Spin-filters are used as cell separation devices for achieving high cell density and high productivity in animal cell culture. We have proposed a model for the cell growth in a spin-filter perfusion culture and examined the effects on cell growth by several parameters including ammonia inhibition, specific growth rate, specific feeding rate, and cell retention. Results from computer simulation and sensitivity analysis indicate that the cell retention affects the cell growth mostly while there is a significant inhibition on cell growth by the ammonia accumulated during the culture. The specific feeding rate has minimal effects on cell growth, which is consistant with the fact that the cell growth with a step feeding is quite similar to that with a continuous feeding.
To provide the optimal culture conditions for the developm,ent of in vit개 produced embryos, we have been investigated various culture media as well as co-cultrue systems using porcine cumulus cells or mouse fetal fibroblast cells. Porcine ovaries were brought to the laboratory from local slaughter house within 1 hour after slaughtering and cumulus oocytes complexes were recovered from antral follicles(3~5mm) with 23 gauge needle. To maturate follicular oocytes, cumulus oocytes complexes were washed three times with TCM-199 containing 25mM HEPES and incubated(39$^{\circ}C$, 5% CO2 in air) in various maturation media for 42 hrs. Ejaculated and liquid storaged boar spermatozoa capacitated with different sperm capacitation methods and media were rpepared for fertilizing of matured follicular oocytes in vitro. Fertilization was performed by adding 5~10${\mu}\ell$ fo capacitated spermatozoa containing 1~5$\times$105 sperm/ml to droplets. Eighteen to twenty-eight hours after sperm insemination, fertilized eggs were washed three times with culture media and transferred to the various culture media, to the culture media with a monolayer of somatic cells. The in vitro development rates of 1-cell embryos cultured with three times with culture media and transferred to the various culture media, to the culture media with a monolayer of somatic cells. The in vitro development rates of 1-cell embryos cultured with three different media, m-KRB, BECM and TCM-HEPES were 0~1.0%, showing extremely lower rates. Especially, most of embryos were observed to arrest the development beyond 4-cell stages. The rates of embryos developed to 2-, 4-, 8-, 16-, 32-cell and morula or blastocyst stage in co-culture with porcine cumulus cells and mouse fetal fibroblast cells were 61.1~67.0%, 59.0~58.0%, 42.5~43.1%, 28.4~30.2% and 20.4~21.0%, respectively. These development rates upto morula or blastocyst stages were significantly higher than those of the embryos cultured in the basic culture medium(P<0.01). These findings suggest that co-culture of in vitro fertilized eggs with porcine cumulus cells or mouse fetal fibroblast cells enhance the development of fertilized eggs to morula or blastocyst stage in vitro.
Park, Jung-Hyun;Kim, Kyoung-Hwa;Lee, Yong-Moo;Ku, Young;Rhyu, In-Chul;Han, Soo-Boo;Chung, Chong-Pyoung
Journal of Periodontal and Implant Science
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v.34
no.1
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pp.93-100
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2004
많은 연구들에서 hMSC를 얻기 위해 centrifugation, fluoroscence activated cell sorter(FACS), magnetic activated cell sorter(MACS)가 이용되어져 왔다. 그러나 centrifugation만을 이용한 경우 순도가 떨어지며 FACS나 MACS의 경우에는 비용, 시간이 많이 드는 단점이 있다. 따라서 이 연구에서는 antibody cocktail을 이용하여 hMSC를 좀더 쉽게 얻어내는 방법에 대해 알아보았다. 사람의 골반에서 12G의 바늘을 이용하여 골수를 흡입한 후 heparin이 들어있는 시험관에 넣고 처리과정을 시행하기 전에 냉장고에 보관하며 가능한 한 빨리 처리 과정을 실시한다. 얻은 골수에 적당량의 RosetteSep( Stemcell Technologies)을 첨가한 후 실온에서 20분간 반응시킨다. 그 후 적당량의 Ficoll-paque위에 골수와 RosetteSep의 혼합물을 섞이지 않게 올리고 원심분리를 이용하여 원하는 세포층을 얻어낸다. 이 세포층을 따로 분리한 뒤 배양한다. 배양 시 세포가 80%이상 차기 전에 계속 passage를 시행하며 배양한다. 이는 세포가 밀도가 높아져 원치 않는 세포로 분화되는 것을 막기 위함이다. 배양된 세포가 다양한 분화능력을 가지고 있는지 알아보기 위해 세 가지로 분화를 유도하였다. 적절한 배지와 적절한 환경에서 배양함으로써 얻어진 세포를 osteoblast, chondroblast, adipocyte로 분화를 유도하였다. 분화된 세포가 원하는 형질의 세포로 분화되었는지를 확인하기 위하여 osteoblast의 경우 alizarin red staining, alkaline phosphatase activity, chondroblast의 경우 toluidine blue staining, adipocyte의 경우 Oil-Red-O staining으로 염색하여 분화를 확인하였다. 분리해낸 세포는 각각 세 가지 세포로 분화가 되었으며 이는 RosetteSep이 hMSC를 성공적으로 분리해냈다는 것을 보여준다. 그러나 모든 세포가 분화를 보이지는 않았으며 따라서 hMSC의 순도를 높이기 위한 연구가 더 필요하다. RosetteSep을 이용하면 다른 방법들 보다 쉽게 hMSC를 얻을 수 있으나 기존의 방법과 순도의 측면에서 더 비교할 필요가 있다.
Insect cell cultures were performed in laboratory-scale vessels. The batch growth of insect cells was affected by such parameters as serum content, other nutrients, seeding density, and mechanical agitation. Lactate and ammonium were not likely to be environmental factors that inhibited cell growth at the concentrations observed at the end of batch cultures. In addition, redox potential was found to be a useful index in monitoring low-level dissolved oxygen during the cultivation of insect cells. Recombinant protein production by cells infected with a genetically-modified baculovirus was also demons treated. The maximum beta-galactosidase synthesis of 2800 units per reactor volume was achieved at the dilution rate of $0.006hr^{-1}$.
Time course monitoring of FCW/DCW ratio, production of intra and extracellular protein, and peroxidase activity were performed during suspension culture of Taxus chinensis cells. The observed FCW/DCW ratio was 12 at day 14, which was the lowest value during cultivation, and the specific protein production, based on dry cell weight, was also the lowest at day 14, which showed 4.3 mg/g DCW. The pattern of POD activity was similar to that of protein production. The results in this report were obtained using actively growing cells in flasks, therefore it is possible to use those results to control the process and indicate the stresses imposed on cells during large-scale cultivation.
Kim, Gi Yong;Kang, Sung-Min;Jang, Sung-Chan;Huh, Yun Suk;Roh, Changhyun
Korean Journal of Environmental Biology
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v.34
no.2
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pp.107-115
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2016
Currently, there are 442 operating nuclear power plants in the world, and 62 more are under construction. According to this reasoning, the treatment of radioactive waste is important to prevent the environmental ecosystem including humans, animals, and plants. Especially, a leakage of radioactive waste causes not only regional problem but also serious global one. In this study, we demonstrate the effect of radioisotopes (e.g., cesium, strontium, and cobalt) on a 3D culture cell. To develop the 3D cell culture system, we used a 96-well-culture plate with biocompatible agarose hydrogel. Using this method, we can perform the 3D cell culture system with three different cell lines such as HeLa, HepG2, and COS-7. In addition, we conducted a cell viability test in the presence of radioisotopes. Interestingly, the 3D morphological cells showed 42% higher cell viability than those on the 2D against cesium. This result indicates that the 3D platform provides cells morphological and physiological characteristic similar to in vivo grown tissues. Moreover, it overcomes the limitation of conventional cell culture system that can't reflect in vivo systems. Finally, we believe that the proposed approach can be applied a new strategy for simple high-throughput screening and accurate evaluation of metal toxicity assay.
Transactions of the Korean Society of Mechanical Engineers B
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v.35
no.11
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pp.1127-1131
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2011
We report on a pumpless cell culture chip in which a constant medium perfusion rate is maintained by balanced droplet dispensing. Previous chips had a decreasing perfusion rate due to the decreasing hydraulic-head difference ${\Delta}h$ between the inlet and drain. However, the present chip maintains a constant medium perfusion rate due to the constant ${\Delta}h$ between the inlet and drain maintained by balanced droplet dispensing. The perfusion rate Q was measured to be 0.1-$0.3{\mu}l$/min with a maximum deviation and error of 9.96% and 6.92%, respectively. In the perfusion culture (Q = 0.1-$0.3{\mu}l$/min), the maximum growth-rate of H358 cells was measured to be $57.8%{\pm}21.1%$ per day, which is 1.9 times higher than that of a static culture. The perfusion culture also resulted in higher cell viability than a static culture. The present chip offers a favorable environment with a high growth-rate and viability and thus has potential for use in the integrated cell culture system.
To establish the in vitro culture system and quantitation for chondrogenesis, and to investigate the relationship between cell aggregation and chondrogenesis, chick limb bud mesenchymal cells of Hamburger-Hamilton stage 23/24 were micromass cultured in various cell densities. The chondrogenesis was assayed based on checking the alcian blue-stained nodule numbers, the amount of alcian blue extraded, the change in cell numbers, the rate of [35 S] sulfate incorporation and expression of type II collagen. Mesenchymal cells plated with an initial density of high (1 x 107 cells/ml)- and intermediates (5. $\times$ 106 cells/ml)-density were differentiated into cartilage. On the other hand, the cells of low density (2 x 106 cells/mi, 5 $\times$ 105 cells/ml) of stage 23/24 cells and the stage 18/19 cells in three kinds of cell density did not differentiate into cartilage even though the cells formed an aggregated core at the center of cultured mass. From these results and others obtained in this study, it can be stated that the stage 23/24 mesenchymal cells are likely to pass over the aggregation step and have the potentiality to differentiate into chondrocytes. Thus chondrogenesis in vitro can be observed when mesenchymal cells are plated over the threshold density of 5 $\times$ 106 cells/ml. Hyaluronidase (HAase) activity was relatively constant throughout the culture, suggesting that the role of HAase may not be important for the cells of stage 23/24.
본 연구는 난소의 황체를 체외배양시 TGF-$\beta$1의 황체내 발현을 조사하기 위해 수행되었다. 돼지 황체는 축산기술연구소에서 사육중인 돼지(체중 145$\pm$kg) 12두로부터 발정을 유도시켜 배란 후 약 48시간째 도축하여 난소를 회수하였다. 회수된 난소로부터 황체를 분리하여 세절한 후 0.25% collagenase용액(0.025mg DNase, 50mM EDTA, 50mM Dithio-threitol)으로 37$^{\circ}C$의 진탕 수조에서 30분간 배양하여 황체세포를 분리 회수하였다. 회수된 황체세포는 D-MEM용액(GIBCO, 10% FCS와 antibiotics 첨가)으로 2회 세척하여 1$\times$$10^{6}$live cell/$m\ell$이 되도록 희석하여 24 well culture plate(Corning, New Tork 14831)에 분주하여 $CO_2$ 배양기($CO_2$: 5%)에서 24시간 간격으로 2회 배양액을 교환해 48시간 동안 배양하였다. 배양된 황체 세포는 immunocytochemistry 방법으로 TGF-$\beta$1의 발현을 관찰함과 동시에 황체조직도 같은 방법을 사용하여 TGF-$\beta$1 의 발현 유ㆍ무을 관찰하였다. 그 결과 황체세포 그리고 황체 조직 뚜렷한 TGF$\beta$1의 발현을 확인할 수 있었다. 이 결과로서 TGF$\beta$1은 황체기능을 유지하는데 하나의 인자로서 작용하며 다른 인자들과의 상호작용을 시사하고 있다.
Plant cell culture can be divide into two classes non-organic culture and organic culture. Non-organic culture such as suspension culture has many researches, however organic culture about recombinant protein production has little researches. Recombinant protein produced through organ culture is quite stable and it can make proteins by itself without any grow regulators. Therefore organ culture is much easier than other methods. In this research, we used transformed tobacco seed. At first we germinated the seed then separated stems and leaves from the grown plant. And raised in liquid medium by in vitro vegetative reproduction. Continuing most suitable conditions, we compared the Quantities of recombinant protein from intra cellular with from extra cellular. And adding some permeabilizing agents (Pluronic F-68, Triton X-100, DMSO, PEG8000), we increased the productivity of the recombinant protein.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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