Somatic embryogenesis is as an excellent technology for potential use in plant mass production, germplasm conservation, or genetic engineering. We examined the effect of cold storage using 3 embryogenic callus lines with different levels of embryogenesis competence derived from immature zygotic embryo cultures of Kalopanax setemlobus. Somatic embryo induction, germination and plant conversion were evaluated after 1, 3 and 6 months storage at $4^{\circ}C$ in the dark. Most cold-stored embryogenic calli formed somatic embryos normally even after 6 months; however, the induction rate was gradually decreased by increasing the storage period. The most competent line tended to show a slight decline in somatic embryo induction rate, as compared with other lines after cold storage. In general, cold storage resulted in reduced somatic embryo germination and plant regeneration, although 93% somatic embryo germination and 91% plant conversion were achieved regardless of the storage period. Cold storage led to cell browning and degradation. Additionally, the cell structures were confirmed by the aceto-carmine and evans blue dye evaluation. Collectively, our results showed that embryogenic callus of K. septemlobus could be preserved at $4^{\circ}C$ without subculture for 6 months, and suggested the need for storage of relatively more competent embryogenic calli lines to support somatic embryo induction.
This study was conducted to level up the tolerance of tobacco plant against bialaphos herbicide through tissue culture. The relatively good shoot regeneration from the subcultured calli treated with bialaphos at 0.5 ppm was observed in old the tobacco varieties tested such as NC 82, BY 4 and KA 101. However, at the treatment of bialaphos 1.0 ppm, shoot regeneration was only made in KA 101 variety, showing better regeneration than that of untreated one, When these shoots were transfered to the medium containing of bialaphos 10.0 ppm, the percentage of living shoots (i.e. tolerant plant) was very low, showing 2.43% in NC 82, 2.76% in KA 101 and 0.78% BY 4. Calli were induced and multiplied from leaf petiole of the above tolerant plants even under 2.5ppm of bialaphos, showing an average of 9% in NC 82 and 16% in KA 101 as compared with the untreated control. No calli were induced from tolerant plants as bialaphos concentration increased up to 5.0 ppm. Direct shooting from leaves of the above tolerant plants, that is selected at 10.0ppm of bialaphos treatment, was observed even under 10.0ppm of bialaphos treatment both in NC 82 and in KA 101 varieties, indicating that tolerance of tobacco plants against bialaphos can be greatly increased.
Yang Kyoung-Sil;Lim Soon;Kwon Suk-Yoon;Kwak Sang-Soo;Kim Hyun-Soo;Lee Haeng-Soon
Journal of Plant Biotechnology
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v.32
no.4
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pp.263-268
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2005
Porcine epidemic diarrhea virus (PEDV) causes acute enteritis in pigs of all ages and is often fatal for neonates. In order to develop sweetpotato plants expressing PEDV antigen, we constructed the vector expressing spike gene of PEDV under the control of sweetpotato sporamin promoter or constitutive CaMV 35S promoter. The spike protein region of PEDV was synthesized by PCR and linked to each promoter, Transgenic sweetpotato [Ipomoea batatas (L.) Lam. cv. Yulmi] plants were developed from embryogenic calli following Agrobacterium tumefaciens-mediated transformation. The co-cultured embryogenic calli transferred to selective MS medium containing 1 mg/L 2,4-D, 100 mg/L kanamycin, and 400 mg/L claforan. These embryogenic calli were subcultured to the same selection medium at 3 weeks interval. Kanamycin-resistant calli transferred to hormone-free MS medium with kanamycin gave rise to somatic embryos and then converted into plantlets in the same medium. Southern blot analysis confirmed that the spike gene of PEDV was inserted into the genome of the sweetpotato plants. RT-PCR revealed that the spike gene of PEDV was highly expressed in transgenic sweetpotato plants.
The fusants which contain starch utilizing ability and alcohol fermenting ability were developed by protoplast fusion of Saccharomyces cerevisiae KOY-1 and Saccharomyces diastaticus KCTC 1804. Sacharomyces cerevisiae KH-12 was obtained by haploid induction from Saccharomyces cerevisiae KOY-1. The auxotropic mutants of yeast were obtained by using an ethylmethane sulfonate (EMS). The frequency of protoplast formation in Saccharomyces cerevisiae KOY-1 $(Met^-)$ and Saccharomyces diastaticus KCTC 1804 $(Trp^-)$ were 90.5% and 97.7%, respectively. The frequency of fusant formation was $1.79{\times}10^{-4 }$ for the regenerated protoplast and the 1,000 fusants were obtained. Fusant FA 776 was selected as a potential yeast which contain an alcohol fermenting ability in the starch medium. The genetic stability was 4.64% for 10 passages of generation. Fusant FA 776 produced 13mg/ml of alcohol in 24% starch medium and showed 1.86-fold higher alcohol fermenting ability than Saccharomyces diastaticus KCTC 1804.
The objective of this study was to investigate the anti-Bacillus cereus activity of actinonin. Actinonin inhibited the growth of B. cereus in a dose dependent manner. The growth-inhibitory activity of actinonin was evaluated using a broth micro-dilution method, and minimum inhibitory concentration (MIC) and agar disk diffusion tests. B. cereus showed high susceptibility to actinonin in a concentration-dependent manner and MIC was determined to be $0.192{\mu}g/mL$. Additionally, 1 and 2 mM actinonin induced formation of B. cereus inhibition zones. In addition, as compared to B. cereus alone, B. cereus added with $10{\mu}M$ actinonin showed a lower level of cytotoxicity in HeLa cells in vitro. Thus, this study revealed that actinonin could be a potential source of a natural antimicrobial agent or a pharmaceutical component against B. cereus.
This study was conducted to establish the in vitro optimal condition for seed germination and organogenesis of wild Angelica gigas. The experiment was evaluated the effects of $GA_3$ for pre-treatment with different periods of time (0h, 24h, 48h, 72h) and followed the treatment of seeds by control, scarification and methanol-heating method. As a result, the highest rates (15%) of seed germination was shown under the treatment without soaking of $GA_3$ and methanol-heating treatment. The seed germination was highly increased 60% under the condition of treatment on ultrasonic waves (frequency 80 KHz) with methanol-heating treatment including 0.1 mg/L $GA_3$. The highest callus induction rate was obtained from in vitro germinated stem, root and hypocotyl on the MS medium with 1.0 mg/L NAA and 0.5 mg/L BA. The highest percentages of shooting (50%) and rooting (85%) induction were observed in hypocotyl and root cultured on PGRs free medium and 0.1 mg/L NAA, respectively. In addition, somatic embryogenesis was observed from stem (1.0 mg/L 2,4-D) and hypocotyl (0.1 mg/L NAA).
Kim, Kang Mi;Kim, Yoon Jae;Kim, Jong Min;Sohn, Dong Hyun;Park, Young Chul
Journal of Life Science
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v.29
no.8
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pp.888-894
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2019
Cartilage diseases, such as rheumatoid arthritis (RA) and osteoarthritis (OA), are associated with the loss of chondrocytes and degradation of articular cartilage. Recent studies revealed that inflammatory reactive oxygen species (ROS) and age-related oxidative stress can affect chondrocyte activity and cartilage homeostasis. We investigated changes in the levels of intracellular antioxidants during cellular senescence of primary chondrocytes from rat articular cartilages. Cellular senescence was induced by serial subculture (passages 0, 2, 4, and 8) of chondrocytes and measured using specific senescence-associated ${\beta}$-galactosidase ($SA-{\beta}-gal$) staining. ROS production increased significantly in the senescent chondrocytes. In addition, total glutathione (GSSG/GSH) and superoxide dismutase (SOD) levels and heme oxygenase-1 (HO-1) expression increased in senescent chondrocytes induced by serial subculture. Analysis of changes in intracellular antioxidant levels in articular cartilage from rats of different ages (5, 25, 40, and 72 wk) revealed that total glutathione levels were highest after 40 wk and slightly decreased after 72 wk as compared with those after 25 wk. SOD and HO-1 expression levels increased in accordance with age. Based on these results, we conclude that intracellular antioxidants may be associated with cartilage protection against excessive oxidative stress in the process of chondrocyte senescence and age-related cartilage degeneration in an animal model.
Kim, Yong-Wook;Kim, Joon-Chul;Youn, Yang;Noh, Eu-Rae;Son, Sung-Ho
Korean Journal of Plant Tissue Culture
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v.26
no.4
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pp.251-257
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1999
Adventitious buds were produced from the cultures of mature zygotic embryos of Larix leptolepis with the highest frequency of 91.7% in SH medium containing 1.0 mg/L zeatin. The most effective cytokinin combination for inducing adventitious buds was 1.0 mg/L zeatin + 1.0 mg/L thidiazuron (40.3%). The highest mean number of adventitious buds induced in 1.0 mg/L zeatin + 1.0 mg/L 2iP or 1.0 mg/L zeatin + 1.0 mg/L kinetin combined treatments. Elongation of the adventitious buds occurred the best on half strength LM salts medium, on which the buds elongated upto 27 mm. Also, the supplement of activated charcoal in medium suppressed the elongation of the adventitious buds. The highest frequency (23.3%) of rooting from elongated shoots was obtained on the medium containing 5.0 mg/L IBA and 0.2 mg/L NAA. The highest number (3.5) of roots was induced on the medium containing 5.0 mg/L IBA alone.
Cell volume and DNA contents of the fusants were similar to those of parents. Genetic stability of the fusants was increased when they were cultured on minimal medium (MM) rather than on complete medium (CM), and the fusants were stabilized by subculturing 7 generations each 7 day on MM agar. The finally selected fusants after being cultured for 6 months on CM were stable without segregation. The fusants could also form nuclein and ascospores, and show red and pink colors by the test of TTC colorization. Assimilability and fermentability of carbon sources of the fusants were similarto those of parents. The tolerance of KCl, NaCl, sodium propionate and cycloheximide showed the traits of one strain of parents. When the fusants were cultured for 72 hr and 60 hr in the medium containing 20% glucose and sucrose, respectively, the yield of ethanol for FWKS 260 was reached to 9.6 v/v% and 9.8v/v%, respectively. The sensitive strain Kyokai 7 was found to be killed entirely after cultivation of 48 hr by the killer toxin from the fusants. The recipient S 29 and Kyokai 7 were found to have neither L nor M dsRNA plasmid. However, K 52 and fusants had both L and M dsRNA plasmid of 4.7 kb and 2.5 kb, respectively. The curants treated by heat and cycloheximide did not contain M dsRNA plasmid, but had large amounts of L dsRNA plasmid of those of killer yeasts.
The effects of thiamin on vegetative mycelial growth and fruit body formation of Lentinuia edodes were investigated in basal peptone-glucose liquid medium in relation to the uptake of thiamin. Thiamin was essential for fruit body formation, and the minimum requirements for thiamin were estimated to be approximately 10 ${\mu}g$/L. The vegetative mycelial growth was little influenced by the addition of thiamin in the range of 1.5 ${\mu}g$~1.5 mg/L. While the mycelium was successively transferred to fresh peptone-glucose-agar medium three times, the repression of mycelial growth was not significant. Even in cases using vitamin-free casamino acid or glutamic acid as a nitrogen source instead of peptone, a thiamin deficiency for mycelial growth did not occur as a result of transferring the mycelia to fresh media. Almost all of the thiamin contained in the media accumulated in the mycelia during the first 3 weeks of a 9-week incubation. These results suggest that only trace amounts of thiamin are required for vegetative mycelial growth in Lentinula edodes and that almost all thiamin added to a basal medium will be used for fruit body formation.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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