Journal of the Korean Society of Clothing and Textiles
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v.24
no.2
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pp.205-213
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2000
This study investigated the effect of mixing protease and lipase on detergency. The detergency of protein soiled, oil soiled and protein-oil soiled cloths and the relative hydrolytic activity of enzymes were examined. The protease-lipase added detergent solution was most effective for the removal of protein in protein-oil soiled cloths. This is because the lipase removed the protein that was physically bound to oil as well as the protease removed the protein. The protease added detergent solution was second effective, the lipase added detergent solution was third effective, and the detergent solution without protease and lipase was the least effective. The protease-lipase added detergent solution was also most effective in the oil removal from protein-oil soiled cloths. Unlike in protein removal, however, the protease added detergent solution was more effective in oil removal than the lipase added detergent solution. This is because the removal of oil bound to protein by protease was more effective than the removal of oil by lipase. In soiling-washing cycles, however, the effects of lipase increased, and as a result, the detergency of protease added detergent solution and the lipase added detergent solution became similar.
In this paper, immobilization of lipase (Rhizomucor miehei, Rhm) onto ion-exchange resin pretreated with oleic acid and its application were studied. Immobilization efficiency was reached to 82% when weakly basic anion exchange resin, Duolite A-568, was used. Immobilized Rhm was stable in water, chloroform and hexane, however, unstable in alcoholic solvents. When immobilized Rhm was applied to the esterification reaction of glycerol and fatty acid, content of DG in the product mixture was ca. 80 mol% and 1,3-DG in total DG reached to 98%.
For the production of diglyceride (DG) containing medium chain fatty acid, which could be utilized as a substrate to structured lipid production, monoglyceride (MG) and caprylic acid were reacted in the presence of lipase. The reaction system was well mixed homogeneously without using any organic solvent. Among the lipases investigated, Lipozyme RM IM and Novozym 435 were selected on the basis of equilibrium DG yields from the medium chain fatty acid and MG. And reaction conditions such as addition of molecular sieve, water content of immobilized lipase, reaction temperature, and mole ratio of MG/caprylic acid are optimized to increase DG production by using Lipozyme RM IM. DG content of reaction mixture showed 8% increase by adding molecular sieve to reaction mixture. Removal of water from the immobilized lipase could affect seriously equilibrium content of DG. More than 2.8%(w/w) removal of water from the support could make 44% of DG. Optimum temperature was found to $60^{\circ}C$. Temperature shift from $60^{\circ}C$ to $25^{\circ}C$ resulted in increase of free fatty acid (FFA) content. The equilibrium DG yield was not seriously affected by on MG/caprylic acid molar ratio. However, at the stoichiometric ratio of 1:1 the highest DG yield was obtained. Increasing MG/caprylic acid ratio from 0.3 to 1.8 decreased FFA content from 34% to 13%, while MG content increased from 27% to 50%.
In the presence of alcohol, phospholipase D (PLD) is known to perform transphosphatidylation activity, during which the overall reaction rate of PLD increased. To elucidate the reaction mechanism of transphosphatidylation further, we investigated rate constants of transphosphatidylation reaction of the purified ${\alpha}$-type PLD from cabbage in the presence of various alcohols. The second-oder rate constants of PLD transphosphatidylation showed a large increase with the primary alcohols examined as expected. In the case of butanol we observed the second-oder rate constant of $33.33{\pm}1.33M^{-1}sec^{-1}$. This second-order rate constant of transphosphatidylation was as 400 times greater as the second-order hydrolysis rate constant of $0.078M^{-1}sec^{-1}$ which was adjusted for the water concentration. A linear free energy relationship between the $pK_a$ of alcohol and transphosphatidylation rate gives a Br${\o}$nsted slope of ${\beta}_{nu}$ = 0.12 ${\pm}$ 0.03. This small ${\beta}_{nu}$ value implicates that the transition state of break down of phosphatidyl-enzyme intermediate (E-P) is likely dissociative. Finally, a reaction mechanism of cabbage PLD is suggested on the basis of our results presented here and the histidine residue known to be located in the active site of cabbage PLD.
MT 2511-5 was purified as a inhibitor of phospholipase C(PLC) from culture broth of a Streptmyces sp. NO. 2511-5. It was identified as scopafungin, 36-membered marcrolide by physico-chemical and spectroscopic data. Its $IC_{50}$ was 30.mu.M against phospholipase C and it also showed inhibitory activity against some fungi.
Journal of the Korean Society of Clothing and Textiles
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v.33
no.7
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pp.1121-1127
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2009
This study presents an eco-friendly and one-step finishing method for modifying fiber property that reduces fiber damage in wool/polyester blend fabrics. Lipase from aspergillus oryzae is used in this experiment. The enzymatic treatment condition is optimized by measuring the relative activity of lipase depending on pH level, temperature, concentration of lipase, and treatment time. The concentration of $CaCl_2$as an activator is determined by the characteristics including whiteness, water contact angle (WCA), and dyeing property. The modified properties of lipase treated fabrics are tested for pill resistance and surface morphology. The results are described as follows: the optimum condions for lipase treatment constitute a pH level of 8.0, treatment temperature of 40$^{\circ}$$_C$, concentration of lipase at 100% (o.w.f), and a treatment time of 90 minutes. $CaCl_2$helps in raising lipase activation, and the optimum concentration is 50mM. The whiteness, wet ability, and pill resistance of lipase treated fabrics improves as compared to the control. The dyeing property of lipase treated fabrics improved by 53.5% after using the one-bath dyeing method. This means that lipase treatment can save time and cost during the dyeing process since lipase treatment modifies wool and polyester fibers. The surface of lipase treated wool fibers do not exhibit any change, however voids and cracks manifest on the surface of lipase treated polyester fibers.
Diglyceride (DG) was prepared by reaction of soybean oil and glycerol in the presence of lipase. The initial rate of DG production was greatly affected by the amount of lipase. However the DG content at equilibrium was hardly affected by the amount of lipase added to the reaction mixture. The initial rate of FFA formation was highly affected by the moisture content between 0.5 and 2.3%, but at higher water content (3.3-5.2%), there was a small increase in the rate. And DG content at equilibrium slowly increased with the increase of the water content in glycerol up to 4.4%. However, there was a sharp decrease in DG content at higher water content (5.2-6.4%) due to higher free fatty acid production. The highest yield of DC was obtained at the temperature ranges of 30-5$0^{\circ}C$. The final yield of DG was not dependent on the glycerol (GL) to triglyceride (TG) molar ratio. However, at the molar ratio of 0.75:1 (GL/TG), the enzyme-catalyzed reaction was highly efficient and utilized all the glycerol. In optimized conditions for glycerolysis a yield of approximately 45% DG was obtained. 66% of total DG was 1,3-DG.
In order to explore a substrate specificity for cabbage phospholipase D, we examined the PLD reactivity toward the phosphatidylcholines with different chain length of acyl groups. The selected acyl chains were the saturated fatty acid of $C_8:0,\;C_{12}:0,\;C_{16}:0,\;C_{20}:0$. The reactivity of these phospholipids were dependent largely on the ratio of PC : SDS. The PC : SDS ratio showing the optimal PLD activity were found to be 1:1.4, 1:2.2, 1:2.5, and 1:3.6 respectively as the increase of the acyl chain length. Likewise the optimum temperature for the maximal PLD activity were altered markedly to 25$^{\circ}C$, 30$^{\circ}C$, 35$^{\circ}C$, 45$^{\circ}C$ when the length of acyl chains increased. On the contrary the pH and concentration of $Ca^{2+}$ necessary for the optimum PLD activity were not altered significantly. The kinetic parameter $V_{max}$ for short acyl chain substrate was greater than the values for the longer acyl chain, which indicates the fastest rate of hydrolysis. By the same token, the reactivity of longer chain substrate became slower for the hydrolysis activity.
Journal of the Korean Society of Food Science and Nutrition
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v.23
no.3
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pp.496-501
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1994
The synthesis of lauryl palmitate from palmitic acid and lauryl alcohol was investigated in organic solvents using lipase. Water-immiscible organic solvent such as hexane, toluenem cyclohexane, and isooctane were found to be suitable of ester synthesis . The effect of water content on the initial rate of conversion was examined . As the content increased, the reaction rate increased. But addition of water in organic solvent decreased therostability of enzyme . The best lauryl palmitate synthesis was achieved with water content of 0.2-0.4% reaction temperature of 4$0^{\circ}C$ and 45$^{\circ}C$ for Candida cylindracea lipase porcine, pancreatic lipase, respectively. when ester synthesis was carried out under the optimum conditions, the conversion yield of palmitate into lauryl palmitate after 70hrs reached 85% and 69 % for the Candida cylindracea lipase and porcine opancreatic lipase, respectivley.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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