${\beta}1$ treated cells compared with HOXA10 siRNA treated cells. Endometrial cell differentiation marker, COX-2 was down-regulated by HOXA10 siRNA even if cells were treated with TGF-${\beta}1$. Wnt4 was down-regulated by treated with HOXA10 siRNA, this expression patters was not changed by TGF-${\beta}1$. Expression of PPAR-$\gamma$ was down regulated by TGF-${\beta}1$ in regardless of HOXA10 siRNA treatment. Conclusion: TGF-${\beta}1$ which is induced by progesterone in endometrial epithelial cells may induces stromal cell decidualization via HOXA10 and Wnt signaling cascade.
Park, Dong-Wook;Choi, Dong-Soon;Kim, Mi-Ran;Hwang, Kyung-Joo;Jo, Mi-Yeong;Ahn, Seong-Hee;Min, Churl-K.;Ryu, Hee-Sug
Clinical and Experimental Reproductive Medicine
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v.30
no.1
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pp.65-75
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2003
Objectives: To investigate the role of TGF (Transforming growth factor-$\beta$) involved in the paracrinic communication during decidualization between UEC (uterine epithelial cells) and USC (uterine stromal cells), we have employed a co-culture system composed of human endometrial epithelial and stromal cells in defined hormonal conditions. Design: In the co-culture, endometrial epithelial cells cultured in the matrigel-coated cell culture insert are seeded on top of the endometrial stromal cells cultured within a collagen gel. The co-culture was maintained for 48 hours under the following hormonal conditions: progesterone dominant condition (100 nM P4 and 1 nM E2) or estrogen-dominant condition (100 nM E2 and 1 nM P4). 10 ng/ ml HGF and/or 10 ng/ml TGF-$\beta$1 are added. Methods: RT-PCR is utilized to detect mRNAs quantitatively. Enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) and immunohistochemical staining are utilized to detect proteins in the tissue. Results: Prolactin mRNA is expressed in the co-cultured stromal cells under the progesterone dominant condition. TGF-$\beta$1 and its receptors are expressed in both the co-cultured epithelial and stromal cells irrespective of the steroid present, which is in contrast with no or negligible expression of TGF-$\beta$1 or its receptor in cells separately cultured. Both estrogen and progesterone significantly elevate the concentration of hepatocyte growth factor (HGF) in the conditioned medium of the co-culture with the value of 4, 325 pg/ml in E2-dominant and 2, 000 pg/ml in P4-dominant condition compare to 150 pg/ml in no hormone. In separately cultured stromal cells, administration of HGF induces the expression of TGF receptor 1 in both hormonal conditions, but induction of TGF receptor 2 is only manifest in the P4-dominant condition. Administration of TGF-$\beta$ and HGF directly induce the decidualization marker prolactin mRNA in separately cultured stromal cells. Conclusion: It is likely that steroid hormones induces prolactin mRNA indirectly by promoting the cell to cell communication between the stromal and the epithelial cells. TGF-$\beta$ and HGF are two possible paracrine mediators in the human endometrial decidualization.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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