형질전환체 제작 시 발현벡터가 삽입되는 위치에 따라 발현 또는 억제되는 현상인 ‘position effect(위치효과)’를 극복하기 위해 Matrix Attachment Region(MAR)을 포함하는 발현벡터를 제작하였다 MAR는 핵 기질(nuclear matrix) 부착 부위로 발현조절에 관여하는 전사인자 등이 존재하는 핵 기질 부착부위로, 삽입된 발현벡터가 전사활성을 할 수 있는 게놈 환경을 제공해 주어 형질전환 유전자 발현을 향상시켜 준다고 보고되고 있다. 본 연구에서는 사람에서 이미 분리되어 염기서열이 밝혀진 MAR를 PCR로 증폭하였다. 증폭된 1,270 bp의 human alpha-1-antitrypsin MAR와 1,080 bp human corticosteroid binding globulin promoter MAR를 T vector에 클로닝하여 염기서열을 확인했으며 발현벡터 클로닝에 사용하였다. 유용 유전자와 세포 형질전환에 사용할 선별 유전자로 neo를 포함하며, 그 외 벡터골격은 pGL3 control vector를 사용하여 기본 발현벡터를 제작하였다. 이 벡터에 MAR를 5', 3' 양쪽 또는 한쪽만 포함하도록 클로닝하였다. 이는 MAR의 위치에 따른 게놈내 삽입 및 발현효과를 확인하여 형질전환동물 생산용 발현벡터로 활용하고자 한다.
The phenotypes associated with a gene function are often the best clue to its role in the plant. Transgenic plants ectopically expressing or suppressing a gene can provide useful information related to the gene function. In this study, we constructed three vectors - pFGL571, pFGL846 and pFGL847 - for the Agrobacterium-mediated ectopic expression of plant genes using pPZP211 and modified CaMV 35S, UBQ3 or UBQ10 promoters. The three vectors have several merits such as small size, high copy in bacteria, enough restriction enzyme sites in multi cloning sites and nucleotide sequence information. Analysis of transgenic plants containing GUS or sGFP reporter genes under the control of modified CaMV 35S, UBQ3 or UBQI0 promoter revealed that all of the three promoters showed high activities during most developmental stages after germination and in floral organs. Furthermore, we generated a RNAi module vector, pFGL727, to suppress plant gene expressions and confirmed that pFGL727 is useful for the suppression of a gene expression using rice transgenic plants. Taken together, our new vectors would be very useful for the ectopic expression or the suppression of plant genes.
Proceedings of the Korean Society of Applied Pharmacology
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1994.04a
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pp.183-183
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1994
HIV-1 protcase 를 이용한 in vitro assay system을 개발하기 위하여HIV-1 protease유전자를 Ecoli 발현 벡터를 이용하여 발현시켰다. 가능성있는 Protease유전자의 생간 및 분래를 용이하게 하기위하여 maltose binding protein 의 fusion protein을 이용하였으며 protease 의 autoprocessing을 maltose binding protein 의 polyclonal 항체로 확인하였다, 발현된 protease는 일련의 chromatography 방법 (DEAE, SE cellulose, Superose 12, Mono S) 으로 순수하게 분리되었다. 정제된 protease 는 SDS-PAGE분석으로 단일밴드를 보여주었고, 합성된 undecapeptide를 기질로 하였을때 Km 이 9.8$\mu$M 이었다. 효소 assay 를 위해 기질이 protease 에 의해 절단된 생성물을 HPLC를 사용하여 분석하였다. Protease의 억제제 탐색을 위해 유기합성한 몇개의 기질유사체와 HIV-1 증식을 억제하는 것으로 알려진 천연물의 억제정도를 조사하여 보았다. 이들 test 에 사용한 물질들은 높은 농도에서 protease 의 활성을 저해하는 것으로 보아 좋은 억제제는 아닌것으로 시료되나 본 연구를 통하여 확립된 in vitro assay system 은 추후에도 억제제 탐색을 위하여 계속 활용될 수 있을 것이다.
In this study, we constructed various kinds of binary vectors with the pPZP backbone for co-overexpression, tissue- or development-specific expression and stress-inducible expression, and validated them for ectopic expression of target genes. Using a modified CaMV 35S promoter, a binary vector was generated for co-overexpression of two different genes and was confirmed to be efficient for overexpressing two different target genes at the same time and place. Binary vectors containing At2S3, KNAT1 or LFY promoters were constructed for tissue-specific or development-specific gene expression, and the binary vectors were suited for embryo/young seedling stage-, shoot apical meristem- or leaf primordia-specific expressions. Furthermore, the binary vectors containing RD29A or AtNCED3 promoters were validated as suitable vectors for gene expression induced by abiotic stresses such as high salt, ABA, MV and low temperature. Taken together, the binary vectors constructed in this study would be very useful for analyzing the biological functions of target genes and molecular mechanisms through ectopic expression.
AL1-gene, necessary for the replication of the genome of a gemini virus TGMV, was inserted in the opposite direction to the promoter CaMV35S resulting in the construction of a plant transformation binary vector pAR35-2. The vector pAR35-2 contains the chimeric gene cassette involving the duplicated promoter CaMV35S, opposite direction of AL1-gene fusioned with hygromycin resistant gene, and the gene cassette of the neomycin phosphotransferase II gene. The plasmid was transferred to tobacco and tomato plants by leaf disk infection via Agrobacterium. The transgenic plants were selected and grown on the MS-agar medium containing kanamycin and hygromycin. The shoots induced from the calli were regenerated to the whole transgenic plants. The antisense AL1-gene was detected in the genomic DNA isolated from the leaves by using the PCR mediated Southern blot analysis. The expression of the antisense AL1-gene was also observed using the RT-PCR mediated Southern blot analysis. The observation of chloroplasts in guard cell pair indicated that the transgenic tomato plants were diploid.
Park, Ji-Hyun;Lee, Su-Jin;Kim, Bo-Ryung;Woo, Eun-Teak;Lee, Ji-Sun;Han, Eun-Hyang;Lee, Youn-Hyung;Park, Young-Doo
Horticultural Science & Technology
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v.29
no.6
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pp.623-632
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2011
To increase the anti-carcinogens phenylethylisothiocyanate (PEITC), myrosinase (MYR), and glutathione S-transferase (GST), genes related to PEITC pathway were isolated and the gene expressions were regulated by Agrobacterium transformation. Isolated cDNAs, MYR, and GST genes were 1,647 bp and 624 bp, respectively, and the protein expression was confirmed through pET system. Thereafter, we constructed a sense-oriented over-expressing myrosinase (pBMY) and RNAi down-regulated GST (pJJGST) binary vectors for the Chinese cabbage transformation. After the transformation, thirteen over-expressing transgenic Chinese cabbage plants (IMS) with pBMY and five down-regulated ones (IGA) with pJJGST were selected by PCR analysis. Selected $T_0$ transgenic plants were generated to $T_1$ plants by self-pollination. Based on the Southern blot analysis on these $T_1$ transgenic plants, 1-4 copies of T-DNA were transferred to Chinese cabbage genome. Thereafter, RNA expression level of myrosinase gene or GST gene was analyzed through real-time RT PCR of IMS, IGA, and non-transgenic inbred lines. In case of IMS lines, myrosinase gene was increased 1.03-4.25 fold and, in IGA lines, GST gene was decreased by 26.42-42.22 fold compared to non-transgenic ones, respectively. Analysis of PEITC concentrations using GC-MS it showed that some IMS lines and some IGA lines increased concentrations of PEITC up to 4.86 fold and up to 3.89 fold respectively compared to wild type. Finally in this study IMS 1, 3, 5, 12, and 15 and IGA 1, 2, and 4 were selected as developed transgenic lines with increasing quantities of anti-carcinogen PEITC.
In recent years the number of patients waiting for organ transplantation has greatly outpaced the supply of human organs available, which leads to a renewed interest in pig-to-human xenotransplantation as an alternative. However, one of the biggest barriers in the xenotransplantation is presence of porcine endogenous retroviruses(PERV) that can infect human cells. In this study, to present a possible solution for this problem we tried to inhibit expression of PERVs using shRNAs(short hairpin RNA) at the level of RNA synthesis and virus release. The shRNA targeting the sequence of PERV A, B type was cloned into pSIREN-RetroQ vector under the control of polymerase-III U6-RNA gene promoter. Quantitative real-time PCR was performed to detect my alterations in mRNA production of PERV A, B targeted by the shRNA in each done. Depending on the target sequence of the shRNA, the transcription of PERV was decreased to as much as 4% and the number of progeny viruses was reduced to less than 1/200,000. Transgenic pigs producing such shRNAs may result in a highly reduced PERV expression in cells and organs, which is a prerequisite for safe xenotransplantations.
We have previously demonstrated that intracellular expression of an RNA aptamer termed RRE40, which was selected in vitro to bind HIV Rev 10-fold much tighter than wild-type RRE, efficiently protected human CD4+ T cell line, CEM, from HIV-1. In this study, to evaluate the efficacy of the RRE40 RNA in clinical settings, polyclonal CD4+ peripheral blood lymphocytes (PBLs) were transduced with retroviral vectors expressing RRE40 decoy RNA and then challenged with clinical isolates of HIV-1. In contrast to the control cells transduced with vectors expressing control tRNA, intracellular expression of RRE40 RNA more effectively inhibited HIV-1 replication in CD4+ PBLs. However, transient and diminished inhibition, rather than complete inhibition, of HIV-1 replication in PBLs expressing RRE40 decoys have been observed. These results suggest that RRE40 decoy RNA would be useful to inhibit HIV-1 replication in cells. However, development of more efficient gene transfer protocols and/or more effective decoy RNAs would be needed to apply RNA decoy to modulate HIV-1 patient.
Sa, Young-Hee;Choi, Chang-Shik;Lee, Ki Hwan;Hong, Seong-Karp
Proceedings of the Korean Institute of Information and Commucation Sciences Conference
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2019.05a
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pp.533-536
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2019
Recombinant baculoviruses are widely used to express heterologous genes in cultured insect cells. Recombinant baculoviruses can serve as gene-transfer vectors for expression of recombinant proteins in a wide range of mammalian cell types. Baculovirus system has significant benefits in view of safety, large-scale, and high level of gene expression. In this study, baculoviral vectors which were reconstructed from pOPINEneo-3C-GFP vector, were recombined with cytomegalovirus (CMV) promoter, green fluorescent protein (GFP), and p53 with NcoI and XhoI. These recombinant vectors were infected with various cells and cell lines. The baculovirus vector thus developed was analyzed by comparing the metastasis and expression of the recombinant genes with conventional vectors. These results suggest that the baculovirus vector has higher efficiency in metastasis and expression than the control vector. This work was supported by a grant from Mid-Career Researcher Program(NRF-2016R1A2B4016552) through the National Research Foundation of Korea(NRF) funded by the Ministry of Science, ICT & Future Planning(MSIP).
Journal of The Korean Society of Grassland and Forage Science
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v.26
no.1
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pp.1-8
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2006
To develop a new variety of orchardgrass with improved digestibility, caffeic acid O-methyltransferase (Dgcomt), which is a methylation enzyme involved in the early stages of lignin biosynthesis, was isolated and characterized. Dgcomt was expressed not only in leaves but also in stems and roots. The expression levels of transcripts were high in stems and roots which are the most lignified tissues, and only moderate levels of transcripts were expressed in leaves. To develop transgenic orchardgrass plants by down-regulating the Dgcomt gene, an RNAi suppression vector with partial Dgcomt DNA fragment was constructed and transferred into the genome of orchardgrass via Agrobacterium-mediated gene transfer method. PCR and Southern blot analyses with genomic DNAs from putative transgenic plants revealed that the T-DNA region containing RNAi construct was successfully integrated into the genome of orchardgrass. Northern blot analysis revealed that the majority of the down-regulated transgenic lines showed significant reduction in Dgcomt gene expression. These RNAi transgenic orchardgrass will be useful for molecular breeding of new variety with improved digestibility by down-regulating lignin biosynthetic enzyme.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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