Proceedings of the Korean Society of Postharvest Science and Technology of Agricultural Products Conference
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2003.04a
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pp.145.1-145
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2003
대두 단백질을 효소로 가수분해 하였을 때 생성되는 peptide의 항균활성을 조사하고 천연항균제로서 이용 가능성을 검토하기 위하여 분리 대두 단백질에 5종의 단백질 가수분해 효소를 작용시켜 생성된 가수분해물의 항균력을 측정하고 한외여과하여 분자량별로 분리된 각 fraction의 항균활성과 HPLC로 정제하여 항균성 peptide 의 아미노산 결합순서를 분석하여 다음과 같은 결론을 얻었다. 분리대두 단백질에 5종의 단백질 분해효소를 작용시켜 제조한 가수분해물 중 Asp.saitoi protease로 작용시킨 것이 항균활성이 높았다. Asp. saitoi protease로 작용시킨 대두 단백질의 가수분해물을 membrane filter로 여과한 결과 분자량 1000-3000 fraction에서 항균활성이 가장 높았다. 분자량 1000-3000 범위을 가진 가수분해물의 MIC는 0.5-0.8mg/$m\ell$ 이었으며 그람 양성균과 음성균 모두의 증식을 억제하는 경향을 보였다. 분리 대두 단백으로부터 얻어진 항균성 peptide는 121$^{\circ}C$, 10분간 열처리하여도 안정하였으며 한외여과에 의하여 분자량 1000-3000범위의 가수분해물을 동결건조하여 gel filteration하였을 때 2개의 fraction에서 항균 활성을 나타내었다. HPLC결과 RT 16.02 의 peak에서 항균활성이 확인되었고 질량은 1,633이었으며 아미노산 결합순서는 H$_2$N-G-P-P-G-V-V-A-T-V-V-A-A-R-COOH 이었다.
Proceedings of the Korean Society of Life Science Conference
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2001.06a
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pp.3-41
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2001
단백질의 부분 가수분해는 산성 음료에서의 용해도 증가, 환자들의 소화력과 알러지 내성의 개선, 다른 기능적 특성의 개발 등을 위하여 식품산업에 널리 이용되고 있다. 그러나 우유 단백질이나 대두 단백질과 같은 몇 가지 단백질들은 가수분해에 의하여 강한 쓴맛을 형성한다, 단백질 가수분해물의 쓴맛에 관한 연구는 1950년대 초에 시작되었으며, 여러 가지 원료로부터 쓴맛물질이 분리되었다. 이들 단백질 가수분해물의 쓴맛 물질은 올리고펩타이드로 알려져 있으며, 펩타이드 분자를 구성하는 소수성 아미노산의 존재와 밀접한 관계가 있는 것으로 보고되고 있다. 본 연구에서는 최근에 발달된 분석기술과 생명공학적 기법으로 E. coli에서 생산한 콩 단백질 단일 subunit를 이용하여 효소적 가수분해물의 분자구조를 확인하고자 하였다. 탈지대두박으로부터 115 glycinin와 E.coli떼서 발현된 proglycinin을 각각 90%, 97%의 정제도로 분리하여 이들 단백질을 trypsin으로 각각 가수분해하였다. 115 glycinin은 효소/기질 비 3%에서 4시간 가수분해에 의해 $14.0{\times}10^{-5}$ M quinine-HCI equivalent의 강한 쓴맛을 나타내었으며, 12%의 가수분해도(DH)를 나타내었다. 대두 단백질의 쓴맛 성분을 확인 위하여 이미 아미노산 서열이 밝혀진 11S glycinin과 proglycinin 가수분해물에서 GP-HPLC, $C_{18}$ RP-HPLC 등을 통하여 쓴맛 peptide들을 분리하였다. 각각의 분획은 다시 21개의 peptide로 분리되어 그 서열이 결정되었으며 이중 RP와 GI는 이미 알려진 쓴맛 dipeptide였고, LAGNQEQE, SAEFG, NALPE, KLHENIAR, GMIYPG 등이 주된 쓴맛 Peptide로 확인되었다. 이들은 11S glycinin의 5개의 subunit 중에서 그 위치가 확인되었다. Proglycinin 가수분해물에서도 11S glycinin과 같은 방법으로 7개의 쓴맛 peptide가 분리되었다. 이들은 $A_{1a}B_{1b}$의 아미노산 서열 중에서 37-42, 103-110, 164-167, 323-327, 367-373의 위치에 분포하고 있었으며, NALKPD, IYPGCPST, SlDT, HNIGQT, NAMFVPH의 서열을 나타내었다. 분리된 쓴맛 peptide 중에서 가장 쓴 두 분회의 peptide를 합성하여 관능 검사한 결과, NALPE는 매우 쓴맛을 내는 peptide로 확인되었다.
Journal of the Korean Society of Food Science and Nutrition
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v.18
no.4
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pp.410-422
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1989
Soybean protein isolates were acylated with succinic anhydride and partially hydrolyzed with trypsin. Chemical modification decreased protein contents of samples and, in amino acid composition, tyrosine was increased comparatively. And lysine was increased remarkably by partial proteolysis. Succinylation and trypsin treatment increased the aqueous solubility and shifted the isoelectric potint that showed high pH-dependence of protein solubility. Protein solubility was influenced by salt concentration such as $NaCl,\;CaCl_2,\;NaNO_3$ and $NaH_2PO_4$. Chemical modification increased the absorption of oil and water, emulsification properties and foam capacity, but decreased foam stability, ultraviolet absorbance and bulk density. Protein-protein Interaction between soybean protein isolates and beef protein increased the emulsifying activity, emulsifying activity index and foaming properties, but it didn't have any influence on emulsion stability.
Journal of the Korean Society of Food Science and Nutrition
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v.39
no.1
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pp.8-13
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2010
The angiotensin converting enzyme (ACE) inhibition effect of soybean protein isolate hydrolysate was studied using protease. Soybean protein isolate was hydrolysed by seven enzymes (Alcalase 2.4 L, Flavourzyme 500 MG, GC 106, Multifect Neutral, Neutrase 0.8 L, Papain 30,000 and Protamex), enzyme concentrations (0, 0.5, 1.0 and 1.5%), at various hydrolysis times (0, 1, 2, 3, 4, 5 and 6 hr) and suspension concentrations (1, 5, 7, 10 and 15%). Absorbance at 280 nm, brix and ACE inhibitory activity of soybean protein isolate hydrolysates were investigated. Absorbance at 280 nm and brix of Alcalase 2.4 L treatment were higher than other enzyme treatments. The optimum condition of hydrolysis was Alcalase 2.4 L, 1% enzyme concentration, 5% suspension concentration for 4 hr. $IC_{50}$ value of ACE inhibitory activity of soybean protein isolate hydrolysate was $79.94 {\mu}g/mL$. These results suggest that soybean isolate protein hydrolysate from Alcalase 2.4 L may be of benefit for developing antihypertensive therapeutics.
A study was condoled to investigate the effects of phosphate salts $(Na_2HPO_4\;and\;K_2HPO_4)$ on the emulsion stability of soy protein isolate (SPI) in terms of the salts concentration and addition order. When phosphates were added before emulsification, emulsion stability (ES) of SPI was improved at the concentration of 10 mM, while ES was decreased by addition of phosphates after emulsification. At high phosphate concentrations, ES of SPI was decreased by the addition of phosphates, regardless of the addition order. ES of SPI at the isoelectric point (pH 4.5) or in the presence of $CaCl_2$ was greatly enhanced by the phosphates. In both cases, the overall ES profile was found to be nearly similar to the solubility profile of SPI, indicating the positive relationship between solutibility and emulsion stability of SPI.
To study affinity of proteolytic enzymes to soy proteins, the physicochemical and functional properties of enzymatically modified protein products, kinetic parameters and degree of hydrolysis were measured using trypsin, alcalase (serine type protease) and pronase. Bacterial alcalase and pronase showed much greater affinity to soy protein than animal intestinal trypsin. This effect was very significant when unheated soy isolate was used as a substrate. Specific activities of these enzymes decreased with the increment of substrate concentration (over 2.0%, w/v) when heat denatured soy protein was used as a substrate. However, the decrease in specific activity was negligible at substrate concentrations lower than 2.0%. Polyacrylamide gel electrophoretic results showed that the pattern of 2S protein band changed distinctly in alcalase hydrolysis as compared with those of trypsin and pronase. Protein solubilities of alcalase and pronase hydrolyzates increased by 25-30%, at their pI (pH 5.0) over the control. Virtually no change was observed in solubility by trypsin hydrolysis. Heat coagulability and calcium-tolerance of the protein increased by enzymatic hydrolysis. No clear tendency, however, was observed for emulsion properties, foam expansion and the amount of free -SH groups. The enzyme treatment considerably decreased foam stability.
The rising global demand for food and beverages with higher protein content provides manufacturers with great opportunities for innovation and premium positioning of their products as healthy choices. However, the market price volatility and supply risks associated with animal-based proteins can quickly erode margins and profitability. A diversified protein strategy that includes plant-based soy protein greatly improves your ability to predict profitability over time, while maintaining or even improving product quality.
Hydrolysis of isolate soybean protein (ISP) using subcritical water (SCW) was conducted to study the feasibility for producing protein hydrolyzate. SCW hydrolysis of SPI suspension (5-15%) was conducted in an electrically heated batch reactor (2 L). The effects of temperature (230 to $270^{\circ}C$) and holding time (10 to 50 min) on the degree of hydrolysis (DH) and the production of amino acids were studied by surface response method. The DH was determined by derivatizing the hydrolyzates with ortho-phthalaldehyde (OPA) solution. It was confirmed that reaction temperature and holding time affected the hydrothermolysis of soybean protein. However, the holding time was less effective on amino acid yield when the temperature was higher than $230^{\circ}C$. In order to achieve optimal yields of amino acids exceeding 43%, the temperature should be within the range between 256 and $268^{\circ}C$ with holding time from 29 to 41 min, respectively. A maximum estimated amino acid yield of 43.5% was obtained at $268^{\circ}C$ for 35 min.
The effect of operating conditions on separation of soybean proteins in a home-made free-flow electrophoresis apparatus was investigated. Measurement of the pH, conductivity, and UV-absorbance(280 nm) were carried out at each run and the purity of the sample was tested with SDS-PAGE analysis. The soybean extract pretreated with Tris and boric acid was mixed with the amino acids composed of glutamic acid, histidine, arginine, glycine(1 mM each) with glycyl-glycine(2mM) and KCl(1mM). When the cellulose acetate was used as a compartment between the electrode and the buffer solution in the cell, pH distribution in the separation cell varied from 3.0 at the anodic side to 8.0 at the cathodic side and had two inflection point. The applied voltage was from 300V to 1000V and the separation was better at a higher voltage but the voltage was limited by the capability of the cooling system due to Joule heat. The proteins focused near the middle of the channel. From the change of pH and conductivity it was found that the ions in the channel moved out to the electrodes through the membrane. In the case when the concentration of the buffer solution was increased 5 times, proteins were focused at 300V. We could not increase up to the ten times of the concentration since the temperature difference between inlet and outlet was more than $25^{\circ}C$ and denaturation of proteins was expected. When ion-exchange membranes were used U-type pH distribution was set up due to the ionic polarization near the membrane. The commercial ampholytes, instead of the mixed amino acids showed not much improvements in purity of the separated sample.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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