In vitro-tested ribozyme against synthesized cucumber mosaic virus (CMV) RNA (Agric. Chem. & Biotech. 37:56-63(1994)) was expressed in tobacco plant to develop virus resistant plants. The ribozyme sequence was linked to cauliflower mosaic virus 35S promoter and nopaline synthase(nos) terminator and this chimeric 35S-ribozyme-nos gene was sequenced. The sequenced chimeric gene was transferred to Agrobacterium tumefaciens LBA4404 using tri-parental mating system. The E. coli HB101 containing chimeric gene was incubated with E. coli HB101(pRK2073) as a helper and Agrobacterium tumefaciens LBA4404. Then Agrobacterium cells containing the ribozyme construct was cocultivated with tobacco leaf pieces. Ten different plants were regenerated from kanamycin containing MS medium. The presence of the ribozyme construct in the transgenic tobacco plants was confirmed by polymerase chain reaction (PCR). Seven different transgenic plants in ten different kanamycin resistant plants showed the expected size (570 base pairs) of 35S-ribozyme-nos gene fragment. Total RNAs were isolated from four different transgenic plants and separated on a 1% agarose gel containing formamide. Northern hybridization with 35S-ribozyme-nos gene fragment as a probe indicated that ribozyme transcripts may be degraded tv nuclease. Therefore, nuclease-resistant ribozymes are needed for the development of virus-resistant transgenic plants using ribozymes.
We developed 14 transgenic lines of Chinese cabbage (Brassica rapa) harboring the T-DNA border sequences and CryIAc1 transgene of the binary vector 416 using Agrobacterium tumefaciens-mediated DNA transfer. Six lines had single copy cryIAc1 gene and four of them contained no vector backbone DNA. Of the left border (LB) flanking sequences six nucleotides were deleted in transgenic lines 416-2 and 416-3, eleven nucleotides in line 416-9, and 65 nucleotides including the whole LB sequences in line 416-17, respectively. And we defined 499 bp of genomic DNA (gDNA) of transformed Chinese cabbage, and blast results showed 96% homology with Brassica oleracea sequences. PCR with specific primer for the right border (RB) franking sequence revealed 834 bp of PCR product sequence, and it was consisted of 3' end of cryIAc1, nosterminal region and 52 bp of Chinese cabbage genomic DNA near RB. RB sequences were not found and the 58 nucleotides including 21 bp of nos-terminator 3' end were deleted. Also, there were deletion of 10 bp of the known genomic sequences and insertion of 65 bp undefined genomic sequences of Chinese cabbage in the integration site. These results demonstrate that the integration of T-DNA can be accompanied by unusual deletions and insertions both in transgenic and genomic sequences.
Lee, Young Bok;Seong, Bong Jae;Lee, Eun Gyoung;Lee, Ki Won;Choi, Kwan Sam
Korean Journal of Agricultural Science
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v.20
no.2
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pp.133-144
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1993
Calli were induced on microtuber disks of potato(S.tuberosum) infected with three binary vectors transconjugated with C58, A281 and LBA 4404 of Agrobacterium tumefaciens and pBI121. The frequency inducing callus was the highest by infection of C121 carrying pC58 and pBI121, and shoots were differentiated on the calli without any hormonal application. Transformed calli were selected by their resistance to kanamycin and identified by GUS activity. The frequency of callus formation by infection of binary vector strain was affected according to the hormonal application.
Seo, Hyo-Won;Yi, Jung-Yoon;Cho, Hyun-Mook;Kim, Sung-Yeul
Journal of Plant Biotechnology
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v.29
no.4
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pp.235-240
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2002
We report the new method for the screening of genetically modified potato by competitive duplex-PCR using the potato specific single oligomer primer for the internal control and CaMV 35S promoter or NOS terminator specific primers. The single oligomer primer (rAGU4A) amplify the potato specific internal control band from the homozygous potato genomic DNA in the RAPD profiles of all analyzed potato varieties. The 530 bp internal control DNA was amplified independently to CaMV 35S promoter or NOS terminator DNA and identified as repetitive or microsatellite DNA of potato (AF541972). With this new technique, the transgenic potatoes which were transformed with vectors contained the different foreign genes are analyzed. In case of the commercialized transgenic potato varieties, 'Hew Leafs', those two genetic factors are used for promoter and terminator respectively So, this new PCR technique should be a promising method of cost effective and accurate screening for the commercialized GM potatoes on market.
We performed in vitro assay and field trials to assess levels of changes in intrinsic properties and resistance against soft rot of the potato cv. Dejima upon the introduction of a soybean calmodulin 4 gene (SCaM4). Field trials with four lines overexpressing SCaM4 gene were conducted over two seasons, and harvested tubers were evaluated in bioassay for resistance to Pectobacterium carotovorum ssp. carotovorum. The SCaM4 transgenic potato lines inoculated with $10^8$ CFU/ml of P. carotovorum ssp. carotovorum showed enhanced resistance compared to control. Among the SCaM4 transgenic lines, the transgenic line SCaM4-4 exhibited the highest tolerance to soft rot in vitro assays, so did in field trials. In the field trial, the soft rot resistance of SCaM4-4 line was more than 5 times higher compared to that of control cultivar, Dejima. The major agronomic characteristics of the SCaM4 transgenic lines were not different from those of the nontransgenic 'Dejima'. The result demonstrated that the transformation of a calmodulin 4 gene was a successful strategy in development of potato cultivar enhanced to soft rot.
Seo, Yong Bae;Lee, Jong Kyu;Jeong, Tae Hyug;Nam, Soo-Wan;Kim, Gun-Do
Journal of Life Science
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v.25
no.12
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pp.1339-1346
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2015
The aim of this study is to increase production of carotenoids in recombinant Escherichia coli by Archaea chaperonin. The carotenoids are a widely distributed class of structurally and functionally diverse yellow, orange, and red natural pigments. These pigments are synthesized in bacteria, algae, fungi, and plants, and have been widely used as a feed supplement from poultry rearing to aquaculture. Carotenoids also exhibit diverse biological properties, such as strong antioxidant and antitumor activities, and enhancement of immune responses. In the microbial world, carotenoids are present in both anoxygenic and oxygenic photosynthetic bacteria and algae and in many fungi. We have previously reported cloning and functional analysis of the carotenoid biosynthesis genes from Paracoccus haeundaensis. The carotenogenic gene cluster involved in astaxanthin production contained seven carotenogenic genes (crtE, crtB, crtI, crtY, crtZ, crtW and crtX genes) and recombinant Escherichia coli harboring seven carotenogenic genes from Paracoccus haeundaensis produced 400 μg/g dry cell weight (DCW) of astaxanthin. In order to increase production of astaxanthin, we have co-expressed chaperone genes (ApCpnA and ApCpnB) in recombinant Escherichia coli harboring the astaxanthin biosynthesis genes. This engineered Escherichia coli strain containing both chaperone gene and astaxanthin biosynthesis gene cluster produced 890 μg/g DCW of astaxanthin, resulting 2-fold increased production of astaxanthin.
Several reports indicated that astaxanthin and zeaxanthin have more active anticancer activity than pro-vitamin A carotenes. ${\beta}$-carotene hydroxylase is a key enzyme to synthesize zeaxanthin and astaxanthin in carotenoids biosynthesis pathway. We isolated the ChyB gene encoding ${\beta}$-carotene hydroxylase from tomato leaves. The ChyB gene (1.5Kbp) fragment was cloned into the binary vector and designated to pIG121-ChyB-tom. Agrobacterium-mediated infiltration was used for transient assay in Nicotiana benthamiana. Leaf samples were collected 0, 1, 2, 3 days after infiltration (DAI). RT-PCR result showed that the expression of ${\beta}$-carotene hydroxylase transcripts was not detected in control (0DAI), but its expression was detected after 1 DPI and increased later on. When the activity of ${\beta}$-carotene hydroxylase was measured, the 1,1-diphenyl-pricryl hydrazyl (DPPH) radical scavenging activity (27%) at 2 DAI was significantly higher than that (21%) at 0 DAI. These results indicated that anti-oxidant activity dramatically increased at 2 DAI in tobacco leaves was due to over expression of tomato ${\beta}$-carotene hydroxylase. These results can be the foundation to develop tomato cultivars with high oxy-carotenoids content using the ChyB gene transformation.
We have demonstrated expression of bacterial genes transferred into cells of Populus nigra ${\times}$ P. maximowiczii by A. tumefaciens strain 6044 (pGA 472). We determined the optimum concentration of kanamycin sulfate for effective selection of punctured leaf transformed using Agrobacterium binary vector pGA 472 containing a neomycine phosphotransferase gene (NPT-II) which confers kanamycin resistance. The combination of cefotaxime (200mg/l) and carbenicillin (300mg/l) showed good performance of discarding Agrobacterium from inoculated punctured leaf. A relatively low concentration (10mg/l) of kanamycin sulfate inhibited callus and shoots induction from punctured leaf. Number of shoots regenerated from co-cultured punctured leaf was 3.0 on MS basal medium supplemented with 10 mg/l kanamycin sulfate, while that of not co-cultured punctured leaf was none. The regeneration rate was 10% from the punctured leaf co-cultured on MS medium with 10 mg/l kanamycin. Regenerated shoots are developing from micropropagation for Southern blot analysis and inheritance of the kanamycin resistance trait (NPT-II).
The effects of pH on the binding of human granulocyte-macrophage colony-stimulating factor (hGM-CSF) expressed from transgenic plant cell suspensions to cationic and anionic exchange resins were investigated. In terms of stability, the optimum pH was found to be 5-7. In the case of using buffer exchange, when CM-sepharose was used as a cationic exchange resin, the best binding pH was 4.8 (77%) and when DEAE-sepharose was used as an anionic exchange resin, the best binding pH was 5.5 (74%). Without using buffer exchange, the optimum pH was 4.6 and the adsorption yield was 84%. From these results, a possibility of overcoming the degradation and instability of secreted protein product by in firm adsorption was found.
In vitro attachment experiments of bacteria to surface of host plant cell were carried out using C14 labeled cells of A. rhizogenes strain A4 and carrot protoplasts isolated from suspension culture of cells. Protoplasts were cocultivated with A. rhizogenes at various times after their isolation. Attachment kinetics showed that adherence of bacteria to protoplasts attained a maximum level within 120mins of co-cultivation. Maximum attachment occured at pH 6.0 and 24-35$^{\circ}C$. Bacterial attachment was observed at botg carrot cells with and without primary cell wall. The inhibition of transformation on the carrot root discs by A. rhizogenes was observed when non-related strain and heat inactivated bacterial strain cells were pretreated.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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