To understand contribution of thermophilic microorganisms in decomposition of litter deposits on shore of lakes, we surveyed a lakeshore litter deposit for bacteria growing at $60^{\circ}C$. Ten thermophilic isolates were selected for in-depth characterization, based on their high capacity to degrade high molecular weight organic compounds. Based on phylogenetic analysis on their 16S rRNA gene sequences, all isolates were identified as Geobacillus. The optimal growth temperature and pH of the strains ranged $55{\sim}60^{\circ}C$ and 6.0${\sim}$8.0, respectively. Salinity was inhibitory to the growth of the isolates, showing marked decrease of growth rates at 3% salinity. Based on activities of hydrolytic enzymes and profiles of carbohydrate utilization (determined by API 50 CHB kit), three G. stearothermophilus strains showed patterns clearly distinctive from other isolates. Two G. kaustophilus strains also demonstrated distinctiveness in their metabolic pattern and ecological parameters. However, ecological and metabolic profiles of the other five isolates were more variable and showed some degree of digression from their phylogenetic classification. Therefore, it could be concluded that endospore-forming thermophilic bacteria in lakeshore litter deposits contribute to degradation of organic materials with diverse ecological niches while having successions similar to microbial flora in compost. We propose that the thermophilic isolates and/or their thermo-tolerant enzymes can be applied to industrial processes as appropriate mixtures.
Sam Woong Kim;Young Jin Kim;Tae Wook Lee;Won-Jae Chi;Woo Young Bang;Tae Wan Kim;Kyu Ho Bang;Sang Wan Gal
Journal of Life Science
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v.33
no.11
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pp.897-904
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2023
This study was done to develope genetic markers with the unique characteristics of genes according to the genomic information of Bacillus velezensis K10. B. velezensis K10 maintained a total of 4,159,835 bps, which was found to encode 5,136 open reading frames (orfs). B. velezensis K10 was found to have much more gene migration due to external factors overall compared to standard strain B. velezensis JS25R. In order to discover genetic selection markers, orfs on the genome to be easily induced to gene mutation were surveyed such as recombinase, integrase, transposase, and phage-related genes. As a result of the investigation, 9 candidate markers were isolated with high possibility as genetic selection markers. Although a part in the various origin's areas showed specificities in comparison with homology, the selected markers were all existed in phage-related areas because they were relatively lower homologies in phage-related genes. PCR analysis was done on B. licheniformis K12, B. velezensis K10, B. subtilis, and B. cereus to establish them as inter-species candidate selection markers. As a result, it was confirmed that B. velezensis K10-specific PCR products were formed in a total of 6 primer sets such as BV3 and BV5 to 9. On the other hand, analysis at the subspecies level observed the formation of B. velezensis K10-specific PCR products in 4 primer sets such as BV3, 5, 8, and 9. Among them, since BV5 and BV8 were detected by very specific results, we suggest that BV5 and 8 can be used as B. velezensis K10 gene selection markers at the species and sub-species level.
Recently, we sequenced the entire genome of a freshwater agar-degrading bacterium Cellvibrio sp. KY-GH-1 (KCTC13629BP) to explore genetic information encoding agarases that hydrolyze agarose into monomers 3,6-anhydro-L-galactose (L-AHG) and D-galactose. The KY-GH-1 strain appeared to possess nine β-agarase genes and two α-neoagarobiose hydrolase (α-NABH) genes in a 77-kb agarase gene cluster. Based on these genetic information, the KY-GH-1 strain-caused agarose degradation into L-AHG and D-galactose was predicted to be initiated by both endolytic GH16 and GH86 β-agarases to generate NAOS (NA4/NA6/NA8), and further processed by exolytic GH50 β-agarases to generate NA2, and then terminated by GH117 α-NABHs which degrade NA2 into L-AHG and D-galactose. More recently, by employing E. coli expression system with pET-30a vector we obtained three recombinant His-tagged GH50 family β-agarases (GH50A, GH50B, and GH50C) derived from Cellvibrio sp. KY-GH-1 to compare their enzymatic properties. GH50A β-agarase turned out to have the highest exolytic β-agarase activity among the three GH50 isozymes, catalyzing efficient NA2 production from the substrate (agarose, NAOS or AOS). Additionally, we determined that GH117A α-NABH, but not GH117B α-NABH, could potently degrade NA2 into L-AHG and D-galactose. Sequentially, we examined the enzymatic characteristics of GH50A β-agarase and GH117A α-NABH, and assessed their efficiency for NA2 production from agarose and for production of L-AHG and D-galactose from NA2, respectively. In this review, we describe the benefits of recombinant GH50A β-agarase and GH117A α-NABH originated from Cellvibrio sp. KY-GH-1, which may be useful for the enzymatic hydrolysis of agarose for mass production of L-AHG and D-galactose.
Chicken eggs undergo various physiological changes during egg maturation. To study genes associated with the egg maturation in pre-ovulation (immature) and post-ovulation (mature), we compared gene expression patterns between in the immature egg and mature egg using RNA sequencing data. Mature and immature eggs were obtained from a Heuksaek Jaerae-jong of Korean native chicken. Total RNAs obtained from the eggs were sequenced by Illumina HiSeq 2000 platform, and the generated sequence reads were mapped to Galgal4 reference sequence assembly using Tuxedo Protocol. From the comparison of the RNA sequencing data, 315 genes were differentially expressed between mature and immature eggs, and 46 genes were only detected in immature egg. Further gene ontology (GO) analysis was performed for the differentially expressed genes using DAVID, showing that 29 and 28 GO terms were independently clustered from mature and immature, respectively. From those clustered GO terms, genes related to germ cell development, sex differentiation and defense response to bacterium were mainly expressed in the immature egg, while genes related to regulation of apoptosis, steroid metabolic process and lipid homeostasis were mainly detected in the mature egg. Our results could contribute to understand egg maturation before and after ovulation, and develop genetic markers for improving egg quality and productivity.
Park, Moon-Kyoo;Jung, Kyoung-Hwa;Kim, Yeon-Hee;Rhie, Gi-Eun;Chai, Young-Gyu;Yoon, Jang-W.
Korean Journal of Microbiology
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v.46
no.1
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pp.21-26
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2010
As the causative agent of Anthrax, Bacillus anthracis causes an acute fatal disease in herbivores such as cattle, sheep, and horses as well as humans. The therapeutics and prevention of anthrax currently available are based on antibiotics and the live attenuated vaccine strains, which may be problematic due to the emergency of antibiotic resistant strains or residual virulence in those vaccine strains. Therefore, it has been required to develop novel therapeutics and vaccines which are safer and applicable to humans. Recently, the development of the multivalent vaccine targeting both spores and vegetative cells of B. anthracis along with anthrax toxin has been reported. In our attempts to screen potential candidates for those multivalent vaccines, the whole genomic expression library of B. anthracis was constructed in this study. To the end, the partial digests of the genomic DNA from B. anthracis (ATCC 14578) with Sau3AI were ligated with the inducible pET30abc expression vectors, resulting in approximately $1{\times}10^5$ clones in E. coli BL21(DE3). The redundancy test by DNA nucleotide sequencing was performed for the randomly selected 111 clones and found 56 (50.5%) B. anthracis genes, 17 (15.3%) vector sequences, and 38 (34.2%) unknown genes with no sequence homology by BLAST. An inducible expression of the recombinant proteins was confirmed by Western blot. Interestingly, some clones could react with the antiserum against B. anthracis. These results imply that the whole genomic library constructed in this study can be applied for analyzing the immunomes of B. anthracis.
In this study, to retain a stable bacterial inoculant, Bacillus strains showing antifungal activity were screened. The improved production, antifungal mechanism, and stability of the antifungal metabolite by a selected strain, AF4, a potent antagonist against phytopathogenic Botrytis cinerea, were also investigated. The AF4 strain was isolated from rhizospheric soil of hot pepper and identified as Bacillus subtilis by phenotypic characters and 16S rRNA gene analysis. Strain AF4 did not produce antifungal activity in the absence of a nitrogen source and produced antifungal activity at a broad range of temperatures (25-40℃) and pH (7-10). Optimal carbon and nitrogen sources for the production of antifungal activity were glycerol and casein, respectively. Under improved conditions, the maximum antifungal activity was 140±3 AU/ml, which was higher than in the basal medium. Photomicrographs of strain AF4-treated B. cinerea showed morphological abnormalities of fungal mycelia, demonstrating the role of the antifungal metabolite. The B. subtilis AF4 culture exhibited broad antifungal activity against several phytopathogenic fungi. The antifungal activity was heat-, pH-, solvent-, and protease-stable, indicating its nonproteinous nature. These results suggest that B. subtilis AF4 is a potential candidate for the control of phytopathogenic fungi-derived plant diseases.
Adiponectin is adipocyte complement-related protein which is highly specialized to play important roles in metabolic and honnonal processes. This protein, called GBP-28, AdipoQ, and Acrp30, is encoded by the adipose most abundant gene transcript 1 (APM1) which locates on human chromosome 3q27 and mouse chromosome 16. In order to determine chromosomal localization of the porcine APM1, we carried out PCR analysis using somatic cell hybrid panel as well as porcine whole genome radiation hybrid (RH) panel. The result showed that the porcine APM1 located on chromosome 13q41 or 13q46-49. These locations were further investigated with the two point analysis of RH panel, revealed the most significant linked marker (LOD score 20.29) being SIAT1 (8 cRs away), where the fat-related QTL located. From the SSCP analysis of APM1 using 8 pig breeds, two distinct SSCP types were detected from K~ native and Korean wild pigs. The determined sequences in Korean native and Korean wild pigs showed that two nucleotide positions (T672C and C705G) were substituted. The primary sequence of the porcine APM1 has 79 to 87% identity with those of human, mouse, and bovine APM1. The domain structures of the porcine APM1 such as signal sequence, hypervariable region, collagenous region. and globular domain are also similar to those of mammalian genes.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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