Lim, Yun Kyong;Yoo, So Young;Lee, Dae Sung;Kook, Joong-Ki
International Journal of Oral Biology
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제44권4호
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pp.191-194
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2019
The purpose of this study was to investigate the antimicrobial effects of Australia propolis against cariogenic and periodontopathic bacteria. Antimicrobial activity was determined by evaluating the minimal bactericidal concentration (MBC). Cell cytotoxicity of propolis extract on normal human gingival fibroblast (HGF-1) cells was observed using the methylthiazolyldiphenyl-tetrazolium bromide assay. The data indicated that, with the exception of Aggregatibacter actinomycetemcomitans (KCOM 1306), the MBC values of the propolis strains were 0.25-1% without HGF-1 cell cytotoxicity. These results suggest that propolis can be used to develop oral hygiene products for the prevention of oral infectious disease.
In the oral cavity, complex microbial community is shaped by various host and environmental factors. Extensive literature describing the oral microbiome in the context of oral health and disease is available. Advances in DNA sequencing technologies and data analysis have drastically improved the analysis of the oral microbiome. For microbiome study, bacterial 16S ribosomal RNA gene amplification and sequencing is often employed owing to the cost-effective and fast nature of the method. In this review, practical considerations for performing a microbiome study, including experimental design, molecular analysis technology, and general data analysis, will be discussed.
Treponema maltophilum, a Group IV oral spirochete, is associated with periodontitis and endodontic infections. In this study we analyzed the functional role of the major surface protein of this organism (MspA) in human gingival fibroblasts (HGFs). The full-length gene encoding MspA was cloned and expressed in Escherichia coli by using the expression vector pQE-30. The recombinant protein (rMspA) was purified by affinity chromatography with nickel-nitrilotriacetic acid agarose and possible contamination of E. coli endotoxin in rMspA was removed by using polymyxin B-agarose. rMspA significantly induced the expression of pro inflammatory cytokines like IL-6 and IL-8 and intercellular adhesion molecule (ICAM)-1 in HGFs, when analyzed by reverse transcription-PCR, flow cytometry, and enzyme-linked immunosorbent assay. Our results indicate that MspA of T. maltophilum may play an important role in amplifying the local immune response by upregulating the expression of proinflammatory cytokines and ICAM-1.
Minimal inhibitory concentration (MIC) is the lowest concentration of antibiotics that inhibits the visible growth of bacteria. It has been reported that sub-MIC of antibiotics may result in morphological alterations, along with the biochemical and physiological changes in bacteria. The purpose of this study was to examine morphological changes of Aggregatibacter actinomycetemcomitans, after the treatment with sub-MIC metronidazole and penicillin. The bacterial morphology was observed with scanning electron microscope, after incubating with sub-MIC antibiotics. The length of A. actinomycetemcomitans was increased after the incubation with sub-MIC metronidazole and penicillin. Sub-MIC metronidazole and penicillin inhibited bacterial division and induced long filaments. Our study showed that metronidazole and penicillin can induce the morphological changes in A. actinomycetemcomitans.
This study was undertaken to develop species-specific forward and universal reverse PCR primers for the detection of Streptococcus sobrinus. These primers target the variable regions of the 16S ribosomal RNA coding gene (rDNA) and their specificity was tested against 10 strains of S. sobrinus strains and 20 different species of oral bacteria using serial dilutions of the purified genomic DNA of S. sobrinus ATCC $33478^T$. Our data show that species-specific amplicons were obtained from all the S. sobrinus strains tested but not from other species. Both direct and nested PCR could detect as little as 400 pg and 4 fg of genomic DNA from S. sobrinus ATCC $33478^T$, respectively. This result suggests that these PCR primers are highly specific and sensitive and applicable to the detection of S. sobrinus.
The periodontal diseases and dental caries are major infectious diseases in oral cavity. Many of the preventive and therapeutic dental products contain the antimicrobial and anti-inflammatory components. But some of these antimicrobial have weak points such as coloration, burning sensation and insolubility in water. We have screened the therapeutic herbal extracts of the Plant Extract Bank for the antimicrobial activity on the major dental pathogens by growth inhibition assay. For the Porphyromonas gingivalis, 8 herbal extracts had an antimicrobial activity, 11 herbal extracts for the Prevotella intermedia, 43 herbal extracts for the Haemophilus actinomycetemcomitans and 61 herbal extracts for the Streptococcus mutans. Among these extracts, 6 herbal extracts had an antimicrobial activity for more than 3 species of dental pathogens. These extracts are Araliae Cordatae Radix, Crassirhizomae Rhizoma, Mori Radicis Cortex, Psoraleae Semen, Pini Ramulus and Sieges- beckiae Herba. All of effective extracts were CA group, ethanol extracts. Among these 6 herbal extracts, only Crassirhizomae is known to have a antibacterial effects. Therefore these herbal extracts have a possibility to be a candidate for a major antibacterial components in dental products.
In this study, the cytotoxicity of commonly used local anesthetics was evaluated on odontoblasts which are essential for pulpal homeostasis in vitro. Local anesthetics, such as articaine, bupivacaine, levobupivacaine, lidocaine, mepivacaine, prilocaine, and procaine, were tested on the odontoblast cell line, MDPC-23. The concentration-and time-dependent cytotoxic effects of local anesthetics on odontoblasts were measured by MTT assay. Among local anesthetics treated for 18 h, only bupivacaine significantly showed cell death in a concentration-($LC_{50}=1.2mM$) and time-dependent manner. To confirm cell death induced by bupivacaine, the observation of cell morphology and FACS using Annexin V and propidium iodide (PI) staining were performed. As a result of Annexin V and PI staining, as well as the morphological change, only bupivacaine induced apoptotic cell death on odontoblasts when compared with levobupivacaine and lidocaine. These results suggest that bupivacaine might affect normal pulpal integrity even after uneventful local anesthesia.
Treponema denticola is the best studied oral spirochete and numerous studies have shown that it is strongly associated with periodontitis and expresses several putative virulence factors. In this study, we report on a surface protein of T. denticola, Td92, which is homologous to Tp92 of Treponema pallidum, an agent of syphilis. Immunofluorescence assay and immunogold labeling with anti-Td92 Ab revealed that Td92 had surface-exposed epitopes. And Td92 was capable of binding to fibronectin and KB cells, an oral epithelial cell line. In addition, Td92 could enter the KB cells. These results indicate that Td92 is a fibronectin-binding protein which can bind to and internalize into the host cells, facilitating the virulence of T. denticola.
Oral spirochetes are anaerobes known as one of causative agents for periodontal diseases. In this study, we investigated the possibility of utilizing fluorescent fatty acids for labeling oral spirochetes. Bacterial labeling was standardized with three different lengths of fluorescent fatty acids: 5-octadecanoylaminfluorescein (OAF), 5-dodecanoylamin-fluorescein (DAF), and 5-hexadecanoylaminfluorescein (HAF). Among these fatty acids, OAF showed the best labeling activity. Treponema denticola ATCC 35405 was totally saturated to the maximum when incubated with OAF $1\;{\mu}g/ml$ for 1 hour. Treponema vincentii LA-1 also increased in fluorescence in proportion to incubation time length and the concentration. In conclusion, these findings showed the possibility that the fluorescent fatty acid can be used for labeling oral spirochetes.
Staphylococcus species are one of prevalent pathogens found in hospitals. Microbes that are a primary cause of nosocomial infection were isolated from a dental and medical environment it may assist the reader to explain what this is and how it differs from the 'dental health care providers and ward health care providers'. To investigate the distribution of staphylococcus species in this environment, we used vitek II to measure drug sensitivity, and further performed biochemical testing. The isolation rate of staphylococcus species from the dental and medical environment was 100% but from dental health care providers and ward health care providers were 44.4% and 33.3%, respectively. In the analyses, staphylococcus species showed resistance to diffusion of cefoxitin and oxacillin discs. These staphylococci may be sufficiently positive for the mecA gene. Our results suggest that staphylococci might be an important cause of nosocomial infection in the dental clinic.
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